廖成成, 臧 寧, 班建東, 唐景財(cái), 何 敏, 李 力
(1. 廣西醫(yī)科大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院,廣西 南寧530000;2. 廣西醫(yī)科大學(xué)醫(yī)學(xué)科學(xué)實(shí)驗(yàn)中心,廣西 南寧530021;3. 廣西壯族自治區(qū)藥用植物園,廣西 南寧530023)
哮喘嚴(yán)重危害人類健康,發(fā)病人數(shù)逐年增加,預(yù)防和控制任務(wù)艱巨。 《本草綱目》記載蛤蚧(gecko)可用于虛喘氣促,臨床和民間應(yīng)用均顯示其可用于治療支氣管哮喘[1]。目前普遍認(rèn)為免疫失調(diào)是引發(fā)該病的重要原因。本研究通過(guò)觀察黑斑蛤蚧對(duì)過(guò)敏性哮喘小鼠血清中白介素4(IL-4)、白介素5 (IL-5)以及干擾素γ (IFN-γ)的影響,探討蛤蚧對(duì)BALB/c 哮喘模型小鼠的治療作用,進(jìn)一步為黑斑蛤蚧的治療提供理論依據(jù)。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 4 周齡SPF 級(jí)雌性BALB/c 小鼠購(gòu)自廣東省醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心(實(shí)驗(yàn)動(dòng)物合格證號(hào):0046242),10 只1 籠,繼續(xù)喂養(yǎng)至體質(zhì)量25 ~30 g。
1.2 試劑與藥物 卵白蛋白(Ovalbumin,OVA)購(gòu)自Sigma 公司;氫氧化鋁(上海生化試劑廠);地塞米松(天津天藥藥業(yè)股份有限公司);生理鹽水(廣西醫(yī)科大學(xué)制藥廠);ELISA 試劑盒(上海西塘生物科技有限公司);黑斑蛤蚧粉由廣西藥用植物園提供,產(chǎn)地為廣西大新縣寶圩鄉(xiāng)。蛤蚧除去內(nèi)臟,60 ℃置烘箱內(nèi)烘干,粉碎成粉末。
1.3 儀器 酶標(biāo)儀為BioRad 公司的iMark680,超聲霧化器(402B)為江蘇魚躍醫(yī)療設(shè)備股份有限公司產(chǎn)品;自制小鼠霧化吸入箱材料為塑料,尺寸為(55 cm×35 cm ×30 cm)。
1.4 方法
1.4.1 哮喘模型的制備 50 只BALB/c 小鼠,10只為正常對(duì)照,不參與建模,其余40 只參照參考文獻(xiàn)[2-6]方法,小鼠分別于第1、第7 和第14天腹腔注射200 μL 內(nèi)含10 μg OVA、40 mg 氫氧化鋁的生理鹽水致敏。第15 天開(kāi)始將上述小鼠一起置于霧化箱中,以1%OVA 生理鹽水霧化激發(fā)。霧化器動(dòng)力為1.7 MHz,霧化率為2 mL/min,每天1次,每次30 min,共激發(fā)14 d。觀察小鼠是否出現(xiàn)煩躁、呼吸急促、哮鳴音、腹肌抽搐及口唇紫紺等癥狀,參與建模的小鼠均出現(xiàn)不同程度的上述癥狀,說(shuō)明建模成功。
1.4.2 動(dòng)物分組與給藥 50 只BALB/c 小鼠隨機(jī)分為10 只正常對(duì)照組及40 只哮喘模型組。建模成功的哮喘模型組被隨機(jī)分為3 組:黑點(diǎn)蛤蚧干預(yù)組、地塞米松干預(yù)組、生理鹽水組,每組10 只。最后一次致敏后第2 天開(kāi)始給藥,黑斑蛤蚧組小鼠給藥劑量為1 g/kg,6 g 黑斑蛤蚧干粉加100 mL 生理鹽水調(diào)和,每只小鼠(按30 g 體質(zhì)量)0.5 mL灌胃給藥。地塞米松組給藥劑量為0.20 mg/mL,每只小鼠(按30 g 體質(zhì)量)0.5 mL 灌胃給藥。生理鹽水組及正常對(duì)照組均以生理鹽水0.5 mL 灌胃給藥。各組連續(xù)給藥7 d。
1.4.3 血清樣本制備 給藥結(jié)束后第2 天,3 組小鼠摘除眼球取血,室溫靜置1 h;于40 ℃,1 500 r/min 離心10 min,吸取血清,分裝后凍存于-20 ℃。
1.4.4 血清中IL-5、IL-4、IFN-γ 的測(cè)定 采用ELISA 雙抗體夾心法測(cè)定,按試劑盒操作說(shuō)明書進(jìn)行檢測(cè)。
2.1 正常對(duì)照組與生理鹽水組的Th1,Th2 失衡分析 IFN-γ 代表Th1 型細(xì)胞因子,IL-4、IL-5 代表Th2 型細(xì)胞因子,可通過(guò)小鼠血清細(xì)胞因子的變化分析建模后Th1、Th2 失衡的情況。如表1 所示,生理鹽水組較正常對(duì)照組IL-4 和IL-5 水平均有顯著升高(P <0.05),IFN-γ 則有顯著降低(P <0.05)。
表1 正常對(duì)照組與生理鹽水組小鼠血清中IL-4、IL-5 和IFN-γ 變化(±s)Tab.1 Changes of IL-4,IL-5 and IFN-γ between the control group and saline group in mice serum (±s)
表1 正常對(duì)照組與生理鹽水組小鼠血清中IL-4、IL-5 和IFN-γ 變化(±s)Tab.1 Changes of IL-4,IL-5 and IFN-γ between the control group and saline group in mice serum (±s)
注:與正常對(duì)照組比較,* P <0.05
組別 動(dòng)物數(shù)IL-5/(pg·mL -1)IL-4/(pg·mL -1)IFN-γ/(pg·mL -1)10 13.00 ±2.09 14.60 ±3.50 389.76 ±22.34生理鹽水組 10 48.09 ±7.23* 47.18 ±4.46* 135.18 ±20.01正常對(duì)照組*
2.2 干預(yù)后各組小鼠血清中IL-5、IL-4、IFN-γ 的變化 黑斑蛤蚧干預(yù)組、地塞米松干預(yù)組與生理鹽水組相比較,IL-4 和IL-5 水平均有顯著降低(P <0.05),IFN-γ 則有顯著提高(P <0.05);黑斑蛤蚧干預(yù)組與地塞米松干預(yù)組比較,地塞米松下調(diào)IL-4 和IL-5 水平和上調(diào)IFN-γ 水平的作用均強(qiáng)于黑斑蛤蚧(P <0.05),見(jiàn)表2。
表2 干預(yù)后各組小鼠血清中IL-4、IL-5 和IFN-γ 變化(±s)Tab.2 Changes of IL-4,IL-5 and IFN-γ after the intervention (±s)
表2 干預(yù)后各組小鼠血清中IL-4、IL-5 和IFN-γ 變化(±s)Tab.2 Changes of IL-4,IL-5 and IFN-γ after the intervention (±s)
注:與生理鹽水組比較,* P <0.05;與地塞米松干預(yù)組比較,ΔP <0.05
組 別 動(dòng)物數(shù) IL-5/(pg·mL -1) IL-4/(pg·mL -1) IFN-γ/(pg·mL -1)黑斑蛤蚧干預(yù)組 10 22.93 ±1.33* Δ 15.12 ±2.87* Δ 325.66 ±27.17*Δ地塞米松干預(yù)組 10 17.00 ±3.36* 11.60 ±2.82* 353.11 ±25.24*生理鹽水組10 48.09 ±7.23 47.18 ±4.46 135.18 ±20.01
2.3 各組小鼠干預(yù)后Th1、Th2 相關(guān)的細(xì)胞因子相關(guān)性分析 IL-4 和IL-5 屬于Th2 系統(tǒng)的細(xì)胞因子,而IFN-γ 屬于Th1 系統(tǒng)的細(xì)胞因子。為比較蛤蚧在干預(yù)過(guò)程中是否因IL-4 和IL-5 與IFN-γ 水平失衡的關(guān)系導(dǎo)致哮喘癥狀減輕,對(duì)Th1、Th2 相關(guān)的細(xì)胞因子相關(guān)性進(jìn)行分析。
黑斑蛤蚧干預(yù)組的IFN-γ 水平分別與IL-4、IL-5 水平呈負(fù)相關(guān)(r = -0.61, -0.71),IL-4、IL-5 水平呈正相關(guān)(r=0.62),P 值均<0.05。地塞米松干預(yù)組的IFN-γ 水平分別與IL-4、IL-5 水平呈負(fù)相關(guān)(r = -0.76, -0.75),IL-4、IL-5 水平呈正相關(guān)(r=0.76),P 值均<0.05。生理鹽水組IFN-γ 水平分別與IL-4、IL-5 水平呈負(fù)相關(guān)(r =-0.53,-0.62),IL-4、IL-5 水平呈正相關(guān)(r =0.65),P 值均<0.05。見(jiàn)表3。
表3 小鼠血清細(xì)胞因子相關(guān)性分析Tab.3 Correlational analysis of cytokines in mice serum
2.4 黑斑蛤蚧與地塞米松的療效比較 IL-4 和IL-5 屬于Th2 系統(tǒng)的細(xì)胞因子,而IFN-γ 屬于Th1 系統(tǒng)的細(xì)胞因子。為比較蛤蚧在干預(yù)過(guò)程中對(duì)Th1/Th2 的影響,Th1/Th2 的平衡情況通過(guò)IFN-γ/ IL-4和IFN-γ/ IL-5 反映。如表4 所示,3 組比較,地塞米松干預(yù)組與黑斑蛤蚧干預(yù)組的IFN-γ/ IL-4 和IFN-γ/ IL-5 均比生理鹽水組有顯著升高 (P <0.05),兩組間比較,地塞米松干預(yù)組較黑斑蛤蚧干預(yù)組有顯著升高(P <0.05),而黑斑蛤蚧干預(yù)組較生理鹽水組有顯著提高(P <0.05)。
表4 黑斑蛤蚧與地塞米松的療效比較(±s)Tab.4 Comparison of therapeutic effects between blackspotted geckos and dexamethasone (±s)
表4 黑斑蛤蚧與地塞米松的療效比較(±s)Tab.4 Comparison of therapeutic effects between blackspotted geckos and dexamethasone (±s)
注:與生理鹽水組比較,* P <0.05;與黑斑蛤蚧干預(yù)組比較,ΔP <0.05
組別 動(dòng)物數(shù) (IFN-γ/IL-4) (IFN-γ/IL-5)黑斑蛤蚧干預(yù)組 10 22.30 ±4.96* 14.27 ±1.62*地塞米松干預(yù)組 10 30.44 ±9.16* Δ 20.77 ±5.86* Δ生理鹽水組10 2.87 ±0.65 2.81 ±0.76
目前認(rèn)為Th1/Th2 細(xì)胞平衡失調(diào),機(jī)體正常的免疫耐受功能受損,從而導(dǎo)致免疫細(xì)胞及其成分對(duì)機(jī)體自身組織結(jié)構(gòu)和功能的破壞,是哮喘發(fā)病的基礎(chǔ)[7]。其失衡的程度與哮喘的發(fā)病關(guān)系密切。其中IFN-γ 及IL-4、IL-5 是調(diào)節(jié)Th1/Th2 細(xì)胞平衡重要細(xì)胞因子。IL-4 是Th2 細(xì)胞的特征性細(xì)胞因子,由Th0 細(xì)胞產(chǎn)生,誘導(dǎo)Th0 細(xì)胞向Th2 細(xì)胞轉(zhuǎn)化[8],并且可調(diào)控Th1 細(xì)胞向Th2 細(xì)胞分化[9]。IL-5 主要調(diào)節(jié)嗜酸性粒細(xì)胞生長(zhǎng)、分化及其活性的細(xì)胞因子。研究表明,在小鼠氣管內(nèi)注入IL-5 可引起肺嗜酸性粒細(xì)胞明顯增多及誘導(dǎo)氣道增生或化生的黏液細(xì)胞凋亡增加[10]。IFN-γ 對(duì)IL-4 的拮抗作用可能是通過(guò)阻斷GATA-3 的表達(dá),抑制IL-4、IL-5 的合成從而降低體內(nèi)IgE 的水平[11]。在哮喘發(fā)生時(shí),高水平的IL-5 在IL-4 條件下可促使Th0細(xì)胞向Th2 分化,并且可間接抑制Th1 分泌IFNγ、IL-2 等炎癥抑制因子,阻礙Th0 細(xì)胞向Th1 分化,造成Th1/Th2 的失衡而引發(fā)哮喘[12]。通過(guò)調(diào)節(jié)哮喘Th1 和Th2 細(xì)胞因子的平衡,從而逆轉(zhuǎn)Th1/Th2 失衡或許是治療哮喘的新途徑。
目前,哮喘的治療仍有爭(zhēng)議,糖皮質(zhì)激素治療是目前公認(rèn)的最有效的藥物治療,尤其是吸入糖皮質(zhì)激素可下調(diào)氣道上皮炎癥因子的表達(dá)[13]。雖然效果明顯,但是長(zhǎng)期使用糖皮質(zhì)激素治療會(huì)產(chǎn)生嚴(yán)重的副作用。
本研究顯示,黑斑蛤蚧對(duì)哮喘小鼠進(jìn)行干預(yù)后,Th1 型細(xì)胞因子IFN-γ 水平顯著升高,而Th2型細(xì)胞因子IL-4、IL-5 水平顯著降低,并且IFN-γ和IL-4、IL-5 均呈現(xiàn)出負(fù)相關(guān)性,表明黑斑蛤蚧對(duì)哮喘模型小鼠外周血Th1/Th2 系統(tǒng)具有一定的免疫調(diào)節(jié)作用。同時(shí)研究數(shù)據(jù)也顯示,地塞米松干預(yù)組與黑斑蛤蚧干預(yù)組相比較,黑斑蛤蚧下調(diào)IL-4和IL-5 水平和上調(diào)IFN-γ 水平的作用均不及地塞米松。黑斑蛤蚧藥用部位是去除內(nèi)臟的全身,中醫(yī)認(rèn)為具有助陽(yáng)益精、補(bǔ)肺益腎、納氣定喘的功效。近年來(lái)許多研究表明,蛤蚧具有抗腫瘤、平喘、性激素樣、抗炎等作用,本研究針對(duì)黑斑蛤蚧對(duì)哮喘模型的作用,初步探討其作用機(jī)制。對(duì)蛤蚧在哮喘治療中的免疫調(diào)節(jié)相關(guān)性還需作進(jìn)一步探討,明確其有效成分、劑量、療效,為臨床應(yīng)用提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
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