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    rhG-CSF對(duì)大鼠缺血缺氧神經(jīng)元巨自噬水平的影響*

    2013-11-20 13:22:46王雪晶馬耀華鄧文靜張?chǎng)?/span>滕軍放
    關(guān)鍵詞:額葉皮層腦缺血

    方 立,王雪晶,荊 婧,馬耀華,鄧文靜,張?chǎng)?,滕軍?/p>

    1)鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科 鄭州 450052 2)鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院河南省高等學(xué)校臨床醫(yī)學(xué)重點(diǎn)學(xué)科開(kāi)放實(shí)驗(yàn)室 鄭州 450052

    自噬是將退變細(xì)胞器及長(zhǎng)壽命蛋白隔離并運(yùn)送到溶酶體代謝,以應(yīng)對(duì)各種有害刺激[1-2]。自噬有微自噬、分子伴侶自噬和巨自噬3種形式,通過(guò)與溶酶體結(jié)合消化大分子物質(zhì)為其主要特點(diǎn)[3]。證據(jù)[4]表明,巨自噬的激活可能在缺血腦組織中起保護(hù)作用。重組人粒細(xì)胞集落刺激因子(recombinant human granulocyte colony stimulating factor,rhG-CSF)是一種造血生長(zhǎng)因子,具有促進(jìn)中性粒細(xì)胞系造血祖細(xì)胞增殖分化的能力,近來(lái)研究顯示其在神經(jīng)組織的修復(fù)中發(fā)揮著重要作用。rhG-CSF能顯著減少腦缺血梗死體積,改善早期神經(jīng)功能[5]。然而rhG-CSF對(duì)腦缺血神經(jīng)細(xì)胞保護(hù)的具體機(jī)制尚不清楚,其對(duì)巨自噬的影響也鮮見(jiàn)報(bào)道。自噬微管相關(guān)蛋白輕鏈3(microtubule associated protein light chain 3,LC3)是巨自噬的標(biāo)志蛋白。LC3有胞質(zhì)型(LC3Ⅰ)和膜型(LC3Ⅱ)2種類(lèi)型。LC3Ⅱ/LC3Ⅰ比值的大小可反映巨自噬水平的高低。作者觀察了缺血對(duì)神經(jīng)元細(xì)胞和腦缺血大鼠腦組織LC3Ⅱ/LC3Ⅰ的影響,探討rhG-CSF對(duì)巨自噬的調(diào)控及其可能的神經(jīng)保護(hù)機(jī)制,為臨床應(yīng)用提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1材料成年雄性SD大鼠,體質(zhì)量(250±30) g,購(gòu)自河南省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心;大鼠神經(jīng)元SH-SY5Y細(xì)胞為中南大學(xué)湘雅醫(yī)院唐北沙教授饋贈(zèng);rhG-CSF購(gòu)自山東泉港藥業(yè)有限公司;DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清(FBS)購(gòu)于美國(guó)Gibco公司;單丹磺酰戊二胺(monodansylcadaverine,MDC)和MTT購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;LC3一抗購(gòu)自MBL公司,二抗購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz公司;免疫組化二步法試劑盒購(gòu)自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,GAPDH抗體購(gòu)于美國(guó)Santa Cruz公司。

    1.2細(xì)胞缺氧模型制備與處理SH-SY5Y細(xì)胞用DMEM(含體積分?jǐn)?shù)10%胎牛血清)培養(yǎng)液,置于37 ℃、體積分?jǐn)?shù)5% CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱培養(yǎng)。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,用氧糖剝奪法制作細(xì)胞缺氧模型。將培養(yǎng)基換為預(yù)先以無(wú)氧混合氣體(體積分?jǐn)?shù)95%N2+體積分?jǐn)?shù)5%CO2)填充30 min的無(wú)糖DMEM培養(yǎng)液;然后將細(xì)胞立即置于無(wú)氧混合氣體填充的密閉容器中,37 ℃、飽和濕度條件下培養(yǎng)4 h。隨后分別加入0、100、200 μg/L的rhG-CSF,繼續(xù)原環(huán)境培養(yǎng)48 h。

    1.2.1 Western blot檢測(cè)細(xì)胞LC3蛋白的表達(dá) rhG-CSF處理48 h后,抽提細(xì)胞總蛋白,BCA法測(cè)蛋白濃度,取50 μg樣品經(jīng)SDS-PAGE電泳,后經(jīng)轉(zhuǎn)膜、脫脂奶粉封閉,加入抗LC3抗體(稀釋300倍)4 ℃過(guò)夜,次日加入過(guò)氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔IgG(稀釋5 000倍)水平脫色搖床上孵育2 h,用ECL試劑盒使膜上的免疫活性蛋白顯色,暗室中行X線膠片曝光,膠片上蛋白條帶經(jīng)掃描后用Quantity one進(jìn)行灰度分析,以GAPDH作為內(nèi)參照。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

    1.2.2 MDC熒光染色檢測(cè)細(xì)胞巨自噬空泡 各組細(xì)胞rhG-CSF處理48 h后,棄去培養(yǎng)液,多聚甲醛固定15 min,PBS洗3遍,用終濃度為0.05 mmol/L的MDC于37 ℃避光溫育60 min后,吸棄染液,PBS洗滌,熒光顯微鏡下(×400)觀察,各組細(xì)胞隨機(jī)抽取10個(gè)不相重復(fù)的視野觀察拍照。流式細(xì)胞儀分析。

    1.2.3 MTT比色法檢測(cè)細(xì)胞活力 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的SH-SY5Y細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度為1×107L-1接種于96孔培養(yǎng)板,過(guò)夜貼壁后制備體外缺氧模型,4 h后加入不同濃度的rhG-CSF(0、100、200 μg/L),每組設(shè)8個(gè)復(fù)孔,體積分?jǐn)?shù)5%CO2培養(yǎng)箱、37 ℃條件下繼續(xù)培養(yǎng)48 h。于結(jié)束前4 h,每孔加入MTT液(5 g/L)20 μL;4 h后棄上清培養(yǎng)基,每孔加入150 μL二甲基亞砜,振蕩10 min左右;結(jié)晶物充分溶解后置酶標(biāo)儀于490 nm波長(zhǎng)測(cè)吸光度(A)值。細(xì)胞活力=實(shí)驗(yàn)孔A值/對(duì)照孔A值。

    1.3大鼠局灶性腦缺血模型的建立與處理采用改良的Zealonga線栓法建立局灶性腦缺血模型。60只SD大鼠按隨機(jī)數(shù)字表法分為假手術(shù)組、模型組、rhG-CSF組,每組20只。以水合氯醛腹腔注射麻醉大鼠后,取頸部正中切口,分離右側(cè)頸總動(dòng)脈,于近心端距分叉處4 mm切口插入栓線,沿頸內(nèi)動(dòng)脈上行,插入長(zhǎng)度(19.0±0.5) mm,至大腦中動(dòng)脈起始部,結(jié)扎栓線,以制成局灶性腦缺血模型。假手術(shù)組手術(shù)過(guò)程同上,但不插入線栓。缺血4 h后,假手術(shù)組不予藥物處理;模型組腹部皮下注射生理鹽水50 μg/(kg·d),連續(xù)5 d;rhG-CSF組腹部皮下注射rhG-CSF 50 μg/(kg·d),連續(xù)5 d。所有受試動(dòng)物于注藥7 d后,斷頭快速取腦,自相同斷面(前囟門(mén))將損傷側(cè)大腦冠狀切開(kāi)。一部分用甲醛固定,石蠟包埋切片;另一部分置液氮中凍存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.1 Western blot檢測(cè)缺血額葉皮層神經(jīng)元LC3蛋白的表達(dá) 取出液氮中腦組織移入玻璃勻漿管中,加入9倍體積的預(yù)冷生理鹽水,冰上充分研碎勻漿。3 500 r/min離心10 min,移棄上清液,按BCA法測(cè)蛋白濃度后取50 μg樣品,其余處理同1.2.1。

    1.3.2 免疫組化檢測(cè)缺血額葉皮層神經(jīng)元LC3蛋白的表達(dá) 石蠟切片常規(guī)脫蠟,用檸檬酸緩沖液(0.01 mol/L,pH 6.0)熱抗誘導(dǎo)修復(fù)(微波3檔20 min),室溫下冷卻,PBS洗3次,并用H2O2抑制內(nèi)源性過(guò)氧化物酶20 min,PBS洗3次,滴加LC3兔抗人多克隆抗體(稀釋200倍),4 ℃孵育過(guò)夜,PBS再次沖洗,二抗孵育,PBS沖洗,DAB顯色,蘇木素襯染,樹(shù)脂封片,顯微鏡下隨機(jī)選取10個(gè)不同視野的細(xì)胞觀察,以細(xì)胞中出現(xiàn)棕黃色顆粒為染色陽(yáng)性細(xì)胞。根據(jù)陽(yáng)性細(xì)胞的比率評(píng)分:≤50%為 3 分,~65%為 4 分,~75%為5分,>75%為6分。

    1.3.3 改良的神經(jīng)功能缺損評(píng)分 由不了解實(shí)驗(yàn)分組的人員對(duì)動(dòng)物進(jìn)行運(yùn)動(dòng)(肌肉狀態(tài)、異常動(dòng)作)、感覺(jué)(視覺(jué)、觸覺(jué)、本體感覺(jué))和反射檢查,綜合評(píng)價(jià)神經(jīng)系統(tǒng)損傷的嚴(yán)重程度。評(píng)分最高分為18分,正常為0分,分值越高,說(shuō)明神經(jīng)損害越嚴(yán)重。各組大鼠藥物干預(yù)前進(jìn)行評(píng)分,并于注藥7 d后再次評(píng)分。

    1.4統(tǒng)計(jì)學(xué)處理采用SPSS 16.0處理數(shù)據(jù)。各組SH-SY5Y細(xì)胞LC3Ⅱ/LC3Ⅰ、巨自噬空泡數(shù)和細(xì)胞活力的比較,以及各組大鼠缺血額葉神經(jīng)元LC3Ⅱ/LC3Ⅰ及LC3Ⅱ蛋白表達(dá)的比較行單因素方差分析,組間兩兩比較采用SNK-q檢驗(yàn)。各組大鼠不同時(shí)間點(diǎn)神經(jīng)功能缺損評(píng)分的比較行重復(fù)測(cè)量數(shù)據(jù)的方差分析。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。

    2 結(jié)果

    2.1rhG-CSF對(duì)缺氧SH-SY5Y細(xì)胞巨自噬的影響

    2.1.1 各組細(xì)胞LC3 Ⅱ/LC3 Ⅰ 比較 見(jiàn)圖1、表1。

    圖1 各組細(xì)胞LC3 Ⅱ/LC3 Ⅰ比較

    2.1.2 各組細(xì)胞巨自噬空泡數(shù)比較 見(jiàn)圖2、表1。

    2.1.3 各組細(xì)胞活力的比較 見(jiàn)表1。

    2.2動(dòng)物實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    2.2.1 各組大鼠缺血額葉皮層神經(jīng)元LC3 Ⅱ/LC3 Ⅰ的比較 見(jiàn)圖3、表2。

    圖2 各組細(xì)胞巨自噬空泡數(shù)比較(×400)

    表1 各組細(xì)胞巨自噬及細(xì)胞活力比較

    *:與0 μg/L rhG-CSF組比較,P<0.05;#:與100 μg/L rhG-CSF組比較,P<0.05。

    圖3 各組大鼠缺血額葉皮層神經(jīng)元LC3 Ⅱ/LC3 Ⅰ檢測(cè)結(jié)果

    2.2.2 各組大鼠缺血額葉皮層神經(jīng)元LC3蛋白的表達(dá) 見(jiàn)圖4、表2。

    圖4 各組大鼠缺血額葉皮層神經(jīng)元LC3蛋白的表達(dá)(SP,×400)

    表2 各組大鼠缺血額葉神經(jīng)元LC3 Ⅱ/LC3 Ⅰ及LC3 Ⅱ蛋白表達(dá)(n=20)

    *:與假手術(shù)組比較,P<0.05;#:與模型組比較,P<0.05。

    2.2.3各組大鼠神經(jīng)功能缺損評(píng)分見(jiàn)表3。

    表3 各組大鼠神經(jīng)功能缺損評(píng)分比較(n=20)

    F組間=20.403,F時(shí)間=19.193,F交互=33.415,P均<0.001。

    3 討論

    研究[6]表明,巨自噬作為一種應(yīng)激反應(yīng),參與了腦缺血的病理生理過(guò)程。研究[7]表明rhG-CSF參與了中樞神經(jīng)系統(tǒng)修復(fù)過(guò)程。rhG-CSF可減少缺血病灶大小,抑制水腫形成,有抗炎和抗凋亡作用,可以改善中風(fēng)結(jié)局[8]。rhG-CSF還能動(dòng)員干細(xì)胞向病損部位遷移,修復(fù)壞死組織[9]。該研究發(fā)現(xiàn),體外細(xì)胞缺氧模型rhG-CSF給藥組的LC3Ⅱ/LC3Ⅰ、巨自噬空泡數(shù)及細(xì)胞活力均高于未加藥組,且隨給藥濃度增加,自噬活性及細(xì)胞活力均逐漸增強(qiáng)。大鼠腦缺血模型rhG-CSF干預(yù)后第7天,模型組缺血額葉皮層神經(jīng)元的LC3Ⅱ/LC3Ⅰ及LC3表達(dá)水平均高于假手術(shù)組,提示局灶性腦缺血后神經(jīng)元巨自噬水平升高,缺血腦組織可能通過(guò)增強(qiáng)自噬促進(jìn)自我修復(fù);而rhG-CSF組的LC3Ⅱ/LC3Ⅰ及LC3表達(dá)水平又較模型組增高,表明rhG-CSF干預(yù)可上調(diào)局灶性腦缺血后神經(jīng)元的巨自噬水平。rhG-CSF組較模型組大鼠神經(jīng)功能缺損評(píng)分降低,說(shuō)明神經(jīng)功能恢復(fù)明顯,提示rhG-CSF有修復(fù)神經(jīng)的作用。

    研究[10]發(fā)現(xiàn)當(dāng)巨自噬清除線粒體后神經(jīng)細(xì)胞死亡也并非不可避免。Lockshina等[11]認(rèn)為細(xì)胞輕度受損后,自身首先通過(guò)激活自噬途徑以清除有害蛋白。缺血再灌注時(shí)活性氧(ROS)是自噬的主要誘導(dǎo)因素?;钚匝跽T導(dǎo)線粒體損傷、功能紊亂,線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔開(kāi)放和形成線粒體碎片,這反過(guò)來(lái)又促進(jìn)自噬及自噬清除線粒體?;钚匝跹趸⒁种瓢腚装彼岬鞍酌窤tg4的活化,導(dǎo)致LC3的脂化和自噬體形成[12]。自噬體吞噬消除受損的線粒體,減少活性氧生產(chǎn),抑制促凋亡因子如細(xì)胞色素C的釋放,從而抑制細(xì)胞凋亡[13]。研究[14]發(fā)現(xiàn)短暫腦缺血后,腦組織的自噬標(biāo)記物表達(dá)上調(diào),同時(shí)神經(jīng)細(xì)胞增加,顯示自噬激活是一個(gè)潛在的腦損傷早期保護(hù)機(jī)制。Yan等[15]也發(fā)現(xiàn)通過(guò)藥物預(yù)處理調(diào)節(jié)自噬激活可能減輕缺血細(xì)胞損傷。該研究發(fā)現(xiàn)rhG-CSF干預(yù)下局灶性腦缺血大鼠神經(jīng)細(xì)胞自噬水平升高,大鼠神經(jīng)功能恢復(fù),且神經(jīng)元細(xì)胞活力增加,提示rhG-CSF能夠上調(diào)腦缺血后巨自噬活動(dòng),并促進(jìn)神經(jīng)功能的修復(fù)。

    總之,缺血缺氧損傷后,rhG-CSF可能通過(guò)調(diào)控巨自噬水平起到保護(hù)神經(jīng)元的作用。

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