• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    內(nèi)阿米巴屬原蟲分子檢測及基因分型方法研究進(jìn)展

    2014-01-26 16:16:00董海聚王榮軍張龍現(xiàn)
    中國人獸共患病學(xué)報 2014年7期
    關(guān)鍵詞:原蟲阿米巴區(qū)分

    董海聚,王榮軍,張龍現(xiàn)

    阿米巴原蟲屬于肉足鞭毛門、肉足亞門、跟足總綱、葉足綱、阿米巴目的成員,根據(jù)其生活環(huán)境不同分為內(nèi)阿米巴和自由生活阿米巴,前者寄生于人和動物,主要有4個屬,即內(nèi)阿米巴屬(Entamoeba)、內(nèi)蜒屬(Endolimax)、嗜碘阿米巴屬(Iodamoeba)和脆雙核阿米巴屬(Dientamoeba);后者生活在水和泥土中,偶爾侵入動物機(jī)體,主要有5個屬,即耐格里屬(Naegleria)、棘阿米巴屬(Acanthamoeba)、哈曼屬(Hartmannella)、Vablkampfia屬和Sappinia屬。其中內(nèi)阿米巴屬原蟲可引起人和動物出現(xiàn)痢疾和肝膿腫等癥狀,危害較為嚴(yán)重,據(jù)報道溶組織內(nèi)阿米巴原蟲(Entamoebahistolytica,E.histolytica)每年可引起5 000萬人發(fā)生阿米巴痢疾和肝膿腫,可導(dǎo)致10萬人死亡[1],因此,引起了國內(nèi)外研究者的高度關(guān)注。20世紀(jì)早期,內(nèi)阿米巴屬原蟲的命名大多是根據(jù)其感染的宿主以及其包囊或滋養(yǎng)體形態(tài)的差異而定,目前已知命名的種類有E.histolytica、E.dispar、E.moshkovskii、E.coli、E.polecki、E.hartmanni、E.bovis、E.ovis、E.dilimani和E.suis等,其中,感染人的主要包括E.histolytica、E.dispar、E.moshkovskii、E.coli、E.polecki和E.hartmanni,且主要寄生于人的小腸,目前認(rèn)為E.histolytica是唯一有根據(jù)被確定為致病性的內(nèi)阿米巴原蟲,而且被認(rèn)為是引起人死亡的主要寄生蟲之一[2-3],E.polecki一般不致病,但也有少數(shù)人出現(xiàn)腹瀉癥狀的報道。不同種類的內(nèi)阿米巴原蟲包囊和滋養(yǎng)體的形態(tài)極為相似,E.histolytica、E.dispar和E.moshkovskii的滋養(yǎng)體直徑約10~50 μm,包含1個單核,包囊直徑約10~15 μm,包含1~4個核,未成熟包囊有1~2個核,成熟包囊具有4個核,從形態(tài)上難以區(qū)分;E.hartmanni包囊直徑小于10 μm,從形態(tài)上能與E.histolytica/E.dispar/E.moshkovskii進(jìn)行鑒別,但有時一些E.hartmanni包囊直徑會大于10 μm,如嚴(yán)格根據(jù)形態(tài)進(jìn)行區(qū)分,可能會誤認(rèn)為E.histolytica/E.dispar/E.moshkovskii;E.coli包囊直徑10~30 μm,而且核的形態(tài)與E.histolytica/E.dispar/E.moshkovskii有所不同,前者的內(nèi)含體常偏離中央,后者位于中央,前者的核膜染色質(zhì)內(nèi)襯更加粗糙,上面的顆粒更大;E.polecki包囊為單核,僅有1%的包囊處于2個核的發(fā)育階段。

    理論上來講,能夠根據(jù)包囊或滋養(yǎng)體的形態(tài)將一些內(nèi)阿米巴原蟲區(qū)分,但在實際操作過程中很難區(qū)分,尤其是E.histolytica、E.dispar和E.moshkovskii,再加上檢測方法等方面的因素,以前的報道盲目擴(kuò)大了E.histolytica的感染率,因此,目前主要通過分子診斷方法對其進(jìn)行種類的鑒定和基因分型。

    1 常規(guī)檢測方法

    在分子生物學(xué)技術(shù)發(fā)展的早期,研究者主要使用酶譜型和抗原檢測來確定內(nèi)阿米巴原蟲的感染情況。

    1.1酶譜型 酶譜型技術(shù)是最早應(yīng)用于區(qū)分內(nèi)阿米巴原蟲分離株的方法,并且長期作為區(qū)分其分離株的金標(biāo)準(zhǔn),該法的缺點是必須使用培養(yǎng)的滋養(yǎng)體、耗時和敏感性極低,因此,目前很少被采用,但該法在早期對E.histolytica和E.dispar的區(qū)分起到了重要的作用[4]。

    1.2抗原檢測 目前用于抗原檢測的腸道內(nèi)阿米巴原蟲主要是E.histolytica,其特異性檢測主要使用商品化的檢測試劑盒,但選用的單抗主要是針對同一抗原決定簇:E.histolytica的Gal/GalNac特異性植物凝集素。孟加拉國E.histolytica高度傳播區(qū)的一些研究顯示抗原檢測的敏感性與PCR檢測結(jié)果相似[5],非高度傳播區(qū)研究顯示其敏感性遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于PCR檢測結(jié)果,到目前為止,在E.histolytica高發(fā)區(qū)適合抗原檢測,但在非高發(fā)區(qū)效果不佳[6]。

    2 分子檢測方法

    最早用于區(qū)分E.histolytica和E.dispar的方法包括兩種普通PCR,主要基于核糖體小亞基RNA(SSU rRNA)[7]和編碼過氧化物酶(30-kDa 蛋白)的基因[8],且這些技術(shù)已廣泛應(yīng)用于世界各地。目前,用于鑒定和區(qū)分E.histolytica和E.dispar的一些更新的方法正在應(yīng)用,主要包括雙重、多重、巢式和實時定量PCR等,另外,還發(fā)展了大量用于檢測E.moskhovskii的方法[9-10]。

    2.1普通PCR 在發(fā)達(dá)國家,PCR方法多用于臨床和流行病學(xué)研究,而且已經(jīng)被WHO高度認(rèn)可。采用PCR方法已經(jīng)在不同的臨床樣品(如糞便、組織和肝膿腫穿刺物)中檢測到了腸道內(nèi)阿米巴原蟲。據(jù)報道,基于SSU rRNA的PCR檢測敏感性大約是最好的ELISA試劑盒檢測的100倍[11]。Edman等[12]用PCR擴(kuò)增編碼125 kDa的表面抗原,這種方法后來配合限制性片段多態(tài)性分析用于區(qū)分不同種類的內(nèi)阿米巴原蟲[13],但這些研究所用的DNA均從實驗室保存的陽性樣品中提取。

    目前有許多針對不同基因的PCR方法用于檢測和區(qū)分E.histolytica/E.dispar/E.moshkovskii,如SSU rRNA、HLY6基因、編碼30-kDa蛋白基因等。由于在E.histolytica和E.dispar的SSU rRNA之間存在著穩(wěn)定的遺傳偏差,因此,SSU rRNA已成區(qū)分蟲種的一個重要靶基因[7]。通過從培養(yǎng)的滋養(yǎng)體和鏡檢陽性樣品中直接提取的DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增證明SSU rRNA可用于檢測內(nèi)阿米巴原蟲,具有很好的敏感性和特異性。由于SSU rRNA具有多拷貝性,且存在于內(nèi)阿米巴原蟲染色體外質(zhì)粒中[14],使其比單拷貝基因的DNA片段更易檢測,目前已廣泛應(yīng)用于內(nèi)阿米巴原蟲的檢測和區(qū)分。

    有人根據(jù)29-kDa/30-kDa抗原基因設(shè)計引物,利用傳統(tǒng)PCR擴(kuò)增來區(qū)分致病性和非致病性內(nèi)阿米巴原蟲[8],該目的基因可用于分析實驗室內(nèi)培養(yǎng)的經(jīng)顯微鏡檢查確認(rèn)的陽性糞便樣品,也可用于實驗室培養(yǎng)物和被福爾馬林固定的糞便樣品的檢測[15]。

    用于PCR擴(kuò)增的其他目的基因包括兩個蛋白質(zhì)編碼基因,這兩個基因在其編碼區(qū)具有多態(tài)性,即富含絲氨酸的E.histolytica蛋白基因(SREPH)[16]和甲殼素基因[17],有人利用鏡檢陽性糞便DNA進(jìn)行基于SREPH基因的巢式PCR擴(kuò)增曾感染一人群的E.histolytica的差異[18],SREPH作為目的基因也已用于實驗室培養(yǎng)物和通過硫酸鋅梯度漂浮濃集后的鏡檢陽性糞便DNA的PCR擴(kuò)增[19]。

    應(yīng)用半胱氨酸蛋白酶基因和肌動蛋白基因作為目的基因的PCR也曾用于阿米巴病的流行病學(xué)研究[20]。另外,基于E.histolytica溶血素基因HLY6的PCR檢測也已發(fā)展用于糞便和肝膿腫樣品中E.histolyticaDNA 的檢測,而且敏感性和特異性均為100% (hemo-PCR)[21]。

    為提高PCR檢測的敏感性,有人用巢式多普勒PCR對糞便鏡檢陽性樣品中的DNA進(jìn)行檢測并區(qū)分E.histolytica和E.dispar,利用這種多普勒技術(shù),其敏感性和特異性分別為94%和100%[22],此法也已成功應(yīng)用于檢測福爾馬林固定樣品中的E.histolytica和E.dispar。利用與生物素探針結(jié)合的特異性引物擴(kuò)增E.histolytica和E.dispar的染色體外環(huán)狀DNA,PCR-ELISA結(jié)果表明在臨床樣品中檢測和區(qū)分這兩種內(nèi)阿米巴原蟲敏感性較高[23]。

    也有研究者利用PCR技術(shù)對肝膿腫樣品中的內(nèi)阿米巴原蟲進(jìn)行檢測,首次用編碼30-kDa抗原基因?qū)Ω文撃[樣品中提取的DNA進(jìn)行E.histolytica的PCR檢測,敏感度為100%。也有人用同樣的引物,發(fā)現(xiàn)敏感度僅33%,而使用另一對針對30-kDa抗原基因的特異性引物,敏感度可達(dá)100%。為驗證使用不同引物進(jìn)行的PCR檢測結(jié)果,有人用10種以前發(fā)表的不同的引物(用來擴(kuò)增肝臟和糞便中的E.histolyticaDNA)直接擴(kuò)增檢測肝膿腫膿汁中的E.histolyticaDNA[24],在這10種引物中,針對E.histolytica的染色體外環(huán)狀DNA的引物p1-p2和針對30-kDa抗原基因的引物p11-p12敏感性為100%;基于溶血素基因HLY6的hemo-PCR用于檢測肝膿腫樣品,其陽性率達(dá)89%,30-kDa抗原基因和18SrDNA的PCR擴(kuò)增,陽性率分別為77%和28%[21],因此,Hemo-PCR成為檢測肝膿腫和糞便樣品中E.histolytica的一種非常有價值的診斷工具。

    對于糞便中的E.moshkovskii的檢測,Haque等首次報道了指紋分析的方法[5],隨后,發(fā)展了基于SSU rRNA的巢式PCR擴(kuò)增后進(jìn)行限制性內(nèi)切酶消化的方法對其進(jìn)行鑒定[9],通過這種方法對采用QIAGEN糞便提取試劑盒直接從糞便中提取的DNA進(jìn)行檢測,敏感性和特異性均達(dá)100%[25]。

    盡管應(yīng)用PCR技術(shù)檢測這些內(nèi)阿米巴原蟲已經(jīng)非常成功,但在常規(guī)診斷中推廣應(yīng)用卻非常有限,其中的重要原因是糞便中DNA的提取困難,而且,DNA的擴(kuò)增和檢測耗時,費錢,另外,環(huán)境和臨床樣品中產(chǎn)生的非特異性DNA片段經(jīng)常會導(dǎo)致假陽性結(jié)果的產(chǎn)生。

    2.2實時定量PCR 實時定量PCR具有可消除PCR擴(kuò)增后的分析、縮短循環(huán)次數(shù)、減少實驗室擴(kuò)增產(chǎn)物的污染和降低試劑成本等優(yōu)點,很適合實驗室診斷。研究者已開始用不同的實時定量PCR對E.histolytica和E.dispar進(jìn)行鑒別診斷,包括應(yīng)用雜交探針檢測SSU rRNA擴(kuò)增產(chǎn)物的Light cycler法和兩種Taqman法,其中一種是針對SSU rRNA,另一種針對游離基因重復(fù)片段的檢測,所檢測樣品均為非人靈長類和人糞便樣品中提取的DNA[26]。已有報道用針對SSU rRNA片段的信標(biāo)實時定量PCR檢測糞便和肝膿腫樣品中的E.histolytica[27]。Qvarnstrom等報道了基于18S rRNA的熒光染料定量PCR檢測方法[28],在這些定量PCR研究中大多數(shù)選擇的靶序列都是rRNA,通過對3種定量PCR方法進(jìn)行了評價,強調(diào)了每種方法的優(yōu)缺點,以及在臨床診斷中的應(yīng)用,該研究還強調(diào)了不同檢測方法的局限性和檢測性能的主要區(qū)別,但該研究中的Light Cycler和針對游離基因的Taqman檢測法不能用于區(qū)分E.histolytica和E.dispar[26]。隨后出現(xiàn)了針對不同腸道寄生蟲檢測的敏感性和特異性均為100%的多重定量PCR,這種方法可檢測E.histolytica、G.lamblia和C.parvum,而且還可推廣至腸道寄生蟲感染的常規(guī)診斷方法[29]。確切的診斷結(jié)果要求檢測樣品的處理和反應(yīng)條件必須標(biāo)準(zhǔn)化,具有國內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)的多普勒或多重PCR方法解決了這個問題。目前針對臨床樣品進(jìn)行E.moshkovskii檢測的定量PCR尚未見報道,需要進(jìn)一步研究。

    盡管定量PCR能敏感到檢測單個細(xì)胞,但一個反應(yīng)中可應(yīng)用的探針數(shù)量有限,因此影響了多目的基因的檢測和基因分析[28]。當(dāng)使用同一引物進(jìn)行定量PCR擴(kuò)增時,如一種樣品的量過大可能會影響第二種樣品的檢測,僅通過使用不同探針來區(qū)分目的基因的多普勒或多重定量PCR不適合在一個反應(yīng)中同時檢測多種微生物,另外,定量PCR與糞便樣品的顯微鏡檢查和抗原檢測相比,費用較高,因此,在E.histolytica流行的貧困地區(qū),很少應(yīng)用定量PCR進(jìn)行檢測,目前在發(fā)達(dá)國家的臨床實驗室中,定量PCR主要用來診斷高危人群的阿米巴痢疾,高危人群包括同性戀、旅游者和來自E.histolytica流行地區(qū)的入境者等。

    2.3基因芯片技術(shù) DNA芯片是用于病原檢測的新技術(shù),其結(jié)果快速、敏感,包括以下4個步驟:DNA提取、目的基因擴(kuò)增、標(biāo)記的DNA與固定在芯片上的寡核苷酸探針雜交和數(shù)據(jù)分析。近年來,寡核苷酸芯片已經(jīng)成功應(yīng)用于許多病原的診斷,它在臨床和流行病學(xué)調(diào)查研究中對寄生蟲的檢測和鑒定具有重要作用。Wang等最早報道的寡核苷酸芯片是在同一反應(yīng)中同時檢測E.histolytica、E.dispar、G.lamblia集聚體A、B和C.parvum1型和2型,具有很高的特異性和敏感性[30]。除了區(qū)分主要基因型之外,這種方法在鑒定和區(qū)分E.moshkovskii和E.histolytica方面非常有效,但是,該研究選用的材料是從不同寄生蟲的標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)株中提取純化的DNA[30],因此,其實際應(yīng)用價值尚需進(jìn)一步研究。近來發(fā)展了一種采用E.histolytica(HM-1:IMSS)的DNA克隆進(jìn)行的基于芯片的基因分型技術(shù)(比較基因組雜交技術(shù)),這是首次對內(nèi)阿米巴分離株的全基因組分析,結(jié)果顯示,此技術(shù)能夠區(qū)分E.histolytica和E.dispar、能鑒定有毒力蟲株的保守基因,還能發(fā)現(xiàn)潛在的基因型-表型關(guān)系[31]。

    芯片技術(shù)目前主要作為一種研究工具,很少應(yīng)用于寄生蟲檢測和鑒別的臨床診斷實驗室。然而,隨著芯片技術(shù)檢測費用的降低,此技術(shù)可能排在寄生蟲研究技術(shù)的前列。

    3 基因分型方法

    臨床研究發(fā)現(xiàn)不同E.histolytica蟲株的致病力存在一定差異,因此有必要對這些蟲株進(jìn)行分型鑒定,確定其是否存在差異,然而,到目前為止,蟲株鑒定工具十分有限。同工酶分析提供了第一種標(biāo)記,但現(xiàn)在已知的同工酶譜不固定,因此,很多已命名的酶譜已不可靠。對于內(nèi)阿米巴原蟲,目前主要是針對SREHP基因、株特異性基因(SSG)、連接tRNA基因的短串聯(lián)重復(fù)和甲殼素基因等進(jìn)行基因分型。

    Clark和Diamond描述了E.histolytica的種內(nèi)變異,根據(jù)來自世界不同地區(qū)的E.histolytica培養(yǎng)物的研究表明SREHP基因和株特異性基因(SSG)具有明顯的多態(tài)性。編碼免疫顯性表面抗原的SREHP基因編碼包括8和12氨基酸串聯(lián)重復(fù),通過糞便和肝臟樣品中提取的DNA進(jìn)行基于SREHP基因的巢式PCR研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),引起腸炎或肝臟疾病的E.histolytica株內(nèi)存在明顯的差異[18],但這些發(fā)現(xiàn)后來遭到了Haghighi等反駁[32]。SSG作為非編碼基因,包含了大小從8~16 bp的串聯(lián)重復(fù)序列,根據(jù)E.histolytica株內(nèi)的重復(fù)數(shù)量可用來鑒別蟲株,由于某些蟲株完全缺失該位點,所以,很難作為種內(nèi)分型標(biāo)記[33]。

    使用連接tRNA基因的短串聯(lián)重復(fù)對E.histolytica進(jìn)行基因分型可有利于對基因型與感染結(jié)果之間的可能關(guān)系進(jìn)行調(diào)查[34]。甲殼素基因[35]是編碼一個退化的7-氨基酸序列串聯(lián)重復(fù)的基因,將其作為一種標(biāo)記物已經(jīng)對不同地域的糞便樣品中提取的DNA進(jìn)行了進(jìn)行E.dispar種群的研究,發(fā)現(xiàn)有不同蟲株的存在[19]。

    其他針對重復(fù)序列的分型方法包括用于檢測種間和種內(nèi)差異的微衛(wèi)星分型法,微衛(wèi)星是包含有像(CT)n這樣簡單基序的DNA片段,微衛(wèi)星分型是利用特異性引物通過PCR擴(kuò)增微衛(wèi)星進(jìn)行的。包含內(nèi)部重復(fù)序列的兩個微衛(wèi)星位點,位點1-2和5-6,對于E.histolytica和E.dispar顯示出了可變的多態(tài)性[36-37],提示這兩個位點可作為E.histolytica和E.dispar流行病學(xué)調(diào)查分子標(biāo)記的潛在可能性。

    指紋分析在E.moshkovskii分離株中顯示出了相當(dāng)大的遺傳差異,有人應(yīng)用EmR引物對E.moshkovskii樣品進(jìn)行多態(tài)性檢測,該研究由于在引物結(jié)合部位顯示出了序列的不同而獲得了一些成功[9]。隨著人糞便中檢測到E.moshkovskii數(shù)量的日益增多,關(guān)于E.moshkovskii分型方面的進(jìn)一步研究將有利于此種阿米巴原蟲感染的流行病學(xué)調(diào)查研究。

    4 小 結(jié)

    由E.histolytica引起的阿米巴病是人和動物感染的最常見的寄生蟲病之一,在過去20多年中,有關(guān)該寄生蟲不同方面的研究為當(dāng)前及今后的研究方向奠定了良好的基礎(chǔ),比如與其關(guān)系較密切的E.dispar和E.moshkovskii等之間的鑒別診斷、E.histolytica的重新定義、E.dispar的重新描述以及來自病人的E.moshkovkii的發(fā)現(xiàn)已經(jīng)很大程度上改變了群落內(nèi)不同內(nèi)阿米巴種類的流行情況。根據(jù)上述診斷方法和基因分型方法的優(yōu)缺點及其使用局限性和可行性,為準(zhǔn)確鑒定和區(qū)分臨床檢驗中的三種內(nèi)阿米巴原蟲,開發(fā)新的方便、易行、快捷、費用低、敏感性高的檢測方法已迫在眉睫,這對于疾病的診斷及其患者的臨床用藥等方面均可起到積極的指導(dǎo)作用,另外,探索出更穩(wěn)定可靠的基因分型方法,對于內(nèi)阿米巴原蟲的分子流行病學(xué)、發(fā)病機(jī)制和傳播機(jī)制等方面的研究將起著至關(guān)重要的作用。

    參考文獻(xiàn):

    [1]Walsh JA. Problems in recognition and diagnosis of amoebiasis: estimation of the global magnitude of morbidity and mortality[J]. Rev Infect Dis, 1986, 8: 228-238. DOI: 10.1093/clinids/8.2.228

    [2]Hamzah Z, Petmitr S, Mungthin M, et al. Differential detection ofEntamoebahistolytica,Entamoebadispar, andEntamoebamoshkovskiiby a single-round PCR assay[J]. J Clin Microbiol, 2006, 44: 3196-3200. DOI: 10.1128/JCM.00778-06

    [3]Haque R, Petri WA Jr. Diagnosis of amebiasis in Bangladesh[J]. Arch Med Res, 2006, 37: 273-276. DOI: 10.1016/j.arcmed.2005.09.001

    [4]Sargeaunt PG, Williams JE, Grene JD. The differentiation of invasive and non-invasiveEntamoebahistolyticaby isoenzyme electrophoresis[J]. Trans R Soc Trop Med Hyg, 1978, 72: 519-521. DOI: 10.1016/0035-9203(78)90159-1

    [5]Haque R, Ali IK, Akther S, et al. Comparison of PCR, isoenzyme analysis, and antigen detection for diagnosis ofEntamoebahistolyticainfection[J]. J Clin Microbiol, 1998, 36: 449-452.

    [6]Stark D, van Hal S, Fotedar R, et al. Comparison of stool antigen detection kits to PCR for diagnosis of amebiasis[J]. J Clin Microbiol, 2008, 46: 1678-1681. DOI: 10.1128/JCM.02261-07

    [7]Clark CG, Diamond LS. Ribosomal RNA genes of ‘pathogenic’ and ‘nonpathogenic’Entamoebahistolyticaare distinct[J]. Mol Biochem Parasitol, 1991, 49: 297-302. DOI: 10.1016/0166-6851(91)90073-F

    [8]Tachibana H, Kobayashi S, Takekoshi M, et al. Distinguishing pathogenic isolates ofEntamoebahistolyticaby polymerase chain reaction[J]. J Infect Dis, 1991, 164: 825-826. DOI: 10.1093/infdis/164.4.825

    [9]Ali IK, Hossain MB, Roy S, et al.Entamoebamoshkovskiiinfections in children, Bangladesh[J]. Emerg Infect Dis, 2003, 9: 580-584. DOI: 10.3201/eid0905.020548

    [10]Nazemalhosseini Mojarad E, Nochi Z, Sahebekhtiari N, et al. Discrimination ofEntamoebamoshkovskiiin patients with gastrointestinal disorders by single-round PCR[J]. Jpn J Infect Dis, 2010, 63: 136-138.

    [11]Troll H, Marti H, Weiss N. Simple differential detection ofEntamoebahistolyticaandEntamoebadisparin fresh stool specimens by sodium acetate-acetic acid-formalin concentration and PCR[J]. J Clin Microbiol, 1997, 35: 1701-1705.

    [12]Edman U, Meraz MA, Rausser S, et al. Characterization of an immuno-dominant variable surface antigen from pathogenic and nonpathogenicEntamoebahistolytica[J]. J Exp Med, 1990, 172: 879-888. DOI: 10.1084/jem.172.3.879

    [13]Tannich E, Burchard GD. Differentiation of pathogenic from nonpathogenicEntamoebahistolyticaby restriction fragment analysis of a single gene amplifiedinvitro[J]. J Clin Microbiol, 1991, 29: 250-255.

    [14]Bhattacharya S, Bhattacharya A, Diamond LS, et al. Circular DNA ofEntamoebahistolyticaencodes ribosomal RNA[J]. J Protozool, 1989, 36: 455-458. DOI: 10.1111/j.1550-7408.1989.tb01080.x

    [15]Rivera WL, Santos SR, Kanbara H. Prevalence and genetic diversity ofEntamoebahistolyticain an institution for the mentally retarded in the Philippines[J]. Parasitol Res, 2006, 98: 106-110. DOI: 10.1007/s00436-005-0024-8

    [16]Stanley SL Jr, Becker A, Kunz-Jenkins C, et al. Cloning and expression of a membrane antigen ofEntamoebahistolyticapossessing multiple tandem repeats[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 1990, 87: 4976-4980. DOI: 10.1073/pnas.87.13.4976

    [17]De la Vega H, Specht CA, Semino CE, et al. Cloning and expression of chitinases ofEntamoebae[J]. Mol Biochem Parasitol, 1997, 85: 139-147. DOI: 10.1016/S0166-6851(96)02817-4

    [18]Ayeh-Kumi PF, Ali IM, Lockhart LA, et al.Entamoebahistolytica: genetic diversity of clinical isolates from Bangladesh as demonstrated by polymorphisms in the serinerich gene[J]. Exp Parasitol, 2001, 99: 80-88. DOI:10.1006/expr.2001.4652

    [19]Ramos F, Garcia G, Valadez A, et al.E.disparstrain: analysis of polymorphism as a tool for study of geographic distribution[J]. Mol Biochem Parasitol, 2005, 141: 175-177. DOI: 10.1016/j.molbiopara.2005.02.010

    [20]Freitas MA, Vianna EN, Martins AS, et al. A single step duplex PCR to distinguishEntamoebahistolyticafromEntamoebadispar[J]. Parasitology, 2004, 128: 625-628. DOI:10.1017/S0031182004005086

    [21]Zindrou S, Orozco E, Linder E, et al. Specific detection ofEntamoebahistolyticaDNA by hemolysin gene targeted PCR[J]. Acta Trop, 2001, 78: 117-125. DOI: 10.1016/S0001-706X(00)00175-3

    [22]Nunez YO, Fernandez MA, Torres-Nunez D, et al. Multiplex polymerase chain reaction amplification and differentiation ofEntamoebahistolyticaandEntamoebadisparDNA from stool samples[J]. Am J Trop Med Hyg, 2001, 64: 293-297.

    [23]Verweij JJ, Van Lieshout L, Blotkamp C, et al. Differentiation ofEntamoebahistolyticaandEntamoebadisparusing PCR-SHELA and comparison of antibody response[J]. Arch Med Res, 2000, 31: 44-46. DOI:10.1016/S0188-4409(00)00221-6

    [24]Zaman S, Khoo J, Ng SW, et al. Direct amplification ofEntamoebahistolyticaDNA from amoebic liver abscess pus using polymerase chain reaction[J]. Parasitol Res, 2000, 86: 724-728. DOI: 10.1007/PL00008558

    [25]Fotedar R, Stark D, Beebe N, et al. PCR detection ofEntamoebahistolytica,Entamoebadispar, andEntamoebamoshkovskiiin stool samples from Sydney, Australia[J]. J Clin Microbiol, 2007, 45: 1035-1037. DOI:10.1128/JCM.02144-06

    [26]Verweij JJ, Oostvogel F, Brienen EA, et al. Prevalence ofEntamoebahistolyticaandEntamoebadisparin northern Ghana[J]. Trop Med Int Health, 2003, 8: 1153-1156. DOI: 10.1046/j.1360-2276.2003.01145.x

    [27]Roy S, Kabir M, Mondal D, et al. Real-time-PCR assay for diagnosis ofEntamoebahistolyticainfection[J]. Clin Microbiol, 2005, 43: 2168-2172. DOI: 10.1128/JCM.43.5.2168-2172.2005

    [28]Qvarnstrom Y, James C, Xayavong M, et al. Comparison of real-time PCR protocols for differential laboratory diagnosis of amebiasis[J]. J Clin Microbiol, 2005, 43: 5491-5497. DOI: 10.1128/JCM.43.11.5491-5497.2005

    [29]Verweij JJ, Blange RA, Templeton K, et al. Simultaneous detection ofEntamoebahistolytica,Giardialamblia, andCryptosporidiumparvumin fecal samples by using multiplex real-time PCR[J]. J Clin Microbiol, 2004, 42: 1220-1223. DOI: 10.1128/JCM.42.3.1220-1223.2004

    [30]Wang Z, Vora GJ, Stenger DA. Detection and genotyping ofEntamoebahistolytica,Entamoebadispar,Giardialamblia, andCryptosporidiumparvumby oligonucleotide microarray[J]. J Clin Microbiol, 2004, 42: 3262-3271. DOI:10.1128/JCM.42.7.3262-3271.2004

    [31]Shah PH, MacFarlane RC, Bhattacharya D, et al. Comparative genomic hybridizations ofEntamoebastrains reveal unique genetic fingerprints that correlate with virulence[J]. Eukaryot Cell, 2005, 4: 504-515. DOI: 10.1128/EC.4.3.504-515.2005

    [32]Haghighi A, Kobayashi S, Takeuchi T, et al. Geographic diversity among genotypes ofEntamoebahistolyticafield isolates[J]. J Clin Microbiol, 2003, 41: 3748-3756. DOI: 10.1128/JCM.41.8.3748-3756.2003

    [33]Sehgal D, Mittal V, Ramachandran S, et al. Nucleotide sequence organisation and analysis of the nuclear ribosomal DNA circle of the protozoan parasiteEntamoebahistolytica[J]. Mol Biochem Parasitol, 1994, 67: 205-214. DOI: 10.1016/0166-6851(94)00129-4

    [34]Ali IK, Zaki M, Clark CG. Use of PCR amplification of tRNA gene-linked short tandem repeats for genotypingEntamoebahistolytica[J]. J Clin Microbiol, 2005, 43: 5842-5847. DOI: 10.1128/JCM.43.12.5842-5847.2005

    [35]Haghighi A, Kobayashi S, Takeuchi T, et al. Remarkable genetic polymorphism amongEntamoebahistolyticaisolates from a limited geographic area[J]. J Clin Microbiol, 2002, 40: 4081-4090. DOI: 10.1128/JCM.40.11.4081-4090.2002

    [36]Pinheiro SM, Maciel RF, Morais MA Jr, et al. Genetic characterization ofEntamoebadisparisolates in Northeast Brazil[J]. Acta Trop, 2005, 4: 35-40. DOI: 10.1016/j.actatropica.2005.01.012

    [37]Zaki M, Meelu P, Sun W, et al. Simultaneous differentiation and typing ofEntamoebahistolyticaandEntamoebadispar[J]. J Clin Microbiol, 2002, 40: 1271-1276. DOI: 10.1128/JCM.40.4.1271-1276.2002

    猜你喜歡
    原蟲阿米巴區(qū)分
    區(qū)分“旁”“榜”“傍”
    你能區(qū)分平衡力與相互作用力嗎
    幾種動物來源的蜱攜帶的細(xì)菌和原蟲的檢測
    用阿米巴開啟提質(zhì)增效魔法
    肉牛常見原蟲病的癥狀及防治分析
    關(guān)于W公司引入阿米巴經(jīng)營的幾點思考
    活力(2019年15期)2019-09-25 07:21:36
    教你區(qū)分功和功率
    基于“阿米巴”經(jīng)營的成本管理實踐
    中國式阿米巴落地實踐之激活組織
    全國新書目(2016年3期)2016-04-20 21:56:32
    水禽常見原蟲病的防治
    松滋市| 合阳县| 房产| 宁国市| 金湖县| 敦煌市| 锦屏县| 恩平市| 教育| 白山市| 崇义县| 育儿| 迁西县| 漳平市| 仁布县| 英吉沙县| 贵港市| 吴旗县| 搜索| 武冈市| 大丰市| 盐亭县| 兴宁市| 从化市| 洪泽县| 绵竹市| 江山市| 富川| 江津市| 绥滨县| 阿克陶县| 义马市| 成安县| 武冈市| 弥渡县| 安溪县| 长垣县| 黄平县| 西宁市| 淮滨县| 大埔区|