■聶金梅 李陽(yáng)源 鐘開(kāi)新
(廣東溢多利生物科技股份有限公司,廣東珠海519060)
本研究首次采用去除基因信號(hào)肽、定點(diǎn)突變、重疊PCR等方法克隆得到來(lái)源于枯草芽孢桿菌的中性甘露聚糖酶基因,采用基因工程手段構(gòu)建篩選得到一株高效分泌表達(dá)甘露聚糖酶的畢赤酵母工程菌株;初步研究了該甘露聚糖酶酶學(xué)性質(zhì),為將枯草芽孢桿菌甘露聚糖酶用作工業(yè)用酶提供參考。
1.1.1 菌株和質(zhì)粒
大腸桿菌Top10、畢赤酵母感受態(tài)細(xì)胞X33、pPICZαA均為本實(shí)驗(yàn)室保存。菌株(Bacillus subtilis編號(hào)GIM 1.259)購(gòu)自廣東省微生物研究所菌種保藏中心。
1.1.2 培養(yǎng)基
LB、LBZ、BMGY培養(yǎng)基參見(jiàn)Invitrogen公司畢赤酵母操作手冊(cè)。
1.1.3 試劑
SacI購(gòu)自Fermentas公司,其它限制酶、DNA聚合酶、T4 DNA連接酶購(gòu)自NEB公司。
1.2.1 設(shè)計(jì)引物
根據(jù)甘露聚糖酶全基因序列,設(shè)計(jì)引物WBmanF/WBmanR;WBman mutF/WBman mutR,引物序列設(shè)計(jì)見(jiàn)表1。
表1 研究所用引物序列
1.2.2 測(cè)定甘露聚糖酶活性方法
吸取2.00 ml經(jīng)過(guò)適當(dāng)稀釋的酶液,37℃平衡10 min,加入2.0 ml槐豆膠溶液(0.5%),37℃平衡10 min,加入到50 ml比色管中,再加入5 mlDNS試劑,電磁振蕩3 s,以終止酶解反應(yīng)。沸水浴加熱5 min,用自來(lái)水冷卻至室溫,加水定容至25 ml,電磁振蕩3 s。以標(biāo)準(zhǔn)空白樣為對(duì)照,在540 nm處測(cè)定吸光度值。酶活性定義:在37℃、pH值5.5條件下,1 min從濃度為1 mg/ml的甘露聚糖溶液中降解釋放1 μmol還原糖所需要的酶量為一個(gè)酶活力單位。
1.2.3 提取枯草芽孢桿菌基因組
枯草芽孢桿菌干粉于營(yíng)養(yǎng)肉汁培養(yǎng)基中復(fù)壯2 d,30℃,靜置培養(yǎng),此為第一代G1;劃線(xiàn)于LB培養(yǎng)基,長(zhǎng)出單菌落,此為第二代G2;將G2代單菌落制成懸液,制備甘油冷凍管G2;挑取單菌落轉(zhuǎn)接斜面菌種,此為工作用菌種G3;制成懸液G3,提取枯草芽孢桿菌基因組,置于-20℃保存。
1.2.4 克隆甘露聚糖酶基因
用枯草芽孢桿菌基因組為模板、引物WBmanF/WBmanR,通過(guò)PCR方法克隆甘露聚糖酶編碼序列(WBMAN),經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳分析,切膠回收約1.1 kb的片段。
1.2.5 定點(diǎn)突變法和重疊PCR法
設(shè)計(jì)一對(duì)突變引物WBman mutF/WBman mutR,采用重疊PCR方法擴(kuò)增其編碼區(qū)基因序列。重疊PCR分四步進(jìn)行,分別為PCR1、PCR2、PCR3和PCR4,PCR3反應(yīng)體系是以PCR1和PCR2作模板兼做引物進(jìn)行擴(kuò)增,共18個(gè)循環(huán);其余PCR擴(kuò)增體系見(jiàn)表2,PCR反應(yīng)條件見(jiàn)表3。
表2 PCR擴(kuò)增體系
表3 PCR反應(yīng)條件
將PCR1和PCR2產(chǎn)物用1%濃度的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分析,分別切膠回收大小約為0.5 kb和0.6 kb的基因片段并純化,置于-20℃保存,具體操作參照PCR純化試劑盒。以上述PCR1和PCR2產(chǎn)物片段為模板和引物,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR3共18個(gè)循環(huán);以PCR3產(chǎn)物為模板,以WBmanF及WBmanR為引物,進(jìn)行PCR4擴(kuò)增,將PCR4產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分析,并切膠回收大小約1.1 kb基因片段,置于-20℃保存。取5 μl純化后的DNA進(jìn)行瓊脂糖電泳分析。
1.2.6 體外構(gòu)建重組質(zhì)粒V-pPIC-WBmanmut
取甘露聚糖酶突變基因 WBmanmut以及pPICZαA各20 μl,用Not1和EcoR1雙酶切(37 ℃、3 h),T4連接酶連接(4℃過(guò)夜),轉(zhuǎn)化大腸桿菌Top10,轉(zhuǎn)化步驟如下:冰上放置30 min,42℃孵育90 s,冰上放置20 min,加1 mlLB培養(yǎng)基后37℃振蕩培養(yǎng)1 h,涂布LBZ平板,37℃培養(yǎng)過(guò)夜,挑取單菌落共20個(gè),采用菌落PCR法鑒定陽(yáng)性克隆子,菌落PCR反應(yīng)條件:94℃、4 min;94 ℃、30 s,60 ℃、30 s,72 ℃、2 min,72 ℃、10 min,30個(gè)循環(huán)。取10 μl PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳分析。對(duì)陽(yáng)性克隆進(jìn)行酶切鑒定以及測(cè)序序列,DNA測(cè)序由深圳華大基因公司完成。
1.2.7 構(gòu)建重組工程菌株
將重組質(zhì)粒V-pPIC-WBmanmut用DpnI線(xiàn)性化,采用電擊法將線(xiàn)性化的V-pPIC-WBmanmut轉(zhuǎn)化至畢赤酵母X33,涂布于YPDZ平板,30℃下靜置培養(yǎng)2~3 d,直至長(zhǎng)出單菌落。
1.2.8 篩選高效分泌表達(dá)的葡萄糖氧化酶畢赤酵母工程菌株
挑取單菌落接種于裝有5 mlBMGY的50 ml離心管中,于28~30 ℃、200 r/min培養(yǎng)至OD600nm為2~6時(shí),添加甲醇至終溶度為0.6%,每隔24 h補(bǔ)加甲醇并留樣,采用測(cè)定酶活性的方法初步篩選高產(chǎn)菌株,再以1%的量接種至裝有50 mlBMGY的500 ml三角瓶中,用雙層紗布封口,于28~30℃、200 r/min的搖床培養(yǎng),復(fù)篩得到一株高效分泌表達(dá)的甘露聚糖酶突變基因工程菌株,將它命名為V-X33-pPIC-WBmanmut。離心收集搖瓶發(fā)酵上清液,進(jìn)行枯草芽孢桿菌甘露聚糖酶的酶學(xué)性質(zhì)研究。
以枯草芽孢桿菌基因組為模板,PCR擴(kuò)增得到甘露聚糖酶基因,切膠純化目的片段(約1 100 bp)(見(jiàn)圖1)。測(cè)序分析由深圳華大基因公司完成,結(jié)果表明甘露聚糖酶基因大小為1 104 bp,編碼362個(gè)氨基酸。該基因與GenBank中已登錄的同類(lèi)基因(NC_014976.1)的氨基酸序列具有95%以上的同源性。
PCR4產(chǎn)物加入Taq酶擴(kuò)增5個(gè)循環(huán),在甘露聚糖酶基因3'端連接polyA尾部結(jié)構(gòu),再與PMD20-T載體連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至Top10,LBZ平板篩選陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子,挑取單菌落進(jìn)行菌液PCR驗(yàn)證(見(jiàn)圖2),提取質(zhì)粒,將稀釋1 000倍的質(zhì)粒作為模板,重疊PCR法擴(kuò)增含突變位點(diǎn)的甘露聚糖酶基因,切膠純化目的片段(見(jiàn)圖3);提取質(zhì)粒,用EcoRI和NotI將重組突變甘露聚糖酶質(zhì)粒和pPICZαA進(jìn)行酶切,用PCR純化試劑盒純化,T4連接酶連接(4℃過(guò)夜),轉(zhuǎn)化至Top10細(xì)胞,LBZ平板篩選陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子,菌液PCR驗(yàn)證后(見(jiàn)圖4),提取質(zhì)粒,用EcoRI和NotI酶切質(zhì)粒應(yīng)得到1.1kb目的基因條帶和3.6 kb載體pPICZαA的基因條帶,酶切產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳鑒定,結(jié)果如圖5所示。
圖1 枯草芽孢桿菌基因組擴(kuò)增甘露聚糖酶產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳
圖2 重組質(zhì)粒甘露聚糖酶PMD20-T PCR鑒定
圖3 枯草芽孢桿菌突變甘露聚糖酶基因PCR產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳
圖4 突變型甘露聚糖酶重組質(zhì)粒PCR鑒定
圖5 突變型甘露聚糖酶重組質(zhì)粒酶切分析
用Dpn1酶切突變型甘露聚糖酶重組質(zhì)粒,柱式純化,將線(xiàn)性化的重組質(zhì)粒電轉(zhuǎn)入畢赤酵母X33感受態(tài)細(xì)胞中,YPDZ平板篩選陽(yáng)性表達(dá)載體。從140個(gè)單菌落中篩選出一株酶活力最高的工程菌株,接種至搖瓶誘導(dǎo)表達(dá)48 h后,產(chǎn)酶活性為120 U/ml。
2.4.1 溫度對(duì)重組β-甘露聚糖酶的影響
在 pH 值 6.0的條件下,分別在 30、40、50、60、70℃,用DNS法測(cè)定重組β-甘露聚糖酶的酶活力,結(jié)果表明,在40℃時(shí)測(cè)定的酶活力最高(見(jiàn)圖6)。
為了研究重組甘露聚糖酶在不同溫度下的穩(wěn)定性,分別將上清液在30、40、45、50、55、60、65、70 ℃ 靜置5 min,然后在40℃、pH值6.0的條件下用DNS法測(cè)定酶的殘存活力,以40℃所測(cè)得的酶活力為100%,結(jié)果顯示,當(dāng)溫度達(dá)到70℃時(shí),剩余酶活力仍保留48%(見(jiàn)圖7)。
2.4.2 pH值對(duì)重組β-甘露聚糖酶的影響
在40 ℃條件下,分別在pH值為3.0、4.0、5.0、6.0、7.0和8.0時(shí),用DNS法測(cè)定重組β-甘露聚糖酶的酶活力,結(jié)果顯示,當(dāng)pH值為6.0時(shí),酶的催化活力最高,以40℃、pH值6.0時(shí)酶的催化活力為100%,pH值5.0~8.0時(shí)相對(duì)催化活力均在最適催化活力的80%以上(見(jiàn)圖8)。
圖6 甘露聚糖酶的最適催化溫度
圖7 甘露聚糖酶的耐溫性能
圖8 甘露聚糖酶的最適催化pH值
為了研究重組β-甘露聚糖酶在不同pH值條件下的穩(wěn)定性,分別將酶液在pH值為3.0、4.0、5.0、6.0、7.0和8.0的緩沖液中,置于4℃靜置4 h,然后在40℃、pH值6.0條件下,用DNS法測(cè)定甘露聚糖酶的殘存活力,以pH值為6.0時(shí)測(cè)得的酶活力為100%,結(jié)果表明,pH值在6.0~8.0范圍內(nèi),剩余酶活力均保留50%以上,具有較好的耐堿性(見(jiàn)圖9)。
2.4.3 金屬離子對(duì)重組β-甘露聚糖酶的影響
在酶上清液中分別加入終濃度為10 mM的Na+、Fe3+、Cu2+、Li+、Mg2+、Ca2+、K+、Mn2+、Fe2+、Zn2+、Co2+、EDTA,室溫靜置20 min后測(cè)定酶的殘余酶活力。以不添加任何離子的酶上清液作對(duì)照,所測(cè)定的酶活力為100%。其它各組所測(cè)定的酶活力結(jié)果見(jiàn)圖10,各種離子對(duì)重組β-甘露聚糖酶的影響各不相同,但均保持59%以上的酶活。
圖9 甘露聚糖酶的耐酸堿性能
圖10 金屬離子以及EDTA對(duì)甘露聚糖酶活性的影響
甘露聚糖酶普遍存在于動(dòng)物、植物和微生物中,其中微生物是甘露聚糖酶的主要來(lái)源,包括細(xì)菌、真菌和放線(xiàn)菌等。其中細(xì)菌包括芽孢桿菌[1]、假單胞菌,真菌中的曲霉菌[2]、里氏木霉菌[3]以及放線(xiàn)菌中的鏈霉菌[4]、酵母[5]等。已發(fā)現(xiàn)100余種來(lái)源于微生物的甘露聚糖酶,在實(shí)際生產(chǎn)和基礎(chǔ)研究中已得到了廣泛應(yīng)用,它具有活性高、成本低、提取方便等優(yōu)點(diǎn)。來(lái)源于不同微生物的甘露聚糖酶性質(zhì)存在一定差異,細(xì)菌來(lái)源的多屬于中性酶,真菌來(lái)源的多為酸性酶。
表4 部分微生物產(chǎn)β-甘露聚糖酶及其酶學(xué)特性
3.2.1 甘露聚糖酶在飼料工業(yè)中的應(yīng)用
甘露聚糖酶可降解β-D-甘露聚糖、破壞植物性飼料細(xì)胞壁,使?fàn)I養(yǎng)物質(zhì)與消化酶充分接觸,提高動(dòng)物內(nèi)源酶(如胰蛋白酶、淀粉酶等)的活性,消除抗?fàn)I養(yǎng)因子的作用,降低動(dòng)物消化道內(nèi)容物黏稠度,改善腸道微生物環(huán)境,改善動(dòng)物的健康狀況,促進(jìn)生長(zhǎng),減少糞便排泄,減輕環(huán)境污染。
3.2.2 甘露聚糖酶用作工具酶
在復(fù)雜多糖中常常有β-甘露糖苷鍵存在,作為工具酶添加β-甘露聚糖酶將其切除,再測(cè)定水解產(chǎn)物中各組分的含量和類(lèi)型,進(jìn)一步進(jìn)行分析便可推測(cè)多糖物質(zhì)可能的結(jié)構(gòu)。
此外,β-甘露聚糖酶可用于食品的加工貯藏和果汁澄清,是一種優(yōu)質(zhì)的食品添加劑。也可應(yīng)用于紙漿的漂白工藝、洗滌工業(yè)以及紡織工業(yè),還可用作油井石油壓裂液的優(yōu)質(zhì)生物破膠劑,具有高效、價(jià)廉、適用范圍廣且對(duì)地層傷害小等優(yōu)點(diǎn)。
本研究從枯草芽孢桿菌基因組中克隆出中性甘露聚糖酶基因,采用定點(diǎn)突變、重疊PCR酶切和連接等方法,體外構(gòu)建重組表達(dá)載體,利用畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)高效穩(wěn)定地表達(dá)甘露聚糖酶,最適作用溫度和pH值分別是40℃和6.0,搖瓶培養(yǎng)誘導(dǎo)表達(dá)48 h后產(chǎn)酶活性為120 U/ml,為枯草芽孢桿菌甘露聚糖酶的應(yīng)用提供參考。