李增波 孫紅艷 趙靜嫻 周劍武 梁棟 高曄
(太原科技大學(xué)化學(xué)與生物工程學(xué)院,太原 030021)
近年來,隨著設(shè)施園藝的迅速發(fā)展,各種植物病害相繼出現(xiàn),其中土傳真菌病害尤為嚴(yán)重,已成為制約設(shè)施農(nóng)業(yè)發(fā)展的重要因素[1]。目前,土傳病害主要采用化學(xué)農(nóng)藥進(jìn)行防治,但防效不佳,且存在易污染環(huán)境、病原菌耐藥性及成本較高等問題,無法適應(yīng)現(xiàn)代農(nóng)業(yè)發(fā)展的需要。放線菌是農(nóng)用抗生素的主要產(chǎn)生菌,其在防治土傳病害、改善植物營養(yǎng)和土壤理化性狀等方面具有顯著作用,正越來越受到人們的關(guān)注和重視[2]。本研究依賴本實(shí)驗(yàn)室建立的放線菌庫,主要針對(duì)目前生產(chǎn)上發(fā)病面積較廣,對(duì)園藝作物生產(chǎn)影響較大的土傳真菌病害,采用瓊脂擴(kuò)散法、生長速率法、孢子萌發(fā)抑制法及離體組織法,篩選高效且活性穩(wěn)定的拮抗菌株,旨在探索新的土傳病害生防途徑,并為商品化生防菌劑的開發(fā)和應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 供試放線菌 通過平皿體外試驗(yàn),從青藏高原土壤中分離純化到的4 500 余株放線菌[3,4]中篩選得到13 株放線菌。
1.1.2 活性檢測(cè)靶標(biāo)菌 辣椒疫霉病菌(Phytophthora capsici,代號(hào)為P3)、黃瓜枯萎病菌(Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum,代號(hào)為H)、西瓜枯萎病菌(Fusarium oxysporum f. sp. niveum,代號(hào)為X)、番茄灰霉病菌(Botrytis cinerea,代號(hào)為F)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureaus,代號(hào)為A)、埃希氏大腸桿菌(Escherichia coli,代號(hào)為E)、青霉(Penicillium,代號(hào)為P)、白色假絲酵母(Candida albicans,代號(hào)為Y)、黑曲霉(Aspergillus niger)、木霉(Trichoderma sp.),均由本實(shí)驗(yàn)室保存。
1.1.3 培養(yǎng)基 肉胨培養(yǎng)基[5]、高氏1 號(hào)培養(yǎng)基[5]、PDA 培養(yǎng)基[5]、改良PDA 培養(yǎng)基[3]、黃豆粉培養(yǎng)基[3]、發(fā)酵培養(yǎng)基(黃豆粉 20 g,蔗糖 3 g,蛋白胨 2 g,淀粉 10 g,酵母膏 2 g,NaCl 2 g,K2HPO41 g,ZnSO40.01 g,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.01 g,MgSO4·7H2O 0.5 g,CaCO32 g,水 1 000 mL,pH7.2),所有試劑均為市售分析純。
1.2.1 拮抗菌株的篩選
1.2.1.1 瓊脂擴(kuò)散法[6]將13 株放線菌分別制成菌懸液,取100 μL 菌懸液涂布接種在黃豆粉培養(yǎng)基上,培養(yǎng)7 d 后,用打孔器打取7 mm 菌餅放入指示菌平板上,設(shè)3 個(gè)平行。于28℃培養(yǎng)3 d 后,十字交叉法測(cè)量抑菌圈直徑。
1.2.1.2 生長速率法[6]將13 株放線菌分別制成孢子懸浮液,孢子懸浮液按10%(V/V)的接種量接種于裝有50 mL 發(fā)酵培養(yǎng)基的300 mL 搖瓶中,28℃,180 r/min 振蕩培養(yǎng)5 d 后,于5 000 r/min 離心,用0.22 μm 濾膜過濾除菌得到無細(xì)胞濾液。取5 mL 無細(xì)胞濾液,按濾液∶培養(yǎng)基=1∶5 的比例與25 mL的PDA 培養(yǎng)基(滅菌后冷卻至50℃左右)混合,待凝固后,將預(yù)先培養(yǎng)5 d 的7 mm 病原菌菌餅(西瓜枯萎、黃瓜枯萎、番茄灰霉、辣椒疫霉)放置于混配平板上,每個(gè)處理3 個(gè)平行,28℃培養(yǎng)72 h 后將培養(yǎng)皿取出,用游標(biāo)卡尺測(cè)量菌落直徑(十字交叉測(cè)量?jī)纱?,取平均值),? 次平行菌落直徑的平均值計(jì)算抑菌率。
1.2.1.3 真菌孢子萌發(fā)情況測(cè)定[7]取上述無細(xì)胞濾液1 mL,加入10 mL 無菌水,分別接入4 種真菌(黑曲霉、青霉、木霉和辣椒疫霉)孢子懸浮液100 μL,孢子濃度為鏡檢時(shí)40 倍視野下孢子數(shù)30-50 個(gè)。28℃培養(yǎng)6 h 后,取50 μL 于載玻片上,在40 倍鏡下觀察孢子萌發(fā)情況(萌發(fā)率和抑制率)。
1.2.1.4 離體葉片法[8]同1.2.1.2 方法得到13 株放線菌的無細(xì)胞濾液。取無細(xì)胞濾液20 mL 加入無菌培養(yǎng)皿,同時(shí)再取一個(gè)無菌培養(yǎng)皿加入20 mL 滅菌清水作為空白對(duì)照。剪取生長整齊一致的植物葉片(辣椒、黃瓜、番茄)用清水洗凈,分別放入裝有以上兩種溶液的平皿中浸泡30 min,取出葉片瀝干濾液,取無菌培養(yǎng)皿,放入一張與平皿大小一致的無菌濾紙,并加入無菌水4 mL,將已晾干的葉片放在吸水濾紙上,把一個(gè)活化好的直徑7 mm 的病原菌菌餅放于葉片上,蓋上平皿置28℃保溫保濕培養(yǎng),檢查葉片染病情況及防治效果。每個(gè)處理50 個(gè)重復(fù)。
1.2.2 拮抗菌株的鑒定
1.2.2.1 形態(tài)特征 采用高氏1 號(hào)平板培養(yǎng)基進(jìn)行埋片培養(yǎng)(30℃,7 d)。取埋片用2.5%戊二醛固定12 h 后,用0.1 mol/L 磷酸鹽緩沖液(pH7.2)漂洗3次,轉(zhuǎn)入1%鋨酸溶液中固定1 h,再用上述緩沖液漂洗3 次,分別經(jīng)50%-100%乙醇梯度脫水,置醋酸異戊酯中20 min,取出,臨界點(diǎn)干燥,噴金后于掃描電子顯微鏡下觀察菌體形態(tài)特征[9]。
1.2.2.2 培養(yǎng)特征和生理生化特征 參照《鏈霉菌鑒定手冊(cè)》推薦的標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)基和常用生理生化方法培養(yǎng)、觀察和記錄[10]。
1.2.2.3 細(xì)胞化學(xué)分析 采用Hasegawa 等[11]和王平[12]改進(jìn)的快速薄層層析法進(jìn)行全細(xì)胞氨基酸及全細(xì)胞水解液糖型的分析。
1.2.2.4 抗藥性測(cè)定 把各種抗生素按一定濃度配制好,待滅完菌的高氏培養(yǎng)基的溫度降低到50℃左右時(shí),再把抗生素加到培養(yǎng)基中充分混勻,倒平板備用。將預(yù)先培養(yǎng)好的菌體用接種針輕輕點(diǎn)接在平板上。以不加抗生素的高氏平板作為陰性對(duì)照,30℃下培養(yǎng)7-14 d 后記錄結(jié)果。培養(yǎng)基中抗生素利福平、諾弗沙星、鏈霉素、紅霉素、氯霉素、氨芐青霉素、卡那霉素、慶大霉素的濃度為0.25 mg/mL,環(huán)丙沙星、青霉素濃度為5.0 mg/mL。
1.2.2.5 基于16S rDNA 基因序列的系統(tǒng)發(fā)育分析 參照文獻(xiàn)[13]的方法提取基因組DNA,然后PCR 擴(kuò)增16S rDNA 基因。其中PCR 擴(kuò)增引物采用通用引物,即正向Pf:5'-AGAGTTTGATCATGGCTCAG-3';反向Pr:5'-TACGGCTACCTTGTTACGACT-3'。PCR 擴(kuò)增條件為:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性1 min,57℃退火1 min,72℃延伸2 min,35 個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。PCR 產(chǎn)物純化與序列測(cè)定由上海生物工程公司完成。16S rDNA 基因測(cè)序后,利用Blast 搜索引擎從GenBank 數(shù)據(jù)庫中調(diào)出相關(guān)放線菌菌株的16S rDNA 基因序列,用Clustal X 軟件進(jìn)行多序列比對(duì)并計(jì)算供試菌株與參比菌株之間的序列相似性,用Mega 3.1 軟件構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。
1.2.3 數(shù)據(jù)分析 采用Excel 2003 及SAS 8.2 進(jìn)行相關(guān)處理的數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)和方差分析。
2.1.1 離體拮抗性試驗(yàn)結(jié)果 為了獲得廣譜活性菌株,通過瓊脂平板拮抗性試驗(yàn),對(duì)13 株供試放線菌進(jìn)行初篩。結(jié)果(表1)顯示,供試13 株放線菌均對(duì)4 種以上的病原菌有拮抗作用,抑菌圈直徑均在14.0 mm 以上。其中對(duì)5 種病原菌有抑制作用的菌株有AL-06、AL-07 和AL-10;對(duì)7 種病原菌有抑制作用的菌株有AL-03、AL-04,其中AL-04 的抑菌圈直徑平均為20.0 mm 以上,表現(xiàn)出較強(qiáng)的生物活性。
表1 13 株放線菌的抑菌圈直徑(mm)
2.1.2 供試菌株對(duì)病原菌菌絲生長的抑制作用 為了篩選到抗病原真菌的高效菌株,采用生長速率法對(duì)上述菌株進(jìn)行驗(yàn)證,結(jié)果(表2)顯示,對(duì)西瓜枯萎病菌(Fusarium oxysporum f. sp. niveum)抑制率達(dá)50%以上的菌株為AL-04、AL-06 和AL-10,其中AL-10 菌株的抑制率為93.9%;對(duì)黃瓜枯萎病菌(Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum)抑制率達(dá)50%以上的菌株為AL-04、AL-05、AL-08 和AL-10,其中AL-04 的抑制率為85.7%;對(duì)番茄灰霉病菌(Botrytis cinere)抑制率達(dá)50%以上的菌株為AL-04、AL-10,其中AL-10 的抑制率為77.8%;對(duì)辣椒疫霉病菌(Phytophthora capsici)抑制率達(dá)50%以上的菌株為AL-02、AL-03、AL-04、AL-05、AL-06、AL-10、AL-11 和AL-13,其中AL-02 的抑制率為95.3%。由此可知,供試13 株拮抗菌中,對(duì)4 種病原病菌抑制效果(抑制率>70%)的高效菌株為AL-04 和AL-10。
表2 13 株放線菌對(duì)4 種靶標(biāo)菌的抑菌率(%)
2.1.3 供試菌株對(duì)指示菌孢子萌發(fā)的抑制作用 依據(jù)稻瘟篩選模型,以黑曲霉(Aspergillus niger)、木霉(Trichoderma sp.)、青霉(Penicillium)和辣椒疫霉(Phytophthora capsici)作為指示菌,通過測(cè)定供試菌株發(fā)酵濾液對(duì)其孢子萌發(fā)率的影響,篩選抗植物病原真菌的高效拮抗菌株。結(jié)果(表3)顯示,13 株放線菌的發(fā)酵濾液對(duì)4 種指示菌孢子的萌發(fā)均有不同程度的抑制作用。抑制率均達(dá)到70.0%以上的菌株有AL-03、AL-04、AL-06、AL-07 和AL-10。同生長速率法結(jié)果一致,AL-04 和AL-10 兩株菌仍顯示出高效的拮抗活性。
表3 13 株放線菌對(duì)4 種靶標(biāo)菌孢子萌發(fā)的抑制率(%)
2.1.4 離體葉片試驗(yàn)結(jié)果 在生防菌的篩選過程中,經(jīng)常會(huì)遇到室內(nèi)試驗(yàn)與田間試驗(yàn)結(jié)果差距較大等問題,因而有必要建立離體植物組織篩選模式,以檢測(cè)生防菌的活性和生防效果。離體組織測(cè)定法是介于體外抗菌活性測(cè)定法和植物測(cè)定法之間的一種測(cè)定方法,它既可保證一定數(shù)量的菌株篩選,也能使測(cè)定條件比較接近大田條件。離體葉片法是離體組織測(cè)定法中最常用的一種方法,離體葉片法與植株法比較具有占用空間小、試驗(yàn)條件容易控制、方便、快速等優(yōu)點(diǎn),是室內(nèi)抗性鑒定的好方法。
辣椒、黃瓜、番茄均為常見園藝作物,其易受病害危害且材料容易獲取,因此取其進(jìn)行離體葉片測(cè)定試驗(yàn)。結(jié)果(表4)顯示,供試13 株放線菌對(duì)辣椒疫霉病菌、黃瓜枯萎病菌、番茄灰霉病菌的抑制作用有所不同:AL-02、AL-04、AL-10 和AL-11發(fā)酵液對(duì)辣椒疫霉的防治效果均在70.0%以上,其中AL-04 的 防 治 效 果 達(dá)90.0%;AL-04、AL-08 和AL-10 發(fā)酵液對(duì)番茄灰霉病菌均有抑制作用,防治效果在60%以上,其中AL-04 和AL-10 的防治效果為70.0%;AL-04、AL-05 和AL-10 發(fā)酵液對(duì)黃瓜枯萎病菌有抑制作用,其中,AL-05 和AL-10 的防治效果為70.0%,AL-04 的防治效果為80.0%。
從上述4 種方法的活性檢測(cè)試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),AL-04菌株始終表現(xiàn)出很強(qiáng)的生物活性,因此選定AL-04菌株進(jìn)行下一步的研究。
表4 13 株放線菌對(duì)供試植物葉片的防治效果(%)
2.2.1 形態(tài)特征 AL-04 放線菌在高氏1 號(hào)培養(yǎng)7 d,菌落呈白色至淡灰色、致密表面、邊緣光滑平坦(圖1-A)。光鏡和掃描電鏡觀察發(fā)現(xiàn),該菌株基絲發(fā)育良好,呈現(xiàn)淺黃色,多分枝,無橫隔,不斷裂,氣絲生長旺盛,呈現(xiàn)淡紫灰色,寬0.4-0.5 μm,在氣絲上生有長孢子鏈,為松弛疏螺旋,孢子鏈長,分化為孢子,孢子球形至卵圓型,表面光滑無刺,直徑0.5 μm 左右(圖1-B 和1-C)。
2.2.2 培養(yǎng)特征 AL-04 菌株在葡萄糖-天冬酰胺瓊脂上基內(nèi)菌絲為乳白色,氣生菌絲發(fā)達(dá)為淺橄欖石灰;在甘油-蘋果酸鈣瓊脂上,基內(nèi)菌絲為杏仁黃,氣生菌絲為繭白色;在淀粉-酪蛋白瓊脂上,基內(nèi)菌絲為荔肉白色,氣生菌絲為灰白色;在察貝克氏瓊脂上,基內(nèi)菌絲為豆汁黃色,氣生菌絲為鴿子灰色;在麥芽汁-酵母膏瓊脂(ISP2)上,基內(nèi)菌絲為乳白色,氣生菌絲為艾綠色;在燕麥片瓊脂(ISP3)上,基內(nèi)菌絲為蓮子白色,氣生菌絲為銀灰色;在酵母膏-淀粉瓊脂上,基內(nèi)菌絲為蚌肉白色,氣生菌絲為灰白色;在無機(jī)鹽-淀粉瓊脂(ISP4)上,基內(nèi)菌絲為淡繭黃色,氣生菌絲為淡紫灰色;在甘油-天冬酰胺瓊脂(ISP5)上,基內(nèi)菌絲為乳白色,氣生菌絲為淡綠色;在馬鈴薯塊上,基內(nèi)菌絲為橄欖石灰色,氣生菌絲為淡紫灰色。該菌在各培養(yǎng)基上均無可溶性色素產(chǎn)生。
2.2.3 唯一碳、氮源利用和生理生化特征 AL-04菌株能利用D-葡萄糖、D-木糖、D-果糖、鼠李糖、蔗糖、DL-肌醇、D-甘露醇、半乳糖、乳糖、麥芽糖、甘露糖、甘油、山梨醇、丙酮酸、丁二酸鈉等碳源,不利用L-阿拉伯糖、棉子糖、醋酸鈉、檸檬酸鈉、草酸鈉、馬尿酸鈉、酒石酸鈉;可以利用酪氨酸、絲氨酸、DL-天冬氨酸、甘氨酸、甲硫氨酸、丙氨酸、精氨酸、谷氨酸、苯丙氨酸、腺嘌呤、尿素、KNO3、NaNO3、(NH4)2SO4等氮源。該菌能使明膠液化和分解纖維素,并使石蕊變藍(lán)和淀粉水解,硝酸鹽還原和卵磷脂酶反應(yīng)陽性,不胨化和凝固牛奶,不產(chǎn)生H2S 和黑色素。最適生長溫度為24-32℃,低于14℃和高于38℃則停止生長。
2.2.4 細(xì)胞壁氨基酸分析 AL-04 菌株細(xì)胞壁中含有L-DAP(L 型二氨基庚二酸)和甘氨酸,屬于Ⅰ型細(xì)胞壁,符合鏈霉菌屬(Streptomyces)的化學(xué)分類特性。
2.2.5 耐藥性分析 AL-04 菌株能在利福平、環(huán)丙沙星、諾氟沙星、紅霉素、氯霉素、青霉素、氨芐青霉素的平板上生長,不能在鏈霉素慶、大霉素、卡那霉素的平板上生長。
圖2 基于16S rDNA 的系統(tǒng)發(fā)育樹
2.2.6 分子鑒定結(jié)果 菌株AL-04 的16S rDNA 核酸序列長度為1 448 bp,GenBank 登錄號(hào)為JN368424。通過與NCBI 中模式菌株的16S rDNA 序列比對(duì)分析和系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建(圖2),發(fā)現(xiàn)菌株AL-04 與殺真菌素鏈霉菌(Streptomyces fungicidicus)的4 個(gè)菌株在進(jìn)化樹上位于同一個(gè)分支,其中與Streptomyces fungicidicus MML1614(EU344795)同源性達(dá)到99.6%。因此,參照鏈霉菌的分類鑒定手冊(cè),結(jié)合菌株AL-04 的形態(tài)特征、培養(yǎng)特征、生理生化特征以及細(xì)胞壁化學(xué)分析,將菌株AL-04 歸為殺真菌素鏈霉菌(Streptomyces fungicidicus)。
活性菌株初篩法多采用平皿拮抗測(cè)定和活體植株測(cè)定,前者雖反映離體抑菌作用,但與盆栽及大田植株測(cè)定結(jié)果相關(guān)性很低,而后者工作量又太大,影響篩選進(jìn)度。本研究采用蔬菜離體葉片平皿培養(yǎng)測(cè)定法則可彌補(bǔ)兩者不足之處,它可以把體外無效、體內(nèi)有效的活性菌株篩選出來,極大地縮短初篩周期并提高篩選的準(zhǔn)確性。在該方法的基礎(chǔ)上再進(jìn)行盆栽及大田測(cè)定,可顯著減少工作量,提高篩選水平。
實(shí)踐證明,新型高效農(nóng)用抗生素的發(fā)現(xiàn)與新的篩選模型的構(gòu)建關(guān)系緊密。如以觀察稻瘟菌分生孢子或菌絲形態(tài)生長異常為指標(biāo)的簡(jiǎn)易微管測(cè)試體系[16],篩選出多種具有抗有絲分裂、抗真菌活性的新化合物,其中rhizoxin 和fusaridin A 已開發(fā)為抗腫瘤、抗真菌新藥[17,18]。國內(nèi)的林厚文等[19]利用該模型篩選到海兔中抗有絲分裂活性組分;鮑時(shí)翔等[20]參照該模型建立了鐮刀菌篩選模型,并將其與腫瘤細(xì)胞毒篩選模型組合,應(yīng)用于海洋微生物抗腫瘤活性物質(zhì)的篩選。孢子萌發(fā)法篩選病原真菌的拮抗菌株時(shí),常常需要培育病原菌的孢子,但其培養(yǎng)存在費(fèi)時(shí)費(fèi)力和離體條件毒性不高的弊端,能否采用更簡(jiǎn)潔的方法用于活性菌株的篩選,特別是應(yīng)用于大量備選菌株庫的初篩工作,是菌株篩選過程中亟待解決的問題。本研究借鑒稻瘟菌篩選模型,以黑曲霉、木霉和青霉3 種常見非植物病原真菌和植物病原真菌辣椒疫霉作為指示菌,進(jìn)行孢子萌發(fā)抑制試驗(yàn)。結(jié)果顯示,對(duì)4 種指示菌孢子萌發(fā)抑制率均達(dá)到70.0%以上的活性菌株占供試菌株總數(shù)的38.5%,這部分活性菌株對(duì)3 種非植物病原真菌孢子萌發(fā)抑制率達(dá)到73%-98%,同時(shí)對(duì)病原真菌的孢子萌發(fā)抑制率也達(dá)到了70%-88%,說明活性菌株對(duì)非病原真菌和病原真菌的抑制作用存在一定的偶聯(lián)關(guān)系,而且黑曲霉、木霉和青霉產(chǎn)孢子比辣椒疫霉產(chǎn)孢子更加容易,檢測(cè)時(shí)從加樣到觀察所需時(shí)間更短(前者只需6-10 h,而后者一般要12-16 h)。因此,上述試驗(yàn)結(jié)果提供了一個(gè)農(nóng)用抗生素篩選模型的新思路,即活性菌株若對(duì)易培養(yǎng)真菌孢子萌發(fā)有抑制作用,其很可能對(duì)病原真菌孢子也存在一定的抑制作用。因此,在實(shí)際操作過程中,可以選擇易培養(yǎng)的非病原真菌作為初篩工作的靶標(biāo)菌,從而縮短篩選周期。本研究結(jié)果是對(duì)該思路的一個(gè)初步探索,其驗(yàn)證工作還有待進(jìn)一步的研究。
參照稻瘟菌篩選模型,以非植物病原真菌和植物病原真菌作為指示菌,篩選到一株具有廣譜的抗菌活性的菌株AL-04,其對(duì)幾種常見的園藝植物土傳病害病原真菌都有較強(qiáng)的抑制效果,抑制率超過70.0%,其中對(duì)辣椒疫霉病菌(Phytophthora capsici)抑制率高達(dá)93.0%,有較高的應(yīng)用價(jià)值。經(jīng)形態(tài)、培養(yǎng)特征、生理生化特征、全細(xì)胞壁氨基酸和糖型分析以及16S rDNA 序列聚類分析,將AL-04 鑒定為殺真菌素鏈霉菌(Streptomyces fungicidicus)。
[1] 李忠, 張翊, 吳小毛, 等.植物土傳病害生防細(xì)菌的篩選、鑒定及特性研究[J].河南農(nóng)業(yè)科學(xué), 2013, 42(4):103-106.
[2] 武志杰, 梁文舉, 李培軍, 等.我國無公害農(nóng)業(yè)的發(fā)展現(xiàn)狀及對(duì)策[J].科技導(dǎo)報(bào), 2001, 2:47-50.
[3] 顏霞, 朱銘莪, 薛泉宏, 等.西藏亞高山草原土壤放線菌研究[J].西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 1999, 8(2):97-101.
[4] 蔡艷, 薛泉宏, 陳占全, 等.青海省保護(hù)地辣椒根際土壤和根表放線菌研究[J].應(yīng)用與環(huán)境工程學(xué)報(bào), 2003, 9(1):92-96.
[5] 程麗娟, 薛泉宏, 來航線, 等.微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M].西安:世界圖書出版社, 2000.
[6] 韓斯琴. D2-4 放線菌的篩選及其抗生物質(zhì)研究[D].沈陽:中國科學(xué)院沈陽應(yīng)用生態(tài)研究所, 2003.
[7] 胡志鈺.海洋動(dòng)植物共附生放線菌農(nóng)抗活性物質(zhì)的初步研究[D]. 廈門:廈門大學(xué), 2001.
[8] 丁立孝, 何國慶, 孔青.一種新的農(nóng)用抗生素初篩方法[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2002, 10(4):409-410.
[9] 康振生.植物病原真菌的超微結(jié)構(gòu)[M].北京:中國科學(xué)技術(shù)出版社, 1996.
[10] 中國科學(xué)院微生物研究所放線菌分類組.鏈霉菌分類手冊(cè)[M].北京:科學(xué)出版社, 1975.
[11] Hasegawa T, Takizawa M, Tanid AS. A rapid analysis for chemical grouping of aerobic actinomycetes[J]. Gen Appl Microbiol, 1983, 29(4):319-322.
[12] 王平.測(cè)定放線菌菌體中氨基酸和單糖的快速方法-薄層層析法[J].微生物學(xué)通報(bào), 1986, 13:228-230.
[13] 徐平, 李文均, 徐麗, 等.微波法快速提取放線菌基因組DNA[J].微生物學(xué)通報(bào), 2003, 4:82-84.
[14] 方中達(dá).植病研究方法[M]. 第3 版. 北京:中國農(nóng)業(yè)出版社, 1998.
[15] 孔建, 王文夕, 趙白鴿.枯草芽孢桿菌B-903 菌株的研究Ⅰ對(duì)植物病原菌的抑制作用和防治試驗(yàn)[J].中國生物防治, 1999, 15(4):157-161.
[16] Kobayashi H, Namikoshi M, Yoshimoto T, et al. A screening method for antimitotic and antifungal substances using conidia of Pyricularia oryzae, modification and application to tropical marine fungi[J]. Journal of Antibiotics, 1996, 49(9):873-879.
[17] Tsuruo T, Oh-hara T, Lida H, et al. Rhizoxin, a macrocyclic lactone antibiotic, as a new antitumor agent against human and murine tumor cells and their vincristine-resistant sublines[J]. Cancer Research, 1986, 46:381-385.
[18] Kobayashi H, Sunaga R, Furihata K. Isolation and structures of an antifungal antibiotic, fusarielin A, and related compounds produced by a Fusaruim sp.[J]. Journal of Antibiotics, 1995, 48(1):42-52.
[19] 林厚文, 湯海峰, 易楊華, 等.利用稻瘟霉分生孢子篩選海兔抗有絲分裂活性組分[J].中國中藥雜志, 2002, 27(1):53-55.
[20] 鮑時(shí)翔, 林茂, 黃惠琴, 等.利用組合篩選模型篩選海洋微生物抗腫瘤活性物質(zhì)[J].中國海洋藥物, 2003, 22(1):45-48.