劉鑫燕, 高 濤, 王 粲, 吳立偉, 汪 昕, 周 蓉, 余春梅
(南通大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,南通 226019)
小麥葉枯?。╳heat leaf blight and spot)是引起小麥葉斑和葉枯類病害的總稱,世界上報道的葉枯病的病原菌達(dá)20多種,而殼針孢葉枯病(Septoria leaf blotch)、小麥鏈格孢葉枯?。ˋlternaria leaf blight)、小麥黃斑葉枯?。╰an spot)等已經(jīng)成為我國小麥生產(chǎn)的重要病害[1]。小麥感染葉枯病病菌后,常造成葉片早枯,影響籽粒灌漿,造成穗粒數(shù)減少,千粒重下降,有些葉枯病原菌還可引起籽粒的黑胚?。?],降低小麥產(chǎn)量以及小麥商品糧等級。
鏈鉻孢屬(Alternaria)中有多種病菌能引起小麥的葉枯病害。20世紀(jì)60年代曾在印度發(fā)生過鏈格孢屬的A.triticina引起的病害流行,導(dǎo)致大約60%~75%小麥減產(chǎn)。王春江等[3]和商鴻生等[4]的研究認(rèn)為,鏈格孢葉枯病在20世紀(jì)70年代就已經(jīng)在我國的一些育種苗圃中發(fā)生,并曾在1997-1998年間,在黃河中下游和江淮麥區(qū)有較大面積的發(fā)生。由于高溫高濕條件有利于葉枯病的發(fā)生,我國黃河中下游、江淮麥區(qū)、長江流域以及西南麥區(qū)在小麥生育期的中后期通常會遭遇高溫高濕氣候,為葉枯病的大發(fā)生提供了可能的環(huán)境條件。與小麥常見的赤霉病、白粉病等相比較,該病在我國的出現(xiàn)相對較晚且對該病的認(rèn)識尚處在起步階段。邢小萍等[5]2005-2007年度對河南省主栽小麥品種葉枯病田間發(fā)病情況進(jìn)行調(diào)查,發(fā)現(xiàn)沒有對葉枯病免疫的品種。盡管該調(diào)查并未說明致病病菌,但至少說明了葉枯病的發(fā)生在我國小麥生產(chǎn)中可能具有普遍性。因此,在發(fā)生葉枯病栽培區(qū)域,鑒定引起葉枯病癥狀的病原菌種類,研究小麥中抗病基因的抗性遺傳規(guī)律,鑒定抗病基因資源,并進(jìn)一步應(yīng)用于育種實(shí)踐將具有積極意義。
本試驗(yàn)根據(jù)科赫氏法則,從具有葉枯病癥狀的四倍體野生二粒小麥上分離了致病菌,通過孢子形態(tài)和核糖體rDNA內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(internal transcribed spacer,ITS)分子進(jìn)化分析對病原菌進(jìn)行了鑒定。在離體無菌條件下,對抗病與感病親本以及其雜交所得的200多個F2∶3家系進(jìn)行了抗病性鑒定,初步解析了抗病基因的遺傳規(guī)律,為進(jìn)一步通過分子標(biāo)記定位抗病基因以及開展分子標(biāo)記輔助育種奠定了研究基礎(chǔ)。
四倍體野生二粒小麥(Triticum dicoccoides,2n=28,AABB)親本‘JIC106003’以及‘JIC106007’引自中國科學(xué)院遺傳發(fā)育所植物細(xì)胞與染色體國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室。本實(shí)驗(yàn)室于2008年配置雜交組合,并于2009-2011年分別對F1、F2單株及F2:3家系進(jìn)行了抗病性鑒定。供試葉枯病病原菌由本實(shí)驗(yàn)室分離保存。
在試驗(yàn)地取苗期(四葉期)至抽穗期的發(fā)病葉片,剪成5cm左右的小段用75%乙醇浸泡3min,無菌水沖洗1次,放入1%次氯酸鈉中浸泡30s,無菌水沖洗3次。吸取100μL最后一次洗滌用水涂布于PSA固體培養(yǎng)基作為無菌對照。將表面消毒的葉片,從發(fā)病區(qū)域剪取5mm×5mm大小放PSA固體培養(yǎng)基表面,置于28℃的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)并觀察。將獲得的真菌進(jìn)行純化后,用透明膠帶法[6]對分離到的菌絲進(jìn)行制片,并用石炭酸棉蘭染液染色后進(jìn)行鏡檢。
按李大海等[7]的方法進(jìn)行病原性試驗(yàn)。首先對健康葉片進(jìn)行表面消毒(同1.2),并在葉片上滴加2滴20μL真菌孢子懸浮液[(4.0~5.0)×103個/mL],放置在光照培養(yǎng)箱中(24℃,12h光照)。接菌后的48h內(nèi)葉片基本無病斑發(fā)展,48h后病斑逐漸發(fā)展,將能在感病親本中發(fā)病的菌株進(jìn)一步培養(yǎng)后用于后續(xù)的分子生物學(xué)鑒定和F2∶3家系抗病性調(diào)查。
用真菌基因組DNA提取試劑盒(北京索萊寶),并按其說明書進(jìn)行病原菌基因組DNA的提取。
根據(jù) White等[8]的報道,用跨5.8rDNA基因兩側(cè) ITS 的 引 物 ITS4:5′-TCCTCCGCTTATTGAT ATGC-3′分 別 與 ITS1:5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′和 ITS5:5′-GGAAGTAAAAGTCGTAACAAGG-3′配對擴(kuò)增,PCR反應(yīng)體系為20μL,總體積中加入10ng/μL模板1μL,10×LATaq(大連寶生物)緩沖液2μL,10μmol/L上下游引物各0.2μL,2.5mmol/L的 dNTPs 2μL,適量滅菌雙蒸餾水。95℃變性5min,95℃變性30s,60℃退火30s,72℃延伸50s,35個循環(huán)后,72℃延伸10min進(jìn)行PCR擴(kuò)增。產(chǎn)物用1% 瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳檢測。并將ITS4與ITS1和ITS5配對擴(kuò)增產(chǎn)物分別回收(鼎國公司PCR產(chǎn)物純化試劑盒),連接克隆于pMD18-T載體(大連寶生物),陽性菌落送上海Invitrogen公司測序。
在GenBank查找Vergnes等[9]報道的相關(guān)序列,以E.pedicillatum 作為外類群,使用Clustal W2進(jìn)行多序列比對,MEGA5.0軟件中Neighbor-Joining(NJ)法進(jìn)行建樹,Bootstrap值設(shè)為500。
離體葉鑒定根據(jù)病斑反應(yīng)型和嚴(yán)重度來確定供試材料的抗性。參照李大海等[7]的方法,進(jìn)行病情調(diào)查和抗性分析。
按以下公式計算每個單株的病情發(fā)展曲線下面積(area under the disease progress curve,AUDPC)。AUDPC=∑[(Xi+Xi+1)/2](ti+1-ti)。式中的Xi和Xi+1分別是第i次記載和第i+1次記載的嚴(yán)重度,ti+1-ti是第i+1次記載和第i次記載之間所間隔的時間。本研究根據(jù)病斑的發(fā)展,從接種72h后開始記錄病情,間隔24h,連續(xù)記錄3次。
根據(jù)親本、F1、F2單株田間自然發(fā)病情況以及F2:3家系實(shí)驗(yàn)室接種病情統(tǒng)計,應(yīng)用質(zhì)量性狀的分離規(guī)律和適合度(χ2)檢測抗病基因數(shù)目。
根據(jù)2007-2009年親本的抗病表型,抗病野生二粒小麥在自然條件下葉片無病斑(圖1a),感病野生二粒小麥葉片出現(xiàn)橢圓形的褪綠小斑,后病斑連接成片,中間有黑色至褐灰色,邊緣黃色。感病材料的葉片從基部直至倒二葉均有不同程度的病斑,第2片葉基本壞死,第3葉有較大面積的病斑,上部4~6葉病斑較輕(圖1b)。根據(jù)龍宗權(quán)[1]、商鴻生等[3]的研究,初步判斷是由鏈格孢葉枯病病菌引起的病害。根據(jù)田間葉枯病情況,選擇‘JIC1060003’(抗)和‘JIC1060007’(感)作為親本配置了雜交并獲得了遺傳群體。
使用貼片法在PSA培養(yǎng)基平板上共分離到兩種真菌以及酵母。通過科赫氏法則及葉片病原菌的活體(in vivo)觀察(圖2a)顯示只有一種真菌為葉枯病的致病菌。按1.3中的方法進(jìn)行葉片接種72h后,接種部位呈現(xiàn)褪綠,中心且有褐色斑點(diǎn),并在顯微鏡下觀察到菌絲(圖2a)。菌株在PSA平板上生長速率為0.5~0.6cm/d,菌落第2~3天為白色,之后中央出現(xiàn)灰黑色區(qū)域,氣生菌絲白色絨毛狀。鏡檢發(fā)現(xiàn),其分生孢子梗單生或叢生,直立,黃褐色,大小為(17~27)μm ×(3~6)μm (圖2c)。分生孢子單生或2~4個串生,褐色,卵圓形或橢圓形,喙較短,大?。?5~89)μm ×(7~30)μm,1~6個橫膈膜,1~4個縱隔膜。根據(jù) Andersen[3-4,10]等人的描述,此菌屬于鏈格孢菌屬,但其種的特性需進(jìn)一步鑒定。
圖1 野生二粒小麥葉枯病表型Fig.1 Phenotypes of the leaf blight and spot in Triticum dicoccoides
圖2 從感病葉片中分離的葉枯病病菌表型特征Fig.2 Morphology of the pathogen isolated from leaves of the susceptible genotype of T.dicoccoides‘JIC1060007’
為了進(jìn)一步確認(rèn)所分離的鏈格孢菌的類群,對核糖體5.8SrDNA以及側(cè)翼轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)進(jìn)行了擴(kuò)增和進(jìn)化分析。兩對真菌通用引物(ITS1、ITS4,ITS4、ITS5)PCR擴(kuò)增的產(chǎn)物,用1%瓊脂糖電泳檢測,500~750bp間有明顯的擴(kuò)增條帶,且ITS1、ITS4產(chǎn)物長度稍小于ITS4、ITS5(圖3a,泳道5~8)。進(jìn)一步對ITS4、ITS5產(chǎn)物進(jìn)行克隆測序后顯示其長度為595bp。按1.5中的方法進(jìn)行進(jìn)化分析。盡管本試驗(yàn)中所測序列有單個核苷酸的差異(以ITS5-1,6和10三個代表克?。?,但均屬于A.alternata類群(圖3b)
圖3 病菌5.8SrDNA基因及其側(cè)翼ITS序列的檢測以及鏈格孢屬不同種的進(jìn)化分析Fig.3 Detection and phylogeny analysis of 5.8SrDNA gene and flanking ITS sequence
用本實(shí)驗(yàn)室分離的具有致病性的病原菌,在實(shí)驗(yàn)室條件下接種母本‘JIC106003’和父本‘JIC106007’以及252個F2∶3家系小麥,按1.6中的方法對病級進(jìn)行了分類。在群體中植株表現(xiàn)為抗病的有64株系(圖4a,e),中抗的有128株系(圖4b),中感的有51株系(圖4c),感病的有8株系(圖4d)。
圖4 F2∶3家系中抗病性鑒定的表型特性以及AUDPC分布Fig.4 Different resistant phenotype to the pathogen among F2∶3family lines and the distribution of the AUDPC in F2∶3family lines
AUDPC分析表明,親本‘JIC1060003’AUDPC為839.98,表現(xiàn)為中等抗?。弧甁IC1060007’AUDPC為2592,表現(xiàn)為高感,F(xiàn)1單株的AUDPC平均983.58(2009年數(shù)據(jù)),與F2∶3家系平均數(shù)928.41接近。根據(jù)F1的表型,初步推測親本‘JIC106003’中的抗性基因?yàn)轱@性基因。F2∶3家系中的AUDPC分析表明(圖4e),部分株系表現(xiàn)為超親抗性(如67株AUDPC為0~500,小于抗性親本‘JIC1060003’),且抗性呈現(xiàn)偏態(tài)分布,以抗、中抗偏多。在F2:3家系中,以抗和中抗的株系數(shù)(193)對中感和感病的株系數(shù)(59,部分株系的AUDPC值接近1 500,表現(xiàn)為中感),χ2為0.256,符合一對性狀分離規(guī)律 (P>0.05,小于=3.84),因此認(rèn)為該親本組合中存在一對主效的顯性抗病基因。同時由于群體中的抗性存在超親個體,因此雙親中可能還存在作用較小的數(shù)量性狀和隱性的抗病基因,只有這些基因在后代中聚合且與抗性顯性基因一起時才表現(xiàn)為超親抗性。
本研究應(yīng)用葉片病斑的形態(tài)觀察,孢子形態(tài)顯微觀察、科赫氏法則以及分子進(jìn)化分析等試驗(yàn)方法,證明了一株與鏈格孢屬的Alternaria alternata較為接近的真菌是參試野生二粒小麥葉枯病的致病菌,并通過遺傳學(xué)分析,表明抗病親本‘JIC106003’親本攜帶一對主效抗病基因,同時雙親中還可能存在數(shù)量性狀和隱性的抗病基因。
有關(guān)小麥鏈格孢葉枯病,我國研究者[4]認(rèn)為多種鏈格孢菌能引起葉枯病癥狀,并從菌絲和孢子的形態(tài)上進(jìn)行了描述。在國際上,Vergnes等[9]從小麥上分離到的4種鏈格孢菌A.triticina、A.alternata、A.tenuissima 和A.arborescens,只有 A.triticina能引起少數(shù)四倍體硬粒小麥的葉枯病,盡管該菌曾經(jīng)在20世紀(jì)60-70年代在印度引起大面積葉枯病,但后來的栽培品種對該菌都能免疫。該研究同時通過ITS1、5.8SrDNA和ITS2區(qū)序列比較對上述4個種進(jìn)行了分子進(jìn)化分析,來自A.triticina的序列與其他3種有明顯區(qū)分,其他3種序列也能各自聚類,說明能用該區(qū)的序列區(qū)分上述4種鏈格孢菌。因各地環(huán)境條件的差異,本試驗(yàn)首先按照科赫氏法則嚴(yán)格進(jìn)行了病原菌的分離、再接種與再分離和再接種等試驗(yàn)環(huán)節(jié),證明了所分離的菌種確實(shí)引起供試品種的葉枯病癥狀,且通過兩次PCR擴(kuò)增ITS1、5.8SrDNA和ITS2區(qū)域進(jìn)行克隆測序,序列相似性99.9%以上,證明了所獲得的菌落是單菌落。根據(jù)Vergnes等[9]提交的序列,本研究中分離的鏈格孢序列屬于A.alternata類群(圖3b)。因Vergnes等[9]只提交了4種小麥鏈格孢菌株的序列,而王洪凱等[11]對多種鏈格孢屬種的研究認(rèn)為,ITS1、5.8SrDNA和ITS2區(qū)域序列無法在種的水平上對鏈格孢屬進(jìn)行區(qū)分,因此本研究分離的菌株與Vergnes等的A.alternata供試菌株的區(qū)別尚待進(jìn)一步研究。
通過在實(shí)驗(yàn)室可控條件下接種小麥葉片,表現(xiàn)出的病情排除了自然環(huán)境條件不穩(wěn)定的因素,試驗(yàn)獲得的數(shù)據(jù)更能接近基因型的實(shí)際表現(xiàn)。經(jīng)過F1和F2:3家系病情分析,表明抗A.alternata葉枯病基因較為復(fù)雜,存在主效顯性抗病基因的同時還存在微效抗病基因,且可能以隱性的方式存在。為了進(jìn)一步鑒定抗病基因的遺傳規(guī)律,回交群體的創(chuàng)制正在進(jìn)行中。
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