邱小燕,原現(xiàn)軍,郭剛,3,聞愛友,余成群,巴桑,邵濤*
(1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院飼草調(diào)制加工與貯藏研究所,江蘇 南京210095;2.懷化學(xué)院生命科學(xué)系,湖南 懷化418100;3.山西農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院,山西 太谷030800;4.中國科學(xué)院地理科學(xué)與資源研究所,北京100101;5.西藏日喀則地區(qū)草原工作站,西藏 日喀則857000)
奶牛養(yǎng)殖業(yè)是西藏畜牧業(yè)的重要組成部分,直接關(guān)系到西藏農(nóng)業(yè)經(jīng)濟的發(fā)展。西藏自然條件惡劣,土壤貧瘠,冬寒期長達7個多月,優(yōu)質(zhì)飼草資源匱乏,長期以來奶牛飼養(yǎng)水平低,影響了其生長發(fā)育及生產(chǎn)性能。發(fā)酵全混合日糧(fermented total mixed ration,F(xiàn)TMR)[1]是厭氧條件下發(fā)酵而成、營養(yǎng)均衡的全價飼料,可以有效地利用飼草資源,提高奶牛產(chǎn)奶量、乳蛋白率和能量轉(zhuǎn)化率。西藏是我國青稞的主產(chǎn)區(qū),每年伴隨大量的青稞秸稈產(chǎn)生,利用其調(diào)制成FTMR飼料既可為奶牛提供營養(yǎng)均衡的日糧,又可以擴大飼料來源。青稞秸稈水溶性碳水化合物含量低、粗纖維含量高,影響了FTMR的發(fā)酵品質(zhì),同時在FTMR轉(zhuǎn)運及開窖飼喂過程中,易發(fā)生有氧變質(zhì),降低FTMR飼料的適口性和營養(yǎng)價值。因此,研究提高FTMR飼料的發(fā)酵品質(zhì)和有氧穩(wěn)定性對促進西藏FTMR技術(shù)的推廣與應(yīng)用,實現(xiàn)奶牛養(yǎng)殖業(yè)的健康持續(xù)發(fā)展具有重要意義。
糖蜜是一種常用的青貯發(fā)酵促進劑,能為乳酸菌提供發(fā)酵底物,促進乳酸快速生成,迅速降低pH值,有效地抑制其他有害微生物的活性,使青貯飼料能長期保存[2]。Cao等[3]在FTMR飼料中添加4%的糖蜜改善了其發(fā)酵品質(zhì)。乙酸是青貯過程中的主要產(chǎn)物之一,許多研究[4-6]認為乙酸能抑制酵母菌等有害微生物的活性,減少營養(yǎng)成分的損失,提高青貯飼料的有氧穩(wěn)定性,延緩青貯飼料從開窖到飼喂過程的有氧腐敗。
本試驗旨在研究添加糖蜜、乙酸對FTMR發(fā)酵品質(zhì)和有氧穩(wěn)定性的影響,篩選出適宜的添加劑,以指導(dǎo)優(yōu)質(zhì)FTMR的生產(chǎn),促進西藏奶牛業(yè)的健康持續(xù)發(fā)展。
如表1所示,F(xiàn)TMR由青稞(Hordeumvulgare)秸稈、全株燕麥(Arrhenatherumelatius)、紫花苜蓿(Medi-cagosativa)和精料配制而成,水分約50%左右。青稞、燕麥和紫花苜蓿種植于西藏山南地區(qū)貢嘎縣崗堆鎮(zhèn)吉那奶牛試驗場,于2012年9月23日刈割,青稞秸稈為青稞去除籽實后的秸稈,全株燕麥處于乳熟期,紫花苜蓿處于第2茬初花期。精料由玉米、全棉籽、菜籽粕、玉米酒糟、維生素和礦物質(zhì)預(yù)混料等組成,由吉納奶牛場配制。FTMR配方中原料的化學(xué)成分如表2所示。
試驗采用實驗室青貯罐,容積為15L的塑料容器。試驗設(shè)對照組(無添加),乙酸添加組(A,為無水乙酸,純度>99.5%,0.3%鮮重),糖蜜添加組(M,3%鮮重),乙酸和糖蜜組合添加組(AM,0.3%+3%鮮重),青貯45d后,打開青貯窖取樣分析發(fā)酵品質(zhì),同時打開剩余的全部青貯罐,有氧暴露6,9和12d后,分別取樣分析有氧穩(wěn)定性,每個處理各個時間點5個重復(fù),共計80個實驗室青貯罐。
1.3.1 FTMR的調(diào)制 青稞秸稈、全株燕麥和紫花苜蓿用鍘刀切成1~2cm后,按照試驗設(shè)計與精料充分混合均勻后,每個實驗室青貯罐均裝填9.0kg TMR飼料,壓實密封,室溫18~25℃條件下保存。
1.3.2 原料營養(yǎng)成分及微生物分析 將原料于65℃烘箱中烘60h以上至恒重,測定干物質(zhì)(dry matter,DM)含量[7];粗蛋白(crude protein,CP)含量采用凱氏定氮法測定[8];中性洗滌纖維和酸性洗滌纖維含量用范氏纖維分析法(Van Soest)測定[8];粗脂肪含量采用殘余法測定[9];粗灰分含量采用灼燒法測定[8];水溶性碳水化合物含量(water-soluble carbohydrates,WSC)采用蒽酮-硫酸比色法測定[8];乳酸菌、好氧性細菌和酵母菌數(shù)量分別采用 MRS(de-Man Rogosa Sharpe)瓊脂培養(yǎng)基、營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基、馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基計數(shù),乳酸菌37℃厭氧培養(yǎng)3d,好氧性細菌和酵母菌用生化培養(yǎng)箱37℃培養(yǎng)2d。
1.3.3 發(fā)酵品質(zhì)分析 青貯45d后打開實驗室青貯罐,取出全部FTMR充分混勻,采用四分法稱取140g加入280g的去離子水,4℃浸提24h,然后通過2層紗布和定性濾紙過濾,pH值用HANNA pH211型pH計測定;乳酸含量(lactic acid,LA)用對-羥基聯(lián)苯比色法測定[10];揮發(fā)性脂肪酸(volatile fatty acids,VFAs),包括乙酸(acetic acid,AA)、丙酸(propionic acid,PA)、丁酸(butyric acid,BA),采用高效氣相色譜儀(日本島津 GC-14B)[8]測定;氨態(tài)氮含量(ammonia nitrogen,NH3-N)采用苯酚-次氯酸鈉比色法測定[11]。
表1 FTMR的原料構(gòu)成及化學(xué)、微生物成分Table 1 Ingredient and chemical and microorganism composition of fermented total mixed ration(FTMR)silages
1.3.4 有氧穩(wěn)定性分析 實驗室青貯罐打開后,取出全部飼料,使空氣充分浸入,有氧放置6,9和12d后,采用四分法稱取140g樣品,分析各項指標(biāo)及好氧性微生物和酵母菌數(shù)量。
對發(fā)酵品質(zhì)試驗數(shù)據(jù)進行單因子方差分析(One way-ANOVA),并用鄧肯法(Duncan)對各處理進行多重比較;有氧穩(wěn)定性數(shù)據(jù)采用SAS軟件中的一般線性模型(GLM)進行兩因素(添加劑,時間,添加劑×?xí)r間)方差分析,并對各添加劑處理及有氧暴露天數(shù)間數(shù)據(jù)分別進行多重比較(P<0.05)。
如表2所示,青稞秸稈有較高的NDF和ADF及較低的粗蛋白含量,全株燕麥顯示較高的水溶性碳水化合物含量。FTMR干物質(zhì)含量接近500g/kg FW,粗蛋白和水溶性碳水化合物含量分別為173.00和60.08g/kg。乳酸菌和好氧性微生物數(shù)量均大于5lg cfu/g,而酵母菌數(shù)量小于5lg cfu/g(表1)。
表2 FTMR配方中青稞秸稈、燕麥、紫花苜蓿、精料的化學(xué)成分Table 2 Chemical composition of hulless barley straw,oat,alfalfa and concentrate used in fermented total mixed ration silages
表3 FTMR飼料的發(fā)酵品質(zhì)Table 3 Fermentation quality of fermented total mixed ration silages
由表3可見,發(fā)酵45d后各組發(fā)酵品質(zhì)均良好,干物質(zhì)含量無顯著差異(P>0.05),pH值均降至4.30左右。雖各組間乳酸含量無顯著差異(P>0.05),但A和AM組均不同程度降低了乳酸含量。添加劑處理組均具有較高的乙酸含量,其中A和AM組乙酸含量顯著(P<0.05)高于對照組。相應(yīng)地,各處理組乳酸/乙酸均低于對照組,其中A和AM組顯著低于(P<0.05)對照組。各組均僅檢測到微量丙酸含量。各添加組丁酸含量均低于對照組,其中A和AM組略低于M組,但各組間差異均不顯著(P>0.05)。無論糖蜜單獨添加還是與乙酸組合添加均降低了氨態(tài)氮/總氮,其中單獨添加組氨態(tài)氮/總氮顯著低于對照組(P<0.05)。
如表4所示,隨著有氧暴露時間的延長,對照組和M組乳酸含量緩慢下降,而A和AM組乳酸含量呈先上升后下降的變化趨勢。相應(yīng)地,各組pH值均呈上升趨勢,其中對照組和M組上升幅度較大,有氧暴露12d后上升至5.70和6.50,顯著高于(P<0.05)A和AM組。各組乙酸含量在整個有氧暴露階段呈下降趨勢。A和AM組氨態(tài)氮/總氮隨著有氧暴露時間的延長緩慢上升(P>0.05),而對照組和M組氨態(tài)氮/總氮均在有氧暴露后第6天已顯著(P<0.05)高于初始值,之后繼續(xù)上升,到有氧暴露12d后,對照組和M組氨態(tài)氮/總氮顯著(P<0.05)高于A和AM組。A和AM組水溶性碳水化合物呈下降趨勢(P>0.05)變化,而對照組和M組水溶性碳水化合物在有氧暴露前9d顯著(P<0.05)下降,之后基本趨于穩(wěn)定(P>0.05),在有氧暴露第12天,A組和對照組分別顯示最高和最低的水溶性碳水化合物含量。在有氧暴露之初(0d),各組乳酸菌數(shù)量始終處于較高水平(>8lg cfu/g),之后各組均不同程度下降,其中M和AM組在第6天已顯著降低(P<0.05)。而對照組和A組乳酸菌數(shù)量顯著下降(P<0.05)出現(xiàn)在有氧暴露第9天。各組好氧性微生物數(shù)量均隨著有氧暴露時間的延長呈上升(P>0.05)趨勢,其中A和AM組好氧性微生物始終顯示較低數(shù)量,M組在有氧暴露12d后顯示最高的好氧性微生物數(shù)量(P<0.05)。對照組和M組酵母菌數(shù)量分別在第12和6天顯著(P<0.05)升高,而A和AM組酵母數(shù)量緩慢增加(P>0.05),其中A和AM組酵母菌數(shù)量始終處于較低水平。
表4 FTMR開窖后的pH值、乳酸、乙酸、水溶性碳水化合物含量、氨態(tài)氮/總氮及微生物數(shù)量的變化Table 4 Changes in pH value,lactic acid,acetic acid and water soluble carbohydrates contents of fermented total mixed ration silages during exposed to the air
青貯45d后對照組pH值為4.27,未能降至常規(guī)成功青貯要求的臨界值以下(4.2),各添加劑處理組pH值也均高于4.2,這是由于乳酸菌活性與青貯材料的干物質(zhì)含量有關(guān)[2],Morgan等[12]將青貯玉米的干物質(zhì)含量由175g/kg提高至360g/kg,抑制了乳酸菌的活性,結(jié)果乳酸含量由165g/kg降至34g/kg,pH值由4.00上升至5.09,但仍然能很好地保存。許多研究也證實,當(dāng)干物質(zhì)含量較高時,即使青貯飼料pH值在4.5左右,亦能使其得到好的保存[13-14]。較高的干物質(zhì)含量也可抑制丁酸菌和大腸桿菌等有害微生物的生長[2],進而降低其對發(fā)酵底物、蛋白質(zhì)和氨基酸等營養(yǎng)成分的降解。本試驗中,所有FTMR干物質(zhì)含量均高于450g/kg,發(fā)酵45d后各組pH 值均低于4.30,且顯示較低的丁酸(≤2g/kg DM)和氨態(tài)氮(≤100g/kg TN)含量[15],說明青貯環(huán)境處于穩(wěn)定狀態(tài),可以達到長期保存的目的[16]。
添加糖蜜并未顯著提高乳酸含量,這可能是由于FTMR水溶性碳水化合物(60.08g/kg DM)足以滿足乳酸菌發(fā)酵,這一點可以從對照組及乙酸添加組青貯結(jié)束時仍有部分水溶性碳水化合物殘留得到證實。榮輝等[17]在對生長65d的象草(Pennisetumpurpureum)青貯時,發(fā)現(xiàn)可溶性碳水化合物含量為57.8g/kg DM,能保證象草青貯飼料良好的發(fā)酵品質(zhì)。
添加乙酸(包括單獨添加和組合添加)降低了乳酸含量,這可能是由于同型乳酸菌對乙酸耐受性比較低,抑制了青貯過程中乳酸的生成[18]。McDonald和Henderson[19]研究發(fā)現(xiàn),揮發(fā)性脂肪酸可抑制青貯過程中乳酸菌活性,降低乳酸含量。Randby[20]研究了甲酸和乙酸對貓尾草(Setariaviridis)、牛尾草(Festucaelatior)和紅三葉(Trifoliumpratense)不同比例混合青貯發(fā)酵品質(zhì)的影響,也發(fā)現(xiàn)甲酸和乙酸均能抑制乳酸發(fā)酵,而乙酸效果不及甲酸。本試驗中乙酸添加組丁酸含量略低于對照,這可能歸因于乙酸對丁酸菌的抑制作用。Danner等[4]在關(guān)于青貯飼料有氧穩(wěn)定性研究中,指出丁酸菌能夠降解水溶性碳水化合物和蛋白質(zhì)生成丁酸和氨態(tài)氮,而高濃度的乙酸可以抑制丁酸菌的活性,從而降低丁酸的濃度。
有氧暴露階段pH值的變化能直觀反映出青貯飼料的腐敗速度和程度,較低的pH值能夠有效抑制蛋白質(zhì)的降解[21]。對照組和M組pH值有氧暴露9d后顯著升高至5.70和6.50,A和AM組pH值在有氧暴露階段緩慢上升,12d后pH值僅達到4.5左右,顯著低于對照組和M組,這表明對照組和M組有氧暴露9d后開始腐敗,而A和AM組有氧暴露12d后FTMR品質(zhì)仍屬良好。本試驗中有氧暴露過程中對照組和M組乳酸含量逐漸下降,這是由于實驗室青貯窖開封后,F(xiàn)TMR厭氧環(huán)境被打破,好氧性微生物開始大量繁殖,它們以乳酸、水溶性碳水化合物為底物,產(chǎn)生有機酸,并釋放二氧化碳和熱量,導(dǎo)致青貯飼料溫度上升,進而加劇了青貯飼料腐敗變質(zhì)的進程[22]。Britt等[23]在玉米青貯時添加不同比例甲酸和丙酸,發(fā)現(xiàn)青貯期間抑制了乳酸菌活動,降低了乳酸含量,而開封后由于甲酸與丙酸的揮發(fā)和代謝,導(dǎo)致乳酸菌可以繼續(xù)利用青貯過程中節(jié)省的發(fā)酵底物,從而在有氧暴露14d后出現(xiàn)一個乳酸含量高峰,本研究由于有氧暴露階段好氧微生物活躍,乙酸對乳酸菌的抑制作用相對減弱,部分乳酸菌利用FTMR中剩余的WSC繼續(xù)產(chǎn)生乳酸,因而A和AM組在有氧暴露期間乳酸含量先上升后下降。Wilkinson和Davies[24]指出未解離短鏈脂肪酸以被動運輸?shù)男问竭M入微生物細胞內(nèi)部,之后釋放H+降低內(nèi)部pH,從而殺死細胞,抑制真菌等微生物的生長繁殖,而乙酸的解離程度低于乳酸,可以有效抑制青貯飼料有氧暴露階段酵母、霉菌和真菌的生長繁殖,因此,乙酸含量已成為預(yù)測青貯有氧穩(wěn)定性優(yōu)劣的主要指標(biāo)之一。本試驗乙酸添加組始終顯示較低的氨態(tài)氮/總氮、好氧性微生物和酵母菌數(shù)量,且乙酸添加組有較高的水溶性碳水化合物含量,這均歸因于乙酸對有氧階段有害微生物的抑制作用。Driehuis等[25]指出乙酸對酵母菌有雙重作用,即厭氧階段乙酸抑制酵母菌的存活,有氧階段乙酸抑制酵母菌的活性,乙酸濃度在36.0~50.0g/kg DM能夠有效地抑制有氧腐敗。Schmidt和Kung[26]在玉米青貯時添加布氏乳桿菌,發(fā)現(xiàn)青貯物中含有較高濃度的乙酸是青貯有氧穩(wěn)定性提高的基本原因,且乙酸濃度越高,有氧腐敗的時間相應(yīng)地延長。
綜上所述,青貯45d后,各組FTMR飼料均具有良好的發(fā)酵品質(zhì),雖然添加乙酸降低了乳酸含量,但與對照相比無顯著性差異,發(fā)酵品質(zhì)良好。有氧暴露9d后,對照組和糖蜜添加組開始發(fā)生有氧腐敗,而添加乙酸提高了有氧穩(wěn)定性,pH值、好氧性微生物和酵母菌數(shù)量在整個有氧暴露的過程始終維持在較低水平,可使FTMR飼料良好地保存12d以上。因此,為了獲得品質(zhì)優(yōu)良的FTMR飼料,可在生產(chǎn)FTMR時添加0.3%的乙酸既不影響發(fā)酵品質(zhì),也可提高其有氧穩(wěn)定性。
[1]Tran T M K,Vasupen K,Bureenok S,etal.Effect of fibrolytic enzymes supplementation on rumen fermentation and digestibility in dair cow fed straw-based diet[J].Journal of Agriculture Science,2012,2(4):141-144.
[2]McDonald P,Henderson A R,Heron S J E.The Biochemistry of Silage(2th ed)[M].Aberystwyth:Cambrian Printers Ltd,1991.
[3]Cao Y,Toshiyoshi T,Ken H,etal.Effect of adding lactic acid bacteria and molasses on fermentation quality and in vitro ruminal digestion of total mixed ration silage prepared with whole crop rice[J].Japanese Society of Grassland Science,2010,56(10):19-25.
[4]Danner H,Holzer M,Mayrhuber E,etal.Acetic acid increases stability of silage under aerobic conditions[J].Applied and Environmental Microbiology,2003,69(1):562-567.
[5]Kung L J,Yanjit N K.The effect ofLactobacillusbuchneriand other additives on the fermentation and aerobic stability of barley silage[J].Journal of Dairy Science,2001,84(5):1149-1155.
[6]Driehuis F,Oude Elferink S J W H,Spoelstra S F.Anaerobic lactic acid degradation during ensilage of whole crop maize inoculated withLactobacillusbuchneriinhibits yeast growth and improves aerobic stability[J].Journal of Applied Microbiology,1999,87(4):585-594.
[7]原現(xiàn)軍,王奇,李志華,等.添加糖蜜對青稞秸稈和多年生黑麥草混合青貯發(fā)酵品質(zhì)及營養(yǎng)價值的影響[J].草業(yè)學(xué)報,2013,22(3):116-123.
[8]Madrid J,Martinez A,Hernandez F,etal.A comparative study on the determination of lactic acid in silage juice by colorimetric,high-performanee liquid chromatography and enzymatic methods[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,1999,79(2):1722-1726.
[9]原現(xiàn)軍,余成群,李志華,等.添加青稞酒糟對西藏地區(qū)青稞秸稈和高羊茅混合青貯發(fā)酵品質(zhì)的影響[J].草業(yè)學(xué)報,2012,21(2):92-98.
[10]王奇,余成群,辛鵬程,等.葦狀羊茅和箭筈豌豆混合青貯發(fā)酵品質(zhì)的研究[J].草業(yè)學(xué)報,2012,20(5):952-956.
[11]Shao T,Zhang Z X,Shimojo M,etal.Comparison of fermentation characteristics of italian ryegrass(LoliummultiflorumLam.)and guineagrass(PanicummaximumJacq.)during the early stage of ensiling[J].Asian-Australasian Journal of Ani-mal Sciences,2005,18(12):1727-1734.
[12]Morgan C A,Edwards R A,McDonald P.Intake and metabolism studies with fresh and wilted silages[J].Journal of Agricultural Science,1980,94(2):287-298.
[13]Meeske R,van der Merwe G D,Greyling J F,etal.The effect of adding an enzyme containing lactic acid bacteria inoculant to big round bale oat silage on intake,milk production and milk composition of Jersey cows[J].Animal Feed Science and Technology,2002,97(3-4):159-167.
[14]原現(xiàn)軍,余成群,李志華,等.西藏青稞秸稈與多年生黑麥草混合青貯發(fā)酵品質(zhì)的研究[J].草業(yè)學(xué)報,2012,21(4):325-330.
[15]王奇,余成群,李志華,等.添加酶和乳酸菌制劑對西藏葦狀羊茅和箭筈豌豆混合青貯發(fā)酵品質(zhì)的影響[J].草業(yè)學(xué)報,2012,21(4):186-191.
[16]榮輝,余成群,陳杰,等.添加綠汁發(fā)酵液、乳酸菌制劑和葡萄糖對象草青貯發(fā)酵品質(zhì)的影響[J].草業(yè)學(xué)報,2013,22(3):108-115.
[17]榮輝,徐安凱,下條雅敬,等.初次刈割象草青貯發(fā)酵品質(zhì)動態(tài)[J].草地學(xué)報,2009,17(4):537-539.
[18]Yuan X J,Yu C Q,Shimojo M,etal.Improvement of fermentation and nutritive quality of straw-grass silage by inclusion of wet hulless-barely distillers’grain in Tibet[J].Asian-Australia journal Animal Science,2012,25(4):479-485.
[19]McDonald P,Henderson A R.The use of fatty acids as grass silage additives[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,1974,25(7):791-795.
[20]Randby A T.The effect of some acid-based additives applied to wet grass crops under various ensiling conditions[J].Grass and Forage Science,2000,55(4):289-299.
[21]王力生,齊永玲,陳芳,等.不同添加劑對筍殼青貯發(fā)酵品質(zhì)和營養(yǎng)價值的影響[J].草業(yè)學(xué)報,2013,22(5):326-332.
[22]Filya,Sucu E.The effects of lactic acid bacteria on the fermentation,aerobic stability and nutritive value of maize silage[J].Grass Forage Science,2010,65(4):446-455.
[23]Britt D G,Huber J T,Rogers A L.Fungal growth and acid production during fermentation and refermentation of organic acid treated corn silages[J].Journal of Dairy Science,1975,58(4):532-539.
[24]Wilkinson J M,Davies D R.The aerobic stability of silage:key findings and recent developments[J].Grass and Forage Science,2012,68(1):1-19.
[25]Driehuis F,Oude Elferink S J W H,Van Wikselaar P G.Fermentation characteristics and aerobic stability of grass silage inoculated withLactobacillusbuchneri,with or without homofermentative lactic acid bacteria[J].Grass and Forage Science,2001,56(4):330-343.
[26]Schmidt R J,Kung L.The effects ofLactobacillusbuchneriwith or without a homolactic bacterium on the fermentation and aerobic stability of corn silages made at different locations[J].Journal of Dairy Science,2010,93(4):1616-1624.