林葉新, 夏之寧,*, 陳 華, 楊豐慶
(1.重慶大學(xué)生物工程學(xué)院,重慶 400030;2.重慶大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,重慶 400030)
黃連為毛莨科植物黃連Coptis chinensisFranch的干燥根莖[1]。小檗堿為黃連中含有量最高的原小檗堿型生物堿,也是最重要的活性成分之一,具有抗炎、抗菌、抗癌,治療糖尿病和心血管疾病,及抑制脂肪分化等多方面藥理作用[2-6]。
傳統(tǒng)用于提取黃連小檗堿的方法有稀硫酸法、乙醇浸提法、水提法等[7-9],這些方法有一定的局限性,如消耗溶劑量大、耗時(shí)長(zhǎng)、提取率低等。因此,為提高黃連小檗堿的提取率,一些現(xiàn)代化方法,如有超聲波提取法、超微振動(dòng)法、亞臨界水提取法、加速溶劑萃取法、微波-索氏工藝聯(lián)合提取法等[10-13]也被采用于黃連小檗堿的提取中。尤其是微波輔助提取,因微波具有能促進(jìn)植物細(xì)胞破裂,提高有效成分從物料內(nèi)部向提取溶劑界面的擴(kuò)散速率,減少提取溶劑的使用量[14]等優(yōu)點(diǎn),在天然產(chǎn)物提取中得到廣泛的應(yīng)用。
雖然已有采用微波輔助提取黃連中的生物堿的報(bào)道,但在微波提取工藝中,因微波時(shí)間過(guò)長(zhǎng),容易引起爆沸現(xiàn)象,通常只能采取間歇式微波提取[15]。所以常規(guī)的微波輔助提取,一般有兩種:直接采用微波提取的方式[15];或是先用微波處理樣品,提高物料的擴(kuò)散率,再用其他方法 (如索氏抽提)提取目標(biāo)物[16]。這類(lèi)微波提取方式,耗時(shí)長(zhǎng)、操作步驟繁瑣。
本實(shí)驗(yàn)采用微波輔助回流法提取,對(duì)黃連中的小檗堿進(jìn)行提取,并通過(guò)單因素及正交設(shè)計(jì)法確定提取的最佳工藝。研究中采用的TCMC—204型溫控式微波化學(xué)反應(yīng)器是可控溫式的,能有效避免爆沸現(xiàn)象,并降低了高溫破壞目標(biāo)產(chǎn)物的可能性。通過(guò)與傳統(tǒng)提取工藝的對(duì)比,發(fā)現(xiàn)此方法提取時(shí)間短,提取率高,優(yōu)于其他提取方式。此外,本研究還采用了AB-8大孔吸附樹(shù)脂對(duì)黃連生物堿進(jìn)行分離純化。通過(guò)比較小檗堿的提取率和純化后的純度,得到一種快速簡(jiǎn)單有效地提取及純化川黃連中小檗堿的方法。
1.1 材料 川黃連購(gòu)買(mǎi)于重慶康濟(jì)躍洪藥業(yè)有限公司。將黃連粉碎,過(guò)50目篩。鹽酸小檗堿標(biāo)準(zhǔn)品 (純度≥98%,上海源葉生物科技有限公司)、乙腈 (分析純,上海陸都試劑化工廠)、冰醋酸(分析純,重慶川東化工有限公司)、無(wú)水乙醇(分析純,重慶川東化工有限公司)、AB-8大孔樹(shù)脂 (天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所)。
1.2 儀器 TCMC—204型溫控式微波化學(xué)反應(yīng)器(南京陵江科技開(kāi)發(fā)有限責(zé)任公司)、LC—900B高效液相色譜儀 (配LB 900型紫外檢測(cè)器,重慶川儀九廠)、HW—2000色譜工作站 (南京千譜軟件有限公司)、SHZ-D(Ⅲ)循環(huán)水式真空泵 (鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司)、UV—2450紫外分光光度計(jì) (日本島津公司)、AY120電子天平 (日本島津公司)
1.3 方法
1.3.1 色譜條件 Kromasil C18色譜柱 (250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱,柱溫25℃;流動(dòng)相為乙腈-水 (30∶70)含0.6% 冰醋酸,體積流量1.0 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)342 nm。
1.3.2 對(duì)照品工作曲線的測(cè)定 準(zhǔn)確稱(chēng)取2.5 mg鹽酸小檗堿標(biāo)準(zhǔn)品,用色譜流動(dòng)相溶解成0.025 mg/mL的鹽酸小檗堿母液,備用。使用時(shí),用色譜流動(dòng)相逐級(jí)稀釋至所需的質(zhì)量濃度。用 RPHPLC測(cè)定鹽酸小檗堿的量,每個(gè)樣品測(cè)定3次。以鹽酸小檗堿峰面積對(duì)質(zhì)量濃度擬合工作曲線。
1.3.3 微波輔助回流法提取 準(zhǔn)確稱(chēng)取川黃連藥粉 (3.0 g),在設(shè)定條件下,采用TCMC—204型溫控式微波化學(xué)反應(yīng)器,對(duì)黃連小檗堿進(jìn)行提取。提取工藝優(yōu)化時(shí),先通過(guò)單因素試驗(yàn) (考察乙醇濃度、微波回流時(shí)間、提取溫度、料液比、提取次數(shù)等因素)選取影響黃連小檗堿提取率的因素和水平,再進(jìn)行正交試驗(yàn),確定最佳提取工藝。提取率計(jì)算公式為 (提取所得小檗堿的質(zhì)量/生藥質(zhì)量)×100%。單因素初始條件為乙醇40%,微波時(shí)間10 min,溫度為70℃,料液比為1∶20,提取次數(shù)為1次。
1.3.4 回流提取及水浴加熱提取 準(zhǔn)確稱(chēng)取黃連藥粉 (3.0 g),進(jìn)行回流提取和水浴加熱提取1 h,各進(jìn)行平行試驗(yàn)3次。其他提取條件與通過(guò)正交試驗(yàn)獲得的微波輔助回流提取條件如溫度、乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)、料液比、提取次數(shù)等保持一致。測(cè)定提取液中小檗堿的量,計(jì)算提取率。
1.3.5 AB-8大孔樹(shù)脂純化工藝 (1)大孔吸附樹(shù)脂預(yù)處理:將大孔吸附樹(shù)脂用95%乙醇浸泡24 h,使其充分溶脹,再用乙醇洗至溶液加適量蒸餾水無(wú)白色渾濁現(xiàn)象時(shí)為止,最后用蒸餾水洗至無(wú)醇味,備用。(2)最大上樣量的考察:AB-8樹(shù)脂濕法裝柱,將微波輔助回流法提取得到的樣品濃縮至小檗堿質(zhì)量濃度為2.9 mg/mL,之后把濃縮液100 mL緩慢加入裝有10 mL濕AB-8的樹(shù)脂的玻璃柱中,控制體積流量為1.0 mL/min,每樹(shù)脂床體積(Bed volume,BV)即10 mL收集1個(gè)流分,并用RP-HPLC法測(cè)定每1 BV中小檗堿的量。根據(jù)每1 BV中小檗堿的量確定最大上樣量。(3)水洗脫用量的考察:將已吸附好黃連提取液的AB-8樹(shù)脂,用蒸餾水洗脫雜質(zhì),洗脫液體積流量為1.0 mL/min。每1 BV收集一次,測(cè)定小檗堿泄漏情況。(4)洗脫劑體積分?jǐn)?shù)的考察:根據(jù)確定的最大上樣量上樣,將吸附好黃連提取液的大孔樹(shù)脂,用適量蒸餾水洗脫雜質(zhì),再分別用30%、50%、70%、90%的乙醇溶液作為洗脫液,洗脫液體積流量為1.0 mL/min,洗脫5 BV,并收集好。測(cè)定5 BV流分中小檗堿的總量。 (5)洗脫劑用量的考察:按 (3)和 (4)項(xiàng)所得的蒸餾水洗脫劑用量和乙醇洗脫劑體積分?jǐn)?shù),洗脫已吸附好黃連提取液的AB-8樹(shù)脂,洗脫液體積流量為1.0 mL/min。每1 BV為一個(gè)考察單位,至洗脫液近無(wú)色,分別測(cè)定各BV洗脫液中小檗堿的量。(6)純化試驗(yàn)及小檗堿回收率:取一定量的黃連提取濃縮液按最佳純化條件進(jìn)行吸附和洗脫,將洗脫液和上樣前濃縮液分別旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至黏稠狀,移置真空干燥箱干燥,測(cè)定純化前后提取物中小檗堿的量,并計(jì)算純度及小檗堿回收率。
2.1.1 RP-HPLC色譜條件 在選定的1.3.1項(xiàng)的色譜條件下,川黃連提取物中目標(biāo)物小檗堿的峰與其他成分可實(shí)現(xiàn)基線分離。小檗堿色譜峰的tR值為8.6 min,見(jiàn)圖1。
圖1 川黃連微波輔助回流提取液 (A)與鹽酸小檗堿標(biāo)準(zhǔn)品 (B)的RP-HPLC譜圖對(duì)照Fig.1 RP-HPLC chromatograms of Coptis chinensis Franch from Sichuan Province extracts using microwave assisted reflux extraction(A)and berberine hydrochloride standard(B)
2.1.2 RP-HPLC外標(biāo)法繪制小檗堿的標(biāo)準(zhǔn)曲線將小檗堿母液用流動(dòng)相稀釋成 12.50、6.25、3.125、1.562、0.781和0.391 μg/mL 6個(gè)質(zhì)量濃度,分別進(jìn)行RP-HPLC分析,在0.391~12.50 μg/mL范圍內(nèi),小檗堿的量與其峰面積具有良好的線性關(guān)系Y=48 965X+6 396, (R2=0.999 3,n=6),小檗堿質(zhì)量濃度與其峰面積具有良好的線性關(guān)系。檢測(cè)限 (3 δ)為0.038 μg/mL,定量限(10 δ)為 0.169 μg/mL。
2.2.1 單因素試驗(yàn) 依次考察了乙醇體積分?jǐn)?shù)、微波回流時(shí)間、提取溫度、料液比、提取次數(shù)等因素對(duì)川黃連中小檗堿提取率的影響。見(jiàn)圖2。
圖2 單因素試驗(yàn)Fig.2 Single factor experiment
通過(guò)與圖1、2的結(jié)果比較來(lái)看,提取次數(shù)對(duì)提取率的影響并不是很大,考慮節(jié)約溶劑和能源的因素,將選擇提取次數(shù)為2次,并不作為提取工藝的必要條件,加入到正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)中。因此,最終確定正交試驗(yàn)的所選的因素水平為時(shí)間 (10 min、20 min和30 min)、溫度 (60℃、70℃和80℃)、乙醇 (50%、60%和70%),料液比 (1∶15、1∶20和1∶25),提取次數(shù)為2次。
2.2.2 正交試驗(yàn) 根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,直接設(shè)定提取次數(shù)2次。并選取微波時(shí)間 (A)、提取溫度 (B)、乙醇體積分?jǐn)?shù) (C)、料液比 (D)4個(gè)因素進(jìn)行正交試驗(yàn)。采用L9(34)正交表,以小檗堿的量為評(píng)價(jià)指標(biāo),觀察以上4個(gè)因素對(duì)川黃連中小檗堿提取工藝的影響。因素水平見(jiàn)表1,并通過(guò)軟件正交設(shè)計(jì)助手Ⅱ3.1設(shè)計(jì)試驗(yàn),試驗(yàn)安排及結(jié)果見(jiàn)表2。
表1 因素水平Tab.1 Factors and levels of orthogonal test
由R值可知,各因素對(duì)提取率的影響大小為B>A>C>D,即溫度對(duì)小檗堿提取率的影響最大,其次是時(shí)間、乙醇濃度和料液比,通過(guò)k值可判斷出最佳提取條件是A1B3C1D3,即微波回流10 min,提取溫度80℃,50%乙醇,料液比1∶25,提取次數(shù)2次。
表2 L9(34)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Tab.2 Design and results of orthogonal test L9(34)
2.2.3 加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn) 在優(yōu)化的微波輔助回流提取條件下,加標(biāo)樣回收率在98.8% ~101.7%之間,平均加標(biāo)回收率為100.2%,RSD為1.5%(n=3),表明已優(yōu)化的微波回流提取方法有較好的提取率及重復(fù)性。
為更好的與傳統(tǒng)提取方法相比較,3種提取方法中,除提取時(shí)間不同外 (微波回流提取法為10 min;單純回流法及水浴加熱法為1 h),所使用的提取溶劑的濃度、料液比、溫度及提取次數(shù)均與微波輔助回流提取正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)所得的最優(yōu)條件一致(提取溫度80℃,50%乙醇,料液比1∶25,提取2次)。每種方法,均重復(fù)3次試驗(yàn)。結(jié)果顯示,在其它提取條件都相同的情況下,微波輔助回流法提取時(shí)間僅為10 min時(shí),提取率為8.5%,比單純的回流1 h或水浴加熱1 h對(duì)小檗堿的提取率都要高。這3種方法中,提取率最低的為水浴加熱,僅為5.5%;而單純回流法,提取率為6.2%。
2.4.1 最大上樣量的考察 按1.3.5項(xiàng) (2)收集流分并測(cè)定每1 BV中小檗堿的量 (圖3)。從第4 BV開(kāi)始,小檗堿泄漏量高于1 mg,而到5 BV時(shí),小檗堿檢出量明顯增多??紤]到生產(chǎn)工藝中要避免并盡量減少小檗堿的泄漏,確定最大上樣體積為3 BV的川黃連提取液 (小檗堿質(zhì)量濃度為2.9 mg/mL),即最大上樣量為8.7 mg小檗堿/mL樹(shù)脂(濕體積)。
圖3 小檗堿泄露曲線Fig.3 Curve of berberine leakage
2.4.2 水洗脫劑用量的考察 用水洗脫的目的是除去提取液中的雜質(zhì),提高小檗堿的純度。按1.3.5項(xiàng) (3)的方法收集流分,并測(cè)定小檗堿的量。結(jié)果如圖4所示,隨著水洗次數(shù)的增加,已吸附好的小檗堿亦部分被洗下,造成其損失量也增大,當(dāng)水洗脫量達(dá)4 BV時(shí),小檗堿損失率高于0.2 mg。雖然水洗脫量為3 BV時(shí),已有部分小檗堿被洗脫下來(lái),但接收流分期間,觀察到在第3 BV時(shí),所獲得的溶液與第1和第2 BV一樣有輕微渾濁狀,說(shuō)明其中仍存在少量的雜質(zhì)。因此,為更好的洗脫雜質(zhì),提高小檗堿的純度,并減少小檗堿的損失量,選擇3 BV為洗脫雜質(zhì)用水量。
圖4 小檗堿泄露曲線Fig.4 Curve of berberine leakage
2.4.3 洗脫劑體積分?jǐn)?shù)的考察 按1.3.5項(xiàng) (4)的方法收集5 BV流分,并測(cè)定5 BV流分中小檗堿的總量。如圖5所示,小檗堿洗脫量隨乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加而增大,但當(dāng)乙醇增至90%時(shí),洗脫的小檗堿的量明顯降低。這和小檗堿自身的性質(zhì)有關(guān),其在高體積分?jǐn)?shù)的乙醇條件下溶解性能較差。另外,收集流分過(guò)程中發(fā)現(xiàn),在90%乙醇洗脫液中出現(xiàn)明顯的渾濁狀。因此后續(xù)試驗(yàn)中選擇70%的乙醇溶液作為洗脫液。
圖5 洗脫劑體積分?jǐn)?shù)的影響Fig.5 Effect of eluent concentration
2.4.4 洗脫劑用量的考察 由圖6曲線可知,在用70%乙醇洗脫的過(guò)程中,前3 BV的洗脫液已可將絕大部分小檗堿解吸下來(lái),所獲小檗堿的質(zhì)量濃度分別為4.78、2.73、0.42 mg/mL;而在第4 BV洗脫液中,小檗堿的質(zhì)量濃度<0.16 mg/mL,到了第5 BV時(shí)則檢測(cè)不出洗脫液中含有小檗堿。因此,為節(jié)約成本,減少洗脫劑的損耗,故確定洗脫劑70%乙醇的用量為3 BV。
圖6 小檗堿解吸曲線Fig.6 Berberine desorption curves
2.4.5 驗(yàn)證試驗(yàn) 在優(yōu)化的工藝條件下對(duì)川黃連提取液中的小檗堿進(jìn)行除雜純化,即以8.7 mg/mL濕樹(shù)脂小檗堿上樣,先用3 BV蒸餾水洗脫雜質(zhì),再用3 BV的70%的乙醇解吸小檗堿,整個(gè)分離純化過(guò)程控制體積流量為1.0 mL/min,經(jīng)AB-8樹(shù)脂分離純化后,其干固物中小檗堿的純度從19.3%提高至73.2%,目標(biāo)物小檗堿的回收率為91.3%。有文獻(xiàn)報(bào)道,用D101大孔樹(shù)脂純化黃連總生物堿,純化后的黃連總生物堿純度約為70%[17]。相比之下,本純化工藝操作更簡(jiǎn)單,純化效果好,可直接獲得黃連中有效成分小檗堿的純化物。
本研究采用溫控式微波化學(xué)反應(yīng)器微波輔助回流提取川黃連中的小檗堿。并通過(guò)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)對(duì)黃連小檗堿的提取工藝進(jìn)行考察,獲得最佳提取工藝條件為微波回流10 min,提取溫度80℃,50%乙醇,料液比1∶25,提取次數(shù)2。結(jié)果表明,在優(yōu)化的提取條件下,小檗堿的提取率為8.5%,高于傳統(tǒng)的單純回流提取和水浴加熱提取的提取率。此外微波輔助回流法快速、操作成本低,可減少原料預(yù)處理費(fèi),且對(duì)環(huán)境無(wú)害。
為進(jìn)一步純化小檗堿,本研究還利用AB-8大孔吸附樹(shù)脂對(duì)川黃連中的小檗堿進(jìn)行分離純化,得到最佳分離純化條件為:小檗堿上樣量為8.7 mg/mL濕樹(shù)脂,用3 BV蒸餾水洗脫雜質(zhì),再用3 BV的70%的乙醇解吸小檗堿,整個(gè)分離純化過(guò)程,控制體積流量為1.0 mL/min。在此純化工藝下,川黃連醇提液分離純化前后干固物中小檗堿的純度從19.3%提高到73.2%,回收率達(dá)91.3%。本純化工藝,操作更簡(jiǎn)單,在不需要調(diào)節(jié)pH值條件下,對(duì)小檗堿的分離純化效果更好。另外,由于大孔樹(shù)脂可反復(fù)利用,成本較低,生產(chǎn)周期較短,適宜大規(guī)模生產(chǎn)。
因此,本研究工作將有望應(yīng)用于鹽酸小檗堿的提取工業(yè)中,為黃連資源的工業(yè)化應(yīng)用起到一定的促進(jìn)作用。
[1]鄭漢臣.藥用植物與生藥學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2006.
[2]余園媛,王伯初,彭 亮,等.黃連藥理研究進(jìn)展[J].重慶大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2006(2):107-111.
[3]崔學(xué)軍.小檗堿的藥理學(xué)研究進(jìn)展及臨床新用途[J].時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2006,17(7):1311-1312.
[4]黃 琳,陸付耳,楊小玉,等.黃連解毒湯對(duì)胰島素抵抗大鼠肝臟線粒體氧化應(yīng)激的影響[J].中國(guó)中西醫(yī)結(jié)合雜志,2008,28(8):1433-1437.
[5]Huang Cheng,Zhang Yuebo,Gong Zhenwei,et al.Berberine inhibits 3T3-L1 adipocyte differentiation through the PPARγ pathway[J].Biochem Biophys Res Commun,2006,348(2):571-578.
[6]Niu Lingying,Qiao Wei,Hu Zhendong,et al.Berberine attenuates lipopolysaccharide-induced impairments of intestinal glutamine transport and glutaminase activity in rat[J].Fitoterapia,2011,82(3):323-330.
[7]施 薇,王淑敏,鄭友蘭,等.黃連生藥中鹽酸小檗堿提取工藝的優(yōu)選[J].時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2009,20(10):2519-2520.
[8]冀滿(mǎn)豐.黃連中的鹽酸小檗堿的提取、分離及分離物的含量測(cè)定研究[J].國(guó)際醫(yī)藥衛(wèi)生導(dǎo)報(bào),2006,12(24):75-77.
[9]武 佳,譚桂蓮,楊 紅.黃連中鹽酸小檗堿提取工藝探究[J]. 時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2007,18(2):437-438.
[10]黃志強(qiáng),周民杰.黃連中小檗堿的超聲波提取工藝[J].化學(xué)工程師,2006(8):5.
[11]楊培民,代 龍,曹廣尚.黃連超微振動(dòng)提取工藝初探[J]. 齊魯藥事,2008,27(4):238-240.
[12]盧 佳,張素娟,錢(qián)廣生,等.亞臨界水提取法提取黃連中的4種生物堿[J].華西藥學(xué)雜志,2008,23(6):675-676.
[13]Chen Junhui,Wang Fengmei,Liu Jie,et al.Analysis of alkaloids inCoptis chinensisFranch by accelerated solvent extraction combined with ultra performance liquid chromatographic analysis with photodiode array and tandem mass spectrometry detections[J].Analytica Chimica Acta,2008,613(2):184-195.
[14]姚清華,杜 瑩,肖 雷.微波技術(shù)在活性物質(zhì)提取中的應(yīng)用[J]. 生物學(xué)雜志,2007,24(6):61-63.
[15]鄧遠(yuǎn)輝,楊 柳,周 蓓,等.微博用于中藥黃連的提?。跩]. 數(shù)理醫(yī)藥學(xué)雜志,2002,15(1):88-89.
[16]郭錦棠,李雄勇,楊俊紅,等.微波-索氏聯(lián)合工藝提取鹽酸小檗堿[J]. 化工進(jìn)展,2003,22(12):1338-1341.
[17]許沛虎,高 媛,張雪瓊,等.大孔樹(shù)脂純化黃連總生物堿的研究[J]. 中成藥,2009,31(3):390-393.