白鳳翎,劉邑娥,馬 馳,李 瑩,呂欣然,石金鑫,勵建榮
(渤海大學(xué) 化學(xué)化工與食品安全學(xué)院,遼寧省食品安全重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室“,食品貯藏加工及質(zhì)量安全控制工程技術(shù)研究中心”遼寧省高校重大科技平臺,遼寧 錦州 121013)
錦州蝦油小黃瓜是由遼西地區(qū)特有的頂花帶刺的小黃瓜用錦州地區(qū)特制的蝦油腌漬而成,色澤碧綠、清脆爽口、氣味葷香,是錦州小菜的特征品種。然而,由于蝦油的鹽含量過高致使產(chǎn)品的風(fēng)味不足,口感欠佳,這也是錦州小菜市場化的最大障礙。在自然條件下,微生物的發(fā)酵作用對腌漬蔬菜產(chǎn)品的風(fēng)味形成、質(zhì)地改善等方面都具有非常重要的作用。乳酸菌發(fā)酵在保持蔬菜原料中原有的營養(yǎng)成分和形成風(fēng)味物質(zhì)的基礎(chǔ)上,還賦予產(chǎn)品具有益生作用的生物學(xué)功效[1]。國外乳酸菌發(fā)酵蔬菜的主要代表是德國的酸白菜(Sauerkraut)、酸黃瓜(Sour cucumber)和韓國的泡菜(Kimchi),德國的酸黃瓜主要由腸膜明串珠菌(Leuconostoc mesenteroides),短乳桿菌(Lactobacillus brevis),植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)和戊糖片桿菌(Pediococcus pentosaceus)等多種乳酸菌共同發(fā)酵而成。韓國的泡菜中腸膜明串珠菌(Leuconostoc mesenteroides)是發(fā)酵過程中的優(yōu)勢乳酸菌菌群,對產(chǎn)品的品質(zhì)起到了主要作用,此外還發(fā)現(xiàn)了新的乳酸菌類群[2]。目前從產(chǎn)品中獲取優(yōu)良的乳酸菌株,進(jìn)行基因序列以及生物學(xué)特性研究[3-6]。國內(nèi)應(yīng)用乳酸菌改善發(fā)酵蔬菜的品質(zhì),武晉海等[7]以腌漬液作為發(fā)酵劑,結(jié)合植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)進(jìn)行預(yù)發(fā)酵,獲得了2.24%NaCl的低鹽腌漬小黃瓜,使產(chǎn)品品質(zhì)獲得了良好的提升。李春等[8]應(yīng)用純菌接種恒溫發(fā)酵黃瓜研究表明了人工接種乳酸菌可以改善產(chǎn)品品質(zhì)。本文從錦州蝦油腌漬小黃瓜中分離獲得的6株耐鹽乳酸菌,對其抗氧化和產(chǎn)生風(fēng)味物質(zhì)生物性能進(jìn)行研究,旨在通過選育優(yōu)良性能的乳酸菌作為發(fā)酵劑對錦州蝦油小黃瓜進(jìn)行品質(zhì)改良,達(dá)到提高產(chǎn)品風(fēng)味、降低產(chǎn)品鹽度和增加產(chǎn)品功能的目的。
1.1.1菌種
菌株L3、L4、L5、L7、L15、L16,自錦州蝦油小黃瓜中分離,經(jīng)形態(tài)學(xué)和生理生化初步鑒定,結(jié)果表明菌株L3、L4屬于腸球菌屬(Enterococcussp.),菌株L5、L7、L15、L16均屬于乳桿菌屬(Lactobacillussp.)[9]。
1.1.2 培養(yǎng)基與試劑
MRS培養(yǎng)基:葡萄糖10.0g,牛肉膏10.0g,蛋白胨10.0g,酵母膏5.0g,無水乙酸鈉4.8g,檸檬酸二銨2.0g,K2HPO42.0g,MgSO40.58g,MnSO40.25g,蒸餾水1.0L,pH6.2~6.4,121℃高壓滅菌15min。
1.1.3 儀器與設(shè)備
LDZX-40S型立式自控電熱壓力蒸汽滅菌器,上海申安醫(yī)療器械廠;BCM-1000A型生物潔凈工作臺,蘇州市華宇凈化設(shè)備有限公司;SHP-250型生化培養(yǎng)箱,上海精宏試驗(yàn)儀器有限公司;UV-4802紫外可見分光光度計(jì),尤尼柯(上海)儀器有限公司;DELTA 320 pH計(jì),梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司。
1.1.4 數(shù)據(jù)處理
實(shí)驗(yàn)均平行測定3次,應(yīng)用Excel2003對數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,用Origin8.0進(jìn)行作圖。
1.2.1 菌體和胞外分泌物的制備
將供試菌于MRS培養(yǎng)基37℃培養(yǎng)24h后,發(fā)酵液以4000r/min離心20min,收集菌體,并用蒸餾水洗滌3次,最后將乳酸菌細(xì)胞數(shù)調(diào)至106cell/mL,即為菌體。
供試菌于MRS培養(yǎng)基37℃培養(yǎng)24h后,收集發(fā)酵液,用蒸餾水將乳酸菌細(xì)胞數(shù)調(diào)至1010cfu/mL,在4000r/min轉(zhuǎn)速下離心20min,收集上清液,即為胞外分泌物。
1.2.2 耐鹽乳酸菌抗氧化性能測定
清除羥自由基試驗(yàn):參考文獻(xiàn)[10]中的方法,按公式(1)計(jì)算羥自由基清除率。
式中:A為不含樣品液含H2O2的吸光度值;A0為不含樣品液和H2O2時溶液的吸光值;Ai為含樣品液和H2O2的吸光度值。
清除DPPH自由基試驗(yàn):按文獻(xiàn)[11]方法略作修改。取1mL樣品液,加入0.2mmol/L的DPPH無水乙醇溶液2mL,在517nm下測定吸光度值,按公式(2)計(jì)算DPPH自由基清除率。
式中:Ai為DPPH和樣品的吸光度值;Aj為乙醇和樣品的吸光度值;A0為DPPH和乙醇的吸光度值。
還原能力測定:按文獻(xiàn)[12]進(jìn)行。
清除超氧陰離子自由基試驗(yàn):在4.5mL的25℃水浴20min Tris-HCl緩沖液(PBS:0.05mol/L,pH8.2)中,加入4.4mL菌株樣品液和0.1mL鄰苯三酚溶液(25.0mmol/L),25℃水浴5min。然后加入1.0mLHCl(8.0mol/L),用10.0mmol/L HCl作空白,在325nm處測吸光度值。分別測定乳酸菌菌體、胞外分泌物,按公式(3)計(jì)算超氧陰離子自由基的清除率。
式中Ai為樣品液的吸光度值;A0為生理鹽水(空白)的吸光度值。
1.2.3 耐鹽性乳酸菌風(fēng)味物質(zhì)測定
乙醛含量測定:按文獻(xiàn)[13]中方法進(jìn)行,將活化后的乳酸菌培養(yǎng)液在4℃下以4000r/min離心20min,收集上清為樣品液,按公式(4)進(jìn)行計(jì)算乙醛含量。
式中:V1為碘標(biāo)準(zhǔn)溶液用量;V2為空白試驗(yàn)碘標(biāo)準(zhǔn)溶液用量;M為碘標(biāo)準(zhǔn)溶液摩爾濃度。
雙乙酰含量測定:按文獻(xiàn)[14]的操作方法進(jìn)行,按公式(5)計(jì)算雙乙酰含量。
式中:E為吸光度值;2.4為吸光度值和雙乙酰含量的換算關(guān)系;0.01為校正值。
2.1.1 乳酸菌的清除羥自由基性能
6株耐鹽乳酸菌清除羥自由基的作用如圖1所示,可以看出菌體對羥自由基的平均清除率為胞外分泌物的22倍,因此,對羥自由基的清除作用主要來自于具體本身。其中,菌株L7的清除作用最強(qiáng),清除率達(dá)38.56%;其次是菌株L3,清除率超過30%,最差的為菌株L17。乳酸菌的抗氧化性能在菌體、菌體破碎物、發(fā)酵產(chǎn)物在自由基或過氧反應(yīng)體系中,均表現(xiàn)出不同程度的抗氧化性能[15-17]。從錦州腌漬小黃瓜中耐鹽乳酸菌的清除羥自由基能力主要表現(xiàn)在菌體,而不在其產(chǎn)物或發(fā)酵液中,說明是菌體內(nèi)的氧化酶體系可能發(fā)揮主體作用。當(dāng)菌體被破碎及產(chǎn)物中該酶體系被破壞,清除能力損失殆盡。
圖1 6株耐鹽乳酸菌對羥自由基的清除作用Fig.1 Scavenging effects of six salt-tolerance LAB strains on hydroxyl radical
2.1.2乳酸菌的清除DPPH自由基性能
表1 6株乳酸菌對DPPH自由基的清除作用Table 1 Scavenging effects of six LAB strains on DPPH radical
6株耐鹽乳酸菌清除DPPH自由基的作用由表1所示,從表1中可以看出乳酸菌胞外分泌物的清除作用明顯強(qiáng)于菌體,其中菌株L16的胞外分泌物對DPPH自由基的作用最強(qiáng),清除率達(dá)40%;其次是菌株L7,清除率為33.65%;其余菌株在14.3%到31.2%之間。這主要是因?yàn)榫w能產(chǎn)生有一些抗氧化酶和一些抗氧化物質(zhì),從而使得胞外分泌物的還原能力比菌體強(qiáng)[18]。
2.1.3 乳酸菌的還原性能
圖2 6株耐鹽乳酸菌的還原能力Fig.2 Results of reducing ability of six salt-tolerance LAB strains
由圖2可知,6株乳酸菌菌體以及胞外分泌物均有較強(qiáng)還原能力,且它們的胞外分泌物的還原能力均較菌體的還原能力強(qiáng)。菌株胞外分泌物的還原能力試驗(yàn)所得吸光度值在0.449~1.591之間,還原能力最強(qiáng)的為菌株L3,其吸光度值為1.591;其次為菌株L7,吸光度值為0.875,最差的為菌株L15。
2.1.4 乳酸菌的清除超氧陰離子自由基性能
由圖3可知,胞外分泌液和菌體對超氧陰離子都具有清除作用。與菌體比較而言,胞外分泌具有更強(qiáng)的清除作用。菌株中L7的作用最佳,清除率達(dá)36.63%,其他菌株的胞外分泌液清除率在10%~30%之間。
乳酸菌形成乙醛和雙乙酰兩種風(fēng)味物質(zhì)的結(jié)果如表2所示,6株乳酸菌產(chǎn)生的乙醛含量較高,其中菌株L16產(chǎn)生的含量最高超過了5.5μg/mL;其次是菌株L7,產(chǎn)生的乙醛含量為5.02μg/mL;菌株L3、L4、L5、L15產(chǎn)生的乙醛含量相近,均在2.5~3.5μg/mL之間。而產(chǎn)生的雙乙酰含量相對較低,產(chǎn)生最多的是菌株L7,含量為3.65μg/mL;其次是菌株L15;菌株L16的含量最少,幾乎不產(chǎn)生。乙醛和雙乙酰都是由乳酸菌在發(fā)酵過程中產(chǎn)生的醇、醛、酮等多種風(fēng)味物質(zhì)和乳酸菌在糖酵解過程中產(chǎn)生的乳酸、乙酸、丙酸等有機(jī)酸相互作用形成的,具有獨(dú)特風(fēng)味的物質(zhì)[19]。
圖3 6株乳酸菌對超氧陰離子自由基的清除作用Fig.3 Scavenging effects of six salt-tolerance LAB strains on superoxide anion free radical
表2 6株乳酸菌乙醛和雙乙酰測定結(jié)果Table 2 Determination results of acetaldehyde and diacetyl of six LAB strains
從實(shí)驗(yàn)結(jié)果中可以看出,菌株L7對羥自由基的清除率為38.56%,DPPH自由基清除率為33.65%,還原能力較強(qiáng),超氧陰離子清除率為36.65%;其中,除羥自由基的清除作用來自于菌體自身的抗氧化性能外,其余抗氧化能力均來自于乳酸菌胞外分泌物。與此同時,菌株L7還能產(chǎn)生含量較高的風(fēng)味物質(zhì):乙醛和雙乙酰的含量分別為5.02μg/mL和3.65μg/mL。因此,綜合耐鹽性乳酸菌菌株清除各種自由基和產(chǎn)生風(fēng)味物質(zhì)的性能,從中篩選出菌株L7作為改進(jìn)錦州腌漬小黃瓜品質(zhì)的試驗(yàn)菌株。
耐鹽性乳酸菌是腌制蔬菜制品中的優(yōu)勢菌群,對產(chǎn)品的質(zhì)量有著致關(guān)重要的影響。本實(shí)驗(yàn)從錦州傳統(tǒng)風(fēng)味食品蝦油小黃瓜發(fā)酵液分離篩選出的6株具有較好耐鹽性的乳酸菌中,得到生物性能較強(qiáng)的L7菌株。通過對耐鹽性乳酸菌的性能研究篩選出優(yōu)良菌株L7,旨在提高乳酸菌發(fā)酵性能,為提升錦州腌漬小菜產(chǎn)品質(zhì)量、改善其風(fēng)味以及降低含鹽量提供理論基礎(chǔ)。
[1]紀(jì)鳳娣,籍保平,李 博,等.前期鹽漬因子及后期調(diào)味配方對低溫發(fā)酵蔬菜產(chǎn)品品質(zhì)的影響[J].食品科學(xué),2005,26(9):246-250.
[2]YOON JH,KANG SS,MHEEN TI,et al.Lactobacillus kimchiisp.nov.,a new species from kimchi[J].Int J Syst Evol Microb,2000,50:1789-1795.
[3]BREIDT FJR.A genomic study ofLeuconostoc mesenteroidesand the molecular ecology of sauerkraut fermentations[J].J Food Sci,2004,69(1):30-33.
[4]NAM SH,CHLI SH,KANG A,et al.Genome sequence ofLeuconostoc fallaxKCTC 3537[J].J Bacteriol,2011,193(2):588-589.
[5]LEE SH,JUNG JY,LEE SH,et al.Complete genome sequence ofLeuconostoc Kimchiistrain C2,isolated from kimchi[J].J Bacteriol,2011,193(19):5548.
[6]KIM DS,CHOI SH,KIM DW,et al.Genome sequence ofLeuconostoc gelidumKCTC 3527,isolated from kimchi[J].J Bacteriol,2011,193(3):799-800.
[7]武晉海,王昌祿,王玉榮.低鹽腌漬黃瓜半固態(tài)純種發(fā)酵工藝中試[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2009,25(1):265-270.
[8]李 春,張 毅,李琳琳,等.人工接菌黃瓜發(fā)酵過程中的品質(zhì)變化[J].中國釀造,2006,25(7):59-61.
[9]曲玲童,牛文靜,孫 征,等.錦州腌漬小菜中耐鹽乳酸菌的篩選與產(chǎn)酸性能研究[J].中國釀造,2012,31(6):83-86.
[10]張江巍,曹郁生,李海星,等.乳酸菌抗氧化活性及檢測條件[J].中國乳品工業(yè),2005,33(9):53-56.
[11]IN MY,CHANG FJ.Antioxidative effect of intestinal bacteriaBifidobacterium longumATCC15708 andLactobacillusacidophilusATCC 4356[J].Digest Dis Sci,2000,45(8):1617-1622
[12]孫 濤,巢 駿,胸小英,等.C60-D-氨基葡萄糖衍生物的制備及其抗氧化性的研究[J].上海海洋大學(xué)學(xué)報(bào),2010,19(3):404-409.
[13]劉 鵬,王 丹,任新宇,等.酸奶中乙醛含量測定方法的初步探討[J].中國乳品工業(yè),1992,20(4):151-154.
[14]王 丹,劉 鵬.酸奶中聯(lián)乙酰含量測定方法的初步探討[J].中國乳品工業(yè),1992,20(4):60-62.
[15]LIN MY,YEN CL.Antioxidative ability of lactic acid bacteria[J].J Agric Food Chem,1999,47:1460-1466.
[16]LIN MY and YEN CL.Inhibition of lipid peroxidation byLactobacillus acidophilusandBifidobacterium longum[J].J Agric Food Chem,1999,47:3661-3664.
[17]KULLISAAR T,ZILMER M,MIKELSAAR M,et al.Two antioxidativeLactobacillusstrains as promising probiotics[J].Int J Food Microbiol,2002,72:215-224.
[18]邵 偉,仇 敏,熊 澤.酸豆奶中乳酸菌體外清除自由基能力比較[J].食品研究與開發(fā),2007,128(12):159-161.
[19]丹 彤,包秋華,孟和畢力格,等.發(fā)酵乳風(fēng)味物質(zhì)乙醛、雙乙酰的合成途徑及其調(diào)控機(jī)制[J].食品科技,2012,37(7):75-79.