裘瓊芬 ,張德民,葉仙森,鄭珍珍
(1.寧波大學(xué)海洋學(xué)院,寧波 315211;2.國家海洋局寧波海洋環(huán)境監(jiān)測(cè)中心站,寧波 315012)
隨著世界人口的增長和捕撈漁業(yè)的日漸枯竭,水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)快速發(fā)展,已成為人類蛋白質(zhì)的重要來源之一。網(wǎng)箱養(yǎng)殖作為一種高度集約化的養(yǎng)殖模式,具有高產(chǎn)、高效益等特點(diǎn)[1]。但與此同時(shí),大量養(yǎng)殖廢物的輸出,使海洋食物鏈和生態(tài)系統(tǒng)遭到了直接或間接的影響[1-2]。近海是養(yǎng)殖活動(dòng)的集中地帶,海水網(wǎng)箱養(yǎng)殖對(duì)環(huán)境中碳、氮、磷、懸浮顆粒、硫化物和營養(yǎng)鹽等產(chǎn)生了顯著影響[3]。海水魚類養(yǎng)殖餌料中估計(jì)有23%的碳,21%的氮和53%的磷會(huì)在養(yǎng)殖環(huán)境底部沉積物中積累,對(duì)1 km以內(nèi)的環(huán)境都會(huì)有顯著影響[4]。Yoza等通過對(duì)夏威夷歐胡島養(yǎng)殖區(qū)域沉積物的分析表明,養(yǎng)殖區(qū)域有機(jī)碳含量比非養(yǎng)殖區(qū)高25%—37%,氨含量比非養(yǎng)殖區(qū)高30%—46%[5]。此外,有機(jī)物質(zhì)的富集,大大增加了耗氧量[4],是近海富營養(yǎng)化和氧氣缺失的源頭之一[6-7];同時(shí),因養(yǎng)殖活動(dòng)引入的抗生素類物質(zhì)[8-9],已成為水生動(dòng)物甚至人類健康的重要問題。
微生物的多樣性是正確評(píng)價(jià)海洋生態(tài)系統(tǒng)結(jié)構(gòu)和功能的主要組成部分。養(yǎng)殖活動(dòng)影響了沉積物中微生物多樣性,影響了微生物群落的組成和分布,進(jìn)而擾亂了微生物的生態(tài)功能[10]。Caruso等發(fā)現(xiàn)地中海區(qū)域的漁場(chǎng)在存在前后,水體中異養(yǎng)細(xì)菌的密度變化不大,而沉積物中異養(yǎng)細(xì)菌的密度則顯著增加[11],表明養(yǎng)殖活動(dòng)對(duì)近海環(huán)境中微生物的分布存在顯著影響。養(yǎng)殖活動(dòng)對(duì)海洋環(huán)境中微生物群落的改變反過來對(duì)人類的健康又會(huì)有決定性的影響(比如:病原菌的傳播和抗生素的耐抗)。因此,詳細(xì)分析微生物多樣性是研究人類活動(dòng)對(duì)海洋生態(tài)系統(tǒng)影響必不可少的一部分[2]。
關(guān)于養(yǎng)殖活動(dòng)對(duì)沉積物細(xì)菌多樣性影響的研究還較少,以往沉積物中微生物多樣性的研究也多是基于培養(yǎng)技術(shù)[12-14]。但已有的研究表明,分離培養(yǎng)等傳統(tǒng)的微生物研究方法只能得到環(huán)境中不到1%的微生物[15-16],因此以往對(duì)沉積物中微生物的純培養(yǎng)分析不能真實(shí)地反映其中的微生物群落結(jié)構(gòu),也會(huì)導(dǎo)致對(duì)沉積物中微生物多樣性的認(rèn)識(shí)產(chǎn)生偏差,影響對(duì)近海生態(tài)系統(tǒng)的正確評(píng)價(jià)。近年來,基于16S tag分析的454(Roche)焦磷酸測(cè)序技術(shù)的一個(gè)反應(yīng)可以得40萬到100萬條序列,包含了足夠的信息用于微生物的分類[17]。這種方法的使用在人類微生物群組和環(huán)境微生物群落方面都得到了很多新的結(jié)果[18-19],但成本還較昂貴。T-RFLP技術(shù)是將RFLP技術(shù)和熒光標(biāo)記技術(shù)相結(jié)合后發(fā)展的一種較先進(jìn)的分子生態(tài)學(xué)方法,是檢測(cè)操作分類單元(OTUs)的高通量方法,可用于大量樣品的檢測(cè),并得到數(shù)據(jù)化的結(jié)果,Liu等[20]于1997年將其首次應(yīng)用于微生物群落多樣性的研究。該方法靈敏度較高,適于微生物群落多樣性中等或更低環(huán)境樣品的多樣性分析,是目前大量環(huán)境樣品微生物生態(tài)分析的主要手段[21]。
沉積物樣品于2011年7月取自浙江省寧波市象山港內(nèi)3個(gè)不同區(qū)域(圖1):象山港口非養(yǎng)殖區(qū)(CK:29°36'11.94″N,121°46'18.00″E)、西滬港口交匯區(qū)(IS:29°33'0.66″N,121°44'10.86″E)和西滬港內(nèi)網(wǎng)箱養(yǎng)殖區(qū)(AC:29°32'33.66″N,121°46'6.42″E)。同期,國家海洋局寧波海洋環(huán)境監(jiān)測(cè)中心站測(cè)定了3個(gè)區(qū)域表層沉積物的總有機(jī)碳(TOC)含量、上層水的TOC和鹽度(表1)。每個(gè)區(qū)域布置3個(gè)平行位點(diǎn),用底泥采樣器在各位點(diǎn)采集深度大于70 cm的柱狀沉積物,粒徑分析表明均為粉砂質(zhì)粘土(表1)。將沉積物在原位按深度切割分成6層:0—5,5—10,10—15,15—20,20—25,50—55 cm。所有沉積物樣品立即用液氮冰凍,帶回實(shí)驗(yàn)室存于-20℃。
表1 樣品采集區(qū)域的理化背景Table 1 Physicochemical background of the sediments in sampling sites
采樣現(xiàn)場(chǎng)測(cè)定沉積物的氧化還原電位(Eh)和溫度。氧化還原電位的測(cè)定采用帶甘汞-鉑電極的PHB-4便攜式酸度計(jì)(上海精科),并根據(jù)pH值通過公式Eh=Eh'+(pH-7)×60對(duì)實(shí)測(cè)值Eh'進(jìn)行校正。去離子水浸提沉積物,用pH計(jì)(上海精科)測(cè)得上清液的pH值。硫酸鹽濃度測(cè)定按照HJ/T342—2007標(biāo)準(zhǔn)方法進(jìn)行。
圖1 采樣位點(diǎn)示意圖Fig.1 Sampling sites
總DNA的提取采用MP公司的土壤DNA提取試劑盒(FastDNA SPIN kit for soil),稱取混勻的沉積物核心樣品各0.5 g按照說明書進(jìn)行操作,最后將總DNA溶于100 μL DES(試劑盒提供)中。
采用帶FAM熒光標(biāo)記的細(xì)菌16S rRNA基因通用引物27F-FAM(5'-FAM-AGA GTT TGA TCM TGG CTC AG-3')和907R:(5'-CCG TCA ATT CCT TTR AGT TT-3'),取1 μL總DNA作為模板進(jìn)行PCR。反應(yīng)體系(50 μL):5 μL 10×Buffer,4 μL 2.5 mmol/L dNTP,1 μL 10 μmol/L 引物,1 μL 2.5 U Taq DNA 聚合酶(TaKaRa 公司),1 μL模板DNA,加滅菌ddH2O至50 μL并混勻。擴(kuò)增條件:94℃ 5 min;94℃ 30 s,53℃ 45 s,72℃ 90 s,30個(gè)循環(huán);72℃ 7 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)產(chǎn)量和特異性后,用DNA純化試劑盒(北京天根生化科技有限公司)純化。
采用限制性內(nèi)切酶Msp I(TaKaRa公司)對(duì)細(xì)菌的16S rRNA基因PCR純化產(chǎn)物進(jìn)行酶切。反應(yīng)體系(40 μL):4 μL 10× Buffer,4 μL 0.1%BSA,10U 限制性內(nèi)切酶,30 μL PCR 純化產(chǎn)物,加滅菌 ddH2O 至 40 μL 并混勻。37℃酶切3 h后,立即加入3×40 μL的預(yù)冷無水乙醇和0.1×40 μL的3mol/L NaAc(pH值5.2),采用乙醇沉淀法純化脫鹽,純化后溶于10 μL滅菌ddH2O。
取1—3 μL酶切純化得到的樣品,與10 μL HiDi-甲酰胺和0.2 μL內(nèi)標(biāo)(MapMarker 1000)混勻后在95℃變性3 min,馬上置于冰浴,然后通過ABI 3130 Genetic Analyzer進(jìn)行限制性片段的基因掃描,并由 ABI GeneMap分析軟件獲取T-RFLP結(jié)果。
構(gòu)建CK區(qū)域0—5 cm沉積物樣品的細(xì)菌16S rRNA基因克隆文庫。擴(kuò)增引物采用無FAM熒光標(biāo)記的引物27F/907R,其余PCR條件同上。以凝膠純化后的PCR產(chǎn)物為模板,pMD19-T Vector(TaKaRa公司)為載體,在16℃連接反應(yīng)3 h。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入大腸桿菌JM109感受態(tài)細(xì)胞(TaKaRa公司),并涂布于含X-gal和IPTG的LB培養(yǎng)基上。分別篩選93個(gè)細(xì)菌陽性克隆進(jìn)行測(cè)序,所得序列利用ARB軟件[25]中的NJ算法(Neighbor-Joining)進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析。所有序列已提交EMBL,序列號(hào)為HE648378-HE648470。
以細(xì)菌16S rRNA基因T-RFLP圖譜中每一個(gè)限制性片段(T-RF)為1個(gè)可操作分類單元(OTU),以T-RF相對(duì)峰高值(每個(gè)T-RF的峰高占累計(jì)峰高的比值)作為各OUT的相對(duì)豐度,相對(duì)豐度低于0.5%的OTU不予考慮。根據(jù)OTU的數(shù)目(S)及其相對(duì)豐度(Pi)進(jìn)行多樣性分析,包括計(jì)算Shannnon-Weiner多樣性指數(shù)(H'=-∑ Pi lnPi)和Pilou的均勻度指數(shù)(E'=H/lnS)。
象山港不同區(qū)域的沉積物溫度相似,且具有相同的變化趨勢(shì)(表2):表層沉積物的溫度均為26.5℃,隨著深度的增加,溫度逐漸降低。pH值測(cè)量結(jié)果顯示,沉積物均呈微堿性(圖2),pH值處于7.6—7.9之間,且CK與IS區(qū)域沉積物相似,但AC區(qū)域不同深度沉積物pH值明顯高于其它兩個(gè)區(qū)域。與pH值不同,AC區(qū)域各深度沉積物的Eh介于CK和IS區(qū)域,且隨深度呈下降趨勢(shì)(圖2)。CK區(qū)域不同深度沉積物的Eh變化不明顯,均處于190 mV左右,遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于IS區(qū)域(100 mV左右)。硫酸鹽含量在養(yǎng)殖區(qū)和交匯區(qū)沉積物中隨著深度的變化無明顯規(guī)律(圖2),但在對(duì)照區(qū)呈現(xiàn)隨深度降低的趨勢(shì)。尤其在50—55 cm沉積物中,硫酸鹽含量顯著降低,低于768×10-6。平均來說,AC區(qū)域的較高,不同深度沉積物的均值為1200×10-6,CK區(qū)域則只有 950×10-6。
表2 各區(qū)域不同深度沉積物溫度(Mean±SE,n=3)Table 2 Temperature of the different deep sediments in each site(Mean± SE,n=3)
圖2 各區(qū)域不同深度沉積物的pH、Eh和硫酸鹽含量(Mean±SE,n=3)Fig.2 pH,Eh andcontents of the different deep sediments in each site(Mean±SE,n=3)
采用細(xì)菌16S rRNA基因的通用引物27F/907R擴(kuò)增沉積物總DNA,進(jìn)行末端限制性片段長度多態(tài)性分析,得到細(xì)菌群落的T-RFLP圖譜(圖3)。由圖3可以看出,所有沉積物中細(xì)菌種類較豐富,末端限制性片段(T-RFs)的長度主要集中在100—200 bp和510—520 bp左右。相比于同一區(qū)域、不同深度沉積物的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)差異,不同區(qū)域之間細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的差異更加顯著。比較3個(gè)區(qū)域不難發(fā)現(xiàn),CK區(qū)細(xì)菌T-RFs明顯多于AC區(qū),且以T-RF長度處于165 bp和520 bp左右的相對(duì)豐度最高。在IS區(qū)域,則是T-RF 230 bp和520 bp占主要地位。AC區(qū)域中,不同平行位點(diǎn)間細(xì)菌群落的差異較大,尤其是表層0—5 cm、20—25 cm和50—55 cm。但T-RF 520 bp所代表的細(xì)菌在不同深度的沉積物中還是占有較高的相對(duì)豐度。
由細(xì)菌16S rRNA基因的克隆文庫和系統(tǒng)發(fā)育分析(圖4)可知,沉積物中細(xì)菌的多樣性豐富,主要包括變形細(xì)菌綱(Proteobacteria)、厚壁菌門(Firmicutes)、芽單胞菌門(Gemmatimonadetes)、放線菌門(Actinobacteria)、熱微菌門(Thermomicrobia)、硝化螺旋菌門(Nitrospirae)、酸桿菌門(Acidobacteria)、梭桿菌門(Fusobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes)浮霉菌門(Planctomycetes)以及OP11等。對(duì)所得序列進(jìn)行in silico酶切分析可知,T-RF 165 bp可能屬于變形細(xì)菌(Proteobacteria)或厚壁菌門(Firmicutes)的細(xì)菌,但克隆文庫中只有4個(gè)克隆屬于厚壁菌門(Firmicutes),因此推測(cè)T-RF 165 bp主要屬于變形細(xì)菌綱(Proteobacteria);而T-RF 510—520 bp所代表的細(xì)菌則主要分布在熱微菌門(Thermomicrobia)。由此可見,熱微菌門(Thermomicrobia)的細(xì)菌在所有沉積物中均有一定的豐度,在細(xì)菌克隆文庫中也占了19.4%;而變形細(xì)菌(Proteobacteria)則在未受養(yǎng)殖活動(dòng)影響的CK區(qū)域中有較高的相對(duì)豐度,在CK區(qū)域0—5 cm沉積物樣品的細(xì)菌克隆文庫中占23.7%。
基于細(xì)菌16S rRNA基因T-RFLP圖譜中末端限制性片段的數(shù)目及其相對(duì)豐度,計(jì)算了各區(qū)域不同深度沉積物中細(xì)菌多樣性指數(shù)H'和均勻度指數(shù)E'(表3)。由表3可知,在AC區(qū)域,除表層0—5 cm外,細(xì)菌的多樣性指數(shù)和均勻度指數(shù)均隨著深度的增加而降低。與對(duì)照區(qū)CK相比,AC區(qū)域細(xì)菌的多樣性顯著降低。與AC不同,CK區(qū)域具有較一致的均勻度指數(shù),細(xì)菌群落在不同深度的沉積物中具有相似物種豐富度。IS區(qū)域的多樣性指數(shù)和均勻度指數(shù)則介于CK和AC區(qū)域之間。因此,從細(xì)菌的多樣性來說,CK>IS>AC。
圖3 沉積物中細(xì)菌群落的T-RFLP圖譜Fig.3 T-RFLP profiles of bacterial communities of sediments
表3 基于T-RFLP圖譜的細(xì)菌多樣性分析(Mean±SE,n=2或3)Table 3 Analysis of bacterial diversity based on T-RFLP profiles(mean± SE,n=2 or 3)
圖4 細(xì)菌16S rRNA基因序列的系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系Fig.4 Phylogenetic relationship(neighbor-joining)of bacterial 16S rRNA gene sequences
微生物群落的結(jié)構(gòu)和功能受環(huán)境因素的制約[26],沉積物中微生物的多樣性與養(yǎng)殖活動(dòng)對(duì)近海環(huán)境的影響密切相關(guān)。一直以來,溫度被認(rèn)為是微生物群落最重要的影響因子之一[27-28]。本研究的結(jié)果也顯示,隨著深度的增加,沉積物溫度降低(表2),細(xì)菌群落的多樣性呈降低趨勢(shì)(表3)。另外,許多研究表明,pH值對(duì)微生物群落結(jié)構(gòu)會(huì)產(chǎn)生顯著影響[29-30]。網(wǎng)箱養(yǎng)殖區(qū)沉積物的pH值較對(duì)照區(qū)及交匯區(qū)高(圖2),對(duì)養(yǎng)殖區(qū)微生物多樣性的降低。養(yǎng)殖活動(dòng)還給近海環(huán)境帶入了大量的還原性有機(jī)物[31],耗氧率也會(huì)比對(duì)照區(qū)高2—5倍[4]。因此,本研究中養(yǎng)殖區(qū)沉積物的氧化還原電位與對(duì)照區(qū)相比也降低了。氧化還原電位的降低使沉積物環(huán)境逐漸呈現(xiàn)缺氧狀態(tài),影響需氧微生物的代謝活動(dòng),不利于有機(jī)質(zhì)的好氧分解,進(jìn)而影響?zhàn)B殖環(huán)境與養(yǎng)殖生物的健康。氧化還原電位和pH值與其它營養(yǎng)鹽類的分布存在一定關(guān)系[32]。本研究中沉積物硫酸鹽的濃度變化(圖2C)與氧化還原電位的變化無很好的相關(guān)性,說明存在影響沉積物氧化還原電位的其它因素,硫酸鹽并非主導(dǎo)因素。因此,沉積物的溫度、pH值和氧化還原電位都會(huì)影響其中微生物的群落結(jié)構(gòu)和多樣性[13,29]。
多樣性指數(shù)是評(píng)價(jià)微生物群落多樣性的有效方法,它包括微生物種類的豐富度及種類的均勻度[33]。細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的多樣性分析表明,網(wǎng)箱養(yǎng)殖降低了象山港近海沉積物中細(xì)菌群落的多樣性(表3)。在未受養(yǎng)殖活動(dòng)影響的對(duì)照區(qū)沉積物中,細(xì)菌群落多樣性豐富,多樣性指數(shù)H'>3.5,且具有良好的均勻度(0.93)。受養(yǎng)殖活動(dòng)影響后,沉積物中微生物的多樣性指數(shù)下降,且不同深度沉積物中細(xì)菌的均勻度也不再一致。近海的網(wǎng)箱養(yǎng)殖不但降低了沉積物中細(xì)菌的多樣性,而且細(xì)菌的群落結(jié)構(gòu)也發(fā)生了改變。在對(duì)照區(qū),變形細(xì)菌(Proteobacteria)和熱微菌門(Thermomicrobia)的細(xì)菌是其中的優(yōu)勢(shì)菌群(圖3,圖4),但在養(yǎng)殖區(qū),變形細(xì)菌(Proteobacteria)豐度明顯減少,且因養(yǎng)殖活動(dòng)中不同時(shí)期引入不同數(shù)量和成分的有機(jī)物,有機(jī)物在不同位置和不同深度的分布都可能存在一定差異,使得不同深度、不同平行位點(diǎn)間細(xì)菌群落的差異較大(圖3)。在交匯區(qū),養(yǎng)殖海水受到外界海水的稀釋,其中由養(yǎng)殖活動(dòng)帶入的物質(zhì)濃度降低,沉積物受養(yǎng)殖活動(dòng)的影響也降低,使微生物的多樣性處于對(duì)照區(qū)與養(yǎng)殖區(qū)之間(表3)。劉晶晶等[14]采用分離培養(yǎng)的方法對(duì)象山港網(wǎng)箱養(yǎng)殖區(qū)細(xì)菌群落的研究中也發(fā)現(xiàn),網(wǎng)箱養(yǎng)殖區(qū)細(xì)菌群落的多樣性要低于對(duì)照點(diǎn),且某些與魚類疾病相關(guān)的假單胞菌、弧菌等特定細(xì)菌類群富集。由此可見,近海網(wǎng)箱養(yǎng)殖使沉積物中的細(xì)菌群落由多樣性較高的穩(wěn)定結(jié)構(gòu)向多樣性降低的不穩(wěn)定結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)變,使養(yǎng)殖環(huán)境處于相對(duì)脆弱狀態(tài),導(dǎo)致養(yǎng)殖病害爆發(fā)幾率增加。
此外,養(yǎng)殖區(qū)表層0—5 cm沉積物中細(xì)菌的多樣性低于5—10 cm的沉積物,這與Bore等[34]對(duì)潮間帶沉積物中細(xì)菌的多樣性研究結(jié)果相似,他們發(fā)現(xiàn)10—15 cm沉積物中細(xì)菌的可操作分類單元(OUT)數(shù)高于表層0—10 cm的樣品。推測(cè)其原因可能是表層沉積物受流動(dòng)水體的干擾最為直接,養(yǎng)殖活動(dòng)帶入的有機(jī)物等也主要聚集在沉積物表層,使表層沉積物中微生物的多樣性明顯下降。
綜上所述,本研究將T-RFLP技術(shù)和16S rRNA基因文庫的方法相結(jié)合,發(fā)現(xiàn)近海網(wǎng)箱養(yǎng)殖活動(dòng)不但使象山港沉積物Eh、pH等理化性質(zhì)有所改變,而且使細(xì)菌的群落結(jié)構(gòu)也發(fā)生了變化,降低了細(xì)菌群落的多樣性和均勻度。
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