齊元麟,張明芳,胡建石,徐劍文,林建銀
(福建醫(yī)科大學1.基礎醫(yī)學院分子醫(yī)學研究中心,消化道惡性腫瘤教育部重點實驗室,2.生理學與病理生理學系,3.人體解剖學與組織胚胎學系,福建 福州 350004)
整合素(integrin)是細胞膜上一類重要的跨膜糖蛋白,介導細胞間及細胞-基質(zhì)間的黏附,控制細胞的增殖、凋亡和分化,而影響胚胎發(fā)育、創(chuàng)傷愈合及腫瘤生成和轉(zhuǎn)移等過程[1-2]。去整合素(disintegrin)是蛇毒中一類含有RGD模體的多肽,能阻斷整合素與配體的結(jié)合,具有抑制血小板聚集、抑制骨吸收及抑制腫瘤轉(zhuǎn)移與血管新生等生物學功能[3-5],其藥物開發(fā)潛力引起關(guān)注[6-8]。
本研究選擇來自竹葉青(Trimeresurus stejnegeri)的trigramin(竹葉青素)作為研究對象,合成竹葉青素基因并在大腸桿菌中表達、純化和鑒定,同時從竹葉青蛇毒中分離純化天然竹葉青素作為對照,為研究蛇毒去整合素生物學活性和可能的開發(fā)應用提供基礎。
1.1 細胞株 人膀胱癌細胞株ECV304由本實驗室保種,培養(yǎng)條件為:含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,37℃和5%CO2飽和濕度培養(yǎng)。
1.2 主要試劑 竹葉青蛇毒,淡黃色凍干粉,產(chǎn)地:江西;胎牛血清,杭州四季青公司;DMEM培養(yǎng)基、青鏈霉素,Invitrogen公司;BL21工程菌、pET-42a載體、BugBuster HT、rLysozyme、還原型谷胱甘肽,羅氏公司;Spe I、Xho I限制性內(nèi)切酶,New England Biolabs公司;CCK-8試劑盒,同仁化學研究所;GSTrap FF親和層析柱、Sephacryl S-300分子篩層析柱,GE Healthcare公司;Lichrospher C18層析柱,Merck公司。其余試劑均為進口或國產(chǎn)分析純。
1.3 竹葉青素全基因合成 將竹葉青素Trigramin序列(NCBI accession number:X51530.1)分為相互重疊的4個片段,分別合成相應寡核苷酸A、B、C、D,并設計相應引物 ABF、ABR、CDF、CDR。取 A、B、ABF、ABR 各10 pmol加入1×PCR Buffer中,100℃變性2 min,在2.5 h內(nèi)緩慢退火至37℃,然后加入Taq酶,常規(guī)PCR擴增拼接AB片段。如法拼接CD后,利用合成的AB和CD片段進一步拼接完成全序列。產(chǎn)物進一步克隆入pUC19載體,并經(jīng)測序驗證。引物序列見Tab 1。
Tab 1 List of primers for gene synthesis
1.4 竹葉青素的原核表達 將Trigramin從pUC19載體亞克隆到pET-42a表達載體的Spe I和Xho I位點,抽提質(zhì)粒,轉(zhuǎn)化工程菌BL21,篩選單克隆接種至搖瓶,以2.5 mmol·L-1IPTG誘導蛋白表達。Phoretid 1D軟件分析蛋白相對表達量。
1.5 重組竹葉青素的純化 重組竹葉青素轉(zhuǎn)化菌和空質(zhì)粒pET-42a轉(zhuǎn)化菌經(jīng)IPTG誘導4 h后,離心收集細菌沉淀并稱重,加入BugBuster HT裂解細菌(每克菌體加入5 ml試劑),同時加入溶菌酶(rLysozyme)至終濃度1 kU/ml,溫和裂解,去除沉淀,上清液上樣于GSTrap FF親和層析柱,以Tris緩沖液(50 mmol·L-1Tris,10 mmol·L-1還原型谷胱甘肽)洗脫目的蛋白。
1.6 天然蛇毒中竹葉青素的分離純化 竹葉青粗毒0.5 g溶于5 ml 0.05 mol·L-1的Tris緩沖液(pH 8.0),16 000×g離心15 min,棄去不溶的沉淀,取上清液上樣于Sephacryl S-300預裝柱(2.6 cm×60 cm),在AKTA prime純化系統(tǒng)上進行凝膠過濾層析。將分子篩分離得到的具有抑制血小板聚集活性的組分上樣于Lichrospher C18 4.6/250反相色譜柱,經(jīng)兩次反相高效液相色譜分離,得到純化的竹葉青素。SDS-PAGE鑒定蛋白均一性。
1.7 血小板聚集實驗 人的靜脈血樣采自健康志愿者的肘前靜脈,離心法制備富血小板血漿(PRP)和貧血小板血漿(PPP)。用PPP稀釋PRP使血小板終濃度為3×108·L-1。在200 μl PRP中分別加入不同濃度的天然或重組竹葉青素,在MPG-3E血液凝聚儀中測定血小板聚集率。計算抑制率的公式如下:
繪制劑量-效應曲線,求得半數(shù)抑制濃度(IC50),IC50定義為聚集受抑制達到最大值的一半時的竹葉青素的終濃度。
1.8 細胞增殖實驗 取對數(shù)生長期的細胞,制成單細胞懸液(1×108·L-1),接種至96孔板,每孔100 μl,每組細胞設5個復孔。37℃和5%CO2實驗條件下常規(guī)培養(yǎng)。對照組為完全培養(yǎng)基,Trigramin組、GST-Control組和GST-Trigramin分別為含10 mg·L-1天然竹葉青素、100 mg·L-1GST對照蛋白和100 mg·L-1重組竹葉青素的完全培養(yǎng)基,d 1、2、3、4、5分別取出一塊板檢測,每孔加入 CCK-8 10 μl,37℃培養(yǎng)1 h后,酶標儀上檢測450 nm處的光吸收度,繪制細胞生長曲線。
1.9 細胞劃痕實驗 用250 μl/well的Fibronectin(10 mg·L-1)包被24孔培養(yǎng)板,37℃孵育2 h,超凈臺風干1 h,每孔加入250 μl含0.1%BSA的無血清培養(yǎng)液,37℃孵育1 h。將常規(guī)傳代的細胞消化洗滌后,以每孔2×105個的密度接種入包被好的24孔板,細胞融合后換成無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)12 h,使細胞同步化。用移液器吸頭沿培養(yǎng)板底部呈“一”字型劃痕,鏡下記錄劃痕區(qū)相對距離,PBS輕輕洗滌兩次以去除細胞碎片,無血清培養(yǎng)液洗滌后,更換含2%血清的培養(yǎng)基(實驗組分別為含2%血清的10 mg·L-1天然竹葉青素、100 mg·L-1GST對照蛋白和100 mg·L-1重組竹葉青素),培養(yǎng)24 h,觀察劃痕區(qū)細胞的生長情況。
1.10 統(tǒng)計學分析 所有數(shù)據(jù)均采用SPSS軟件進行統(tǒng)計學處理,實驗數(shù)據(jù)以±s表示,組間比較采用t檢驗。
2)暴雨過程MCS的發(fā)展有多種組織方式,東西向雨帶不斷的后部建立型和隨后對流單體的列車效應是6月26日夜間到凌晨MCS發(fā)展的主要方式。27日凌晨到早晨,對流元向東北—西南向發(fā)展形成多個近乎平行的東北—西南向雨帶,有2種尺度的對流組織方式:一種是新生對流單體沿著每個雨帶向東北方向移動的列車效應,另一種是雨帶沿著線狀MCS向東平流的“列車帶效應”。27日白天,梅雨鋒鋒面雨帶中東北—西南向短雨帶的不斷東移是降水持續(xù)的原因。
Fig 1 Gene synthesis and E.coli expression of snake venom disintegrin Trigramin
2.1 竹葉青素基因合成及原核表達 采用緩慢退火-PCR方法,將片段引物拼接成完整的竹葉青素基因,并克隆入pUC19載體,經(jīng)測序驗證無誤。將基因亞克隆至原核表達載體pET-42a,在BL21菌株中用IPTG誘導表達,空白質(zhì)粒轉(zhuǎn)化組表達出GST對照蛋白(38.5 ku),重組竹葉青素轉(zhuǎn)化組表達出融合蛋白GST-Trigramin(35.9 ku),而未誘導組在相應位置無表達,蛋白表達量占菌體總蛋白比例分別為31.5%(GST對照)與40.7%(Trigramin),見 Fig 1。
2.2 重組竹葉青素的純化和鑒定 BugBuster抽提到的菌體可溶蛋白經(jīng)親和層析純化后,對照蛋白在38 ku、重組蛋白在36 ku附近呈現(xiàn)出一條蛋白主帶,與GST對照蛋白及GST-Trigramin融合蛋白的大小一致,純度分別為83.2%和89.1%。見Fig 2。
2.3 天然竹葉青素的純化和鑒定 竹葉青蛇毒經(jīng)Sephacryl S-300分為5個峰,其中Ⅳ峰和Ⅴ峰具有抑制血小板聚集能力,收集Ⅳ峰,經(jīng)兩次反相HPLC分離,得到單一峰。經(jīng)SDS-PAGE鑒定為均一組分,分子質(zhì)量為8.5 ku。見Fig 3。
Fig 2 Purification of GST-Trigramin by GST-bind affinity chromatography
2.4 竹葉青素對血小板聚集的影響 天然和重組竹葉青素均可抑制ADP誘導的血小板聚集,且呈明顯的劑量-效應關(guān)系,而GST對照蛋白不能抑制血小板聚集。天然竹葉青素半數(shù)抑制濃度(IC50)為3.0 mg·L-1(0.35 μmol·L-1),重組竹葉青素的IC50為 28.2 mg·L-1(0.78 μmol·L-1)。見 Fig 4。
2.5 竹葉青素對細胞增殖的影響 10 mg·L-1天然竹葉青素、100 mg·L-1GST對照蛋白和100 mg·L-1重組竹葉青素均不影響ECV304細胞增殖,各組數(shù)據(jù)統(tǒng)計差異無顯著性,見Fig 5。
2.6 竹葉青素對細胞運動的影響 10 mg·L-1天然竹葉青素和100 mg·L-1重組竹葉青素可抑制劃痕的愈合,而100 mg·L-1GST對照蛋白不能抑制細胞運動,說明重組竹葉青素抑制細胞運動的功能來自其去整合素結(jié)構(gòu)域。見Fig 6。
Fig 3 Purification of native trigramin from crude venom of Trimeresurus stejnegeri
去整合素在蛇毒中含量甚微,克隆其基因并在各種表達系統(tǒng)中表達重組蛋白,是研究其生物學功能并進一步開發(fā)利用的有效手段。本研究首先合成竹葉青素基因,以GST融合蛋白形式在大腸桿菌表達系統(tǒng)中獲得高效表達,重組蛋白產(chǎn)量占菌體總蛋白量的37.6%;隨后采用親和層析技術(shù)純化重組融合蛋白,得到了純度為89.1%的重組 GST-Trigramin,為研究其功能奠定了基礎。GST是原核表達中常用標簽,它在菌體內(nèi)高度可溶并能協(xié)助融合蛋白的折疊,有助于獲取有活性的重組蛋白。Seoane[9]和 Teklemariam[10]分別用 GST 融合蛋白形式在原核體系表達了小盾響尾蛇(Crotalus scutulatus scutulatus)去整合素mojastin和銅頭蝮(Agkistrodon contortrix contortrix)去整合素樣肽 acocostatin,并探討了它們誘導腫瘤細胞和內(nèi)皮細胞凋亡的功能,發(fā)現(xiàn)GST融合去整合素在原核表達體系中能夠正確折疊并具有生物學活性。
Fig 4 In vitro inhibition of ADP-induced aggregation of normal human PRP by native and recombinant trigramins
Fig 5 Effects of native and recombinant trigramins on ECV304 cell proliferation
Fig 6 Effects of native and recombinant trigramins on in vitro cell motility
本研究顯示,重組GST-Trigramin能抑制血小板聚集和細胞遷移,其抑制ADP誘導的血小板聚集的IC50為 0.78 μmol·L-1,而從蛇毒中純化得到的竹葉青素抑制血小板聚集的IC50為0.35 μmol·L-1,說明重組GST-Trigramin能夠折疊成活性結(jié)構(gòu),但其活性與天然純化的蛋白有一定差別,其原因可能為①重組竹葉青素不能100%折疊為天然結(jié)構(gòu),②GST結(jié)構(gòu)域干擾了竹葉青素與底物的結(jié)合,但具體機制仍有待進一步研究。本研究進一步探討竹葉青素對人膀胱癌細胞ECV304增殖和運動的影響,發(fā)現(xiàn)天然和重組竹葉青素均不影響腫瘤細胞增殖,但可抑制腫瘤細胞的體外運動能力。Ramos[11]發(fā)現(xiàn)特異性抑制αvβ3的去整合素DisBa-01,可抑制黑素瘤轉(zhuǎn)移和bFGF介導的血管新生,Tian等[12]發(fā)現(xiàn)去整合素eristostatin可抑制纖粘連蛋白與細胞的結(jié)合,而抑制腫瘤細胞的活動能力,竹葉青素抑制細胞運動可能也通過類似的機制。
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