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    氣相色譜法測定雞精中2種氯丙醇的方法研究

    2013-07-28 06:55:00季曉娟王丹丹
    關(guān)鍵詞:丙醇乙醚雞精

    黃 琦,季曉娟,王丹丹

    (1.浙江科技學(xué)院 生物與化學(xué)工程學(xué)院,杭州310023;2.浙江省食品藥品檢驗(yàn)研究院,杭州310004)

    氯丙醇是國際公認(rèn)的食品污染物,氯丙醇的污染主要來源于酸水解植物蛋白(HVP),而HVP被廣泛應(yīng)用于各種調(diào)味品。蛋白水解物中氯丙醇的種類有:3-氯-1,2-丙二醇(3-MCPD)、2-氯-1,3-丙二醇(2-MCPD)、1,3-二氯-2-丙醇(1,3-DCP)和2,3-二氯-1-丙醇(2,3-DCP)。其中3-MCPD和1,3-DCP是主要檢測的對象。毒理學(xué)研究表明3-MCPD有致癌性、遺傳毒性、生殖毒性、神經(jīng)毒性和免疫毒性等,是氯丙醇中的主要成分[1]。WHO/FAO食品添加劑聯(lián)合專家委員會(huì)(JECFA)提出,3-MCPD的暫定每日最大耐受攝入量(PMTDI)為2μg(以每千克體質(zhì)量計(jì)),認(rèn)為1,3-DCP為遺傳毒性致癌物,目前不宜制訂每日耐受量(TDI)[2]。許多國家已經(jīng)制訂了HVP和醬油中3-MCPD的限量標(biāo)準(zhǔn),歐盟要求HVP和醬油中的3-MCPD低于20μg/kg,德國和澳大利亞規(guī)定1,3-DCP應(yīng)低于50μg/kg[3]。目前,對氯丙醇的研究主要集中在日常生活中用到的醬油[4-6],而雞精作為常用調(diào)味品之一報(bào)道較少。氯丙醇定量的主要方法是氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法,該法靈敏度高,專屬性好,但是需要采用同位素內(nèi)標(biāo)定量,操作繁瑣,成本較高,而且儀器價(jià)格昂貴,難以普及。本試驗(yàn)采用基質(zhì)固相分散萃取法(MSPD)提取、凈化樣品,用七氟丁?;溥颍℉FBI)衍生化,建立氣相色譜-電子捕獲檢測器(GC-ECD)測定雞精中3-MCPD和1,3-DCP的方法。實(shí)驗(yàn)表明,該方法簡便易行,靈敏度高,結(jié)果令人滿意,具有較強(qiáng)的實(shí)用性。

    1 材料與儀器

    3-MCPD和1,3-DCP(純度≥99.0%):德國 Merck公司,HFBI:美國Pierce公司;ExtrelutTM20硅藻土填料:德國Merck公司;正己烷(色譜純):美國Sigma公司;乙醚為分析純,重蒸后使用;氯化鈉和無水硫酸鈉為分析純,經(jīng)過600℃灼燒4h后得到;水為超純水;雞精購于本地超市;除非另有說明,實(shí)驗(yàn)所用試劑均為分析純。

    島津GC-14C型氣相色譜儀配電子捕獲檢測器(ECD):日本島津公司,色譜柱:J&WDB-5(30m×0.32mm×0.25μm),玻璃層析柱(40cm×2cm),旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器,氮?dú)庹舭l(fā)器,恒溫箱,渦漩混合器,1mL氣密針。

    2 試驗(yàn)部分

    2.1 樣品的提取、凈化

    稱取試樣2.00g,置100mL燒杯中,加飽和氯化鈉溶液(稱取氯化鈉290g,加水溶解并稀釋至1 000mL)6g,超聲15min。加入5g ExtrelutTM20硅藻土柱填料,攪拌均勻后,裝入已依次充填1cm高的無水硫酸鈉和5g ExtrelutTM20的玻璃層析柱中,壓實(shí),再填入1cm高的無水硫酸鈉,放置15min后,用正己烷洗脫去除脂溶性雜質(zhì),并棄去。用乙醚140mL洗脫,流速約5mL/min,收集乙醚洗脫液。在收集的乙醚洗脫液中加無水硫酸鈉15g,振搖,放置10min后,過濾,濾液于40℃溫度下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至約0.5mL(切勿蒸干),轉(zhuǎn)移至約5mL具塞試管中,用正己烷洗滌旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)瓶,合并洗滌液至試管中,并用正己烷稀釋至刻度。

    2.2 衍生化

    將上述試樣提取液在室溫下用氮?dú)鉂饪s至2.0mL,用氣密針迅速加入HFBI 50μL,立即密塞。渦旋充分混合后,于75℃下保溫30min。取出后,放置至室溫,加飽和氯化鈉溶液3mL;渦旋混合0.5min,靜置使兩相分離。取上層正己烷加無水硫酸鈉約0.3g干燥,靜置5min,供氣相色譜分析測定[3]。

    2.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配置

    分別準(zhǔn)確稱取3-MCPD和1,3-DCP標(biāo)準(zhǔn)品25mg(有效成分),分別置于2個(gè)25mL容量瓶中,用乙酸乙酯溶解并定容,得質(zhì)量濃度為1000mg/L的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。用正己烷稀釋10倍,配制100mg/L中間溶液,最后用正己烷配成質(zhì)量濃度為0.10、0.50、1.00、1.50、2.00、2.50mg/L的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液系列。取上述混合標(biāo)準(zhǔn)溶液系列各0.2mL,用正己烷定容至2.0mL,用氣密針迅速加入HFBI 50μL,立即密塞,振勻。接下來的步驟與樣品的衍生化方法相同,得到質(zhì)量濃度范圍在0.010~0.250mg/L的標(biāo)準(zhǔn)系列HFBI衍生物溶液。

    2.4 氣相色譜條件

    DB-5石英毛細(xì)管柱,30m×0.32mm×0.25μm;進(jìn)樣口溫度為240℃,檢測器溫度為280℃;色譜柱溫度初溫為60℃,保持1min,以4℃/min升至100℃,保持1min,再以30℃/min升至250℃,并保持5min;載氣為高純氮?dú)?,流速?.0mL/min;進(jìn)樣方式為不分流進(jìn)樣,進(jìn)樣量1.0μL;峰面積外標(biāo)法定量。

    3 結(jié)果與討論

    3.1 樣品提取凈化條件的選擇

    樣品純化時(shí),需要清除基質(zhì)中的色素、脂肪和蛋白質(zhì),而氯丙醇在極性溶劑和非極性溶劑中都有良好的溶解性,所以液液提取方法很難有效進(jìn)行,必須采用固相提取技術(shù)[7]。試驗(yàn)考察了氧化鋁、硅膠、ExtrelutTM20硅藻土3種吸附劑對樣品的吸附作用,結(jié)果表明,ExtrelutTM20硅藻土效果最佳,其穩(wěn)定性好、重現(xiàn)性好,具有很好的吸水性。裝柱時(shí)比較了2種方式:一是常規(guī)方式用ExtrelutTM20硅藻土裝柱;二是把該ExtrelutTM20硅藻土一半先裝柱,另一半與樣品混合均勻后再裝柱。試驗(yàn)結(jié)果表明,后者更加有利于提取操作。

    采用有機(jī)溶劑預(yù)洗脫去除樣品中的脂溶性雜質(zhì)和色素等,可減少衍生時(shí)的干擾及對色譜柱進(jìn)樣口的污染。試驗(yàn)表明,僅測定3-MCPD時(shí)可用正己烷-乙醚(體積比9∶1)洗脫去除脂溶性雜質(zhì),但是1,3-DCP有較大的損失(≥30%),采用正己烷預(yù)洗脫即可避免損失。

    洗脫氯丙醇常用乙醚或乙酸乙酯[7]。通過試驗(yàn)比較了這2種洗脫溶劑,回收率如表1所示。結(jié)果表明,采用乙酸乙酯洗脫,用量較大,且雜峰太多,而采用乙醚洗脫,效果較好。采用140mL乙醚洗脫,回收率可達(dá)98.2%以上。洗脫液含有水分會(huì)影響后續(xù)的衍生化,采用無水硫酸鈉干燥,效果較好,而采用硫酸鎂、硫酸鈣、氧化鈣等干燥會(huì)引起較大的損失。

    表1 2種洗脫溶劑的回收率(n=6)Table 1 Recoveries of 2elution solvents(n=6)

    3.2 衍生化方法的選擇

    3.2.1 衍生化試劑的選擇

    氯丙醇的極性較大、蒸氣壓低、沸點(diǎn)較高,衍生化后可以提高分析物的揮發(fā)性及檢測的靈敏度??晒┦褂玫难苌噭┯衅叻□T噭?(HFBI、HFBA)、硼酸類(丁基硼酸、苯基硼酸)、丙酮或庚酮、三氟乙酸酐(TFAA)、N,O-雙三甲基-三氟乙酰胺(BSTFA)等試劑。硼酸類、丙酮只能衍生3-MCPD等雙羥基醇類化合物;TFAA比HFBI的衍生反應(yīng)容易進(jìn)行,但產(chǎn)生的有機(jī)酸可能會(huì)分解氯丙醇衍生物,且靈敏度不如HFBI衍生物高;七氟丁酸酐(HFBA)雖然在室溫下就可以反應(yīng),但是副產(chǎn)物七氟丁酸可能會(huì)降解氯丙醇衍生物;BSTFA主要用于氫火焰離子化檢測器(FID)[8]。相比之下,采用HFBI衍生后氯丙醇的電負(fù)性明顯增強(qiáng),且HFBI衍生的化合物比較穩(wěn)定、檢測靈敏度較高。

    3.2.2 衍生化條件的選擇

    分別選擇60、70、80、90℃等不同的衍生化溫度,該衍生化反應(yīng)在70~80℃效果最佳,最終選擇75℃為衍生化溫度;在該溫度下分別衍生20、30、40、50min,結(jié)果表明,衍生時(shí)間大于30min后,峰面積增加不明顯,因此選擇反應(yīng)時(shí)間30min。在選定的衍生化時(shí)間及溫度下,分別加入40、50、60、70μL的衍生化試劑,試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)50μL的HFBI已完全滿足要求。由于HFBI遇水迅速反應(yīng),因此環(huán)境的濕度影響極大,使用過程中需注意防潮。在相對濕度超過70%時(shí),需用氣密針迅速加入衍生化試劑。衍生后加入飽和氯化鈉或蒸餾水除去過量衍生劑、副產(chǎn)物。

    3.3 色譜條件的選擇

    衍生化后的氯丙醇可用非極性柱或弱極性柱分析。比較了實(shí)驗(yàn)室的2種色譜柱DB-1色譜柱(30m×0.32mm×0.25μm)和DB-5色譜柱(30m×0.32mm×0.25μm),均能滿足分析要求;但是采用DB-5柱分析,峰形好,出峰快,因此選用DB-5色譜柱。為使雜質(zhì)峰和主峰獲得較好的分離效果和合適的保留時(shí)間,必須采用程序升溫方式。經(jīng)多次試驗(yàn),所選條件同2.4。在該色譜條件下,3-MCPD和1,3-DCP的保留時(shí)間分別為約7.23min和11.85min。衍生化后的3-MCPD和1,3-DCP標(biāo)準(zhǔn)溶液色譜圖見圖1,含氯丙醇的雞精樣品色譜圖見圖2。

    圖1 3-MCPD和1,3-DCP標(biāo)準(zhǔn)HFBI衍生物氣相色譜圖Fig.1 Gas chromatogram of HFBI derivatives of 3-MCPD and 1,3-DCP standards

    圖2 雞精樣品中3-MCPD和1,3-DCP的HFBI衍生物氣相色譜圖Fig.2 Gas chromatogram of HFBI derivatives of 3-MCPD and 1,3-DCP in chicken essence

    3.4 線性關(guān)系及檢測限

    分別取混合標(biāo)準(zhǔn)系列HFBI衍生物溶液1.0μL進(jìn)樣測定。分別以3-MCPD和1,3-DCP的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。3-MCPD的回歸方程為:Y=1 136 457X-412.62,相關(guān)系數(shù)為0.999 1;1,3-DCP的回歸方程為:Y=138 739X-337.15,相關(guān)系數(shù)為0.999 3。結(jié)果表明,2種氯丙醇在0.010~0.250mg/L范圍內(nèi),線性關(guān)系良好。經(jīng)多次試驗(yàn),該方法測定3-MCPD和1,3-DCP的定量限均為0.01mg/kg,能滿足檢測和定量分析的要求。以3倍基線噪音計(jì)算,方法的檢測限均為0.005mg/kg。

    3.5 加標(biāo)回收率試驗(yàn)和方法精密度

    取3-MCPD和1,3-DCP空白的雞精樣品作為基質(zhì),分別測定0.05、0.10和0.20mg/kg 3種添標(biāo)水平下3-MCPD和1,3-DCP的加標(biāo)回收率,并計(jì)算相對標(biāo)準(zhǔn)偏差。每個(gè)水平測定6次,回收率及精密度結(jié)果見表2。結(jié)果表明,3-MCPD的回收率在95.7%~102.2%范圍內(nèi);1,3-DCP的回收率在94.5%~99.3%范圍內(nèi),兩者相對標(biāo)準(zhǔn)偏差均小于5.0%。該方法具有較好的準(zhǔn)確度和精密度,符合氯丙醇污染測定的技術(shù)要求。

    表2 方法的回收率和精密度(n=6)Table 2 Recovery and precision of method(n=6)

    3.6 雞精樣品檢測

    采用建立的試驗(yàn)方法對市場上12種品牌(每種品牌10批),共120份雞精產(chǎn)品進(jìn)行測定,共有4個(gè)品牌的21份雞精樣品中檢出3-MCPD,檢出率為17.5%,其中4份質(zhì)量濃度超過20μg/kg;有3個(gè)品牌13份雞精樣品中檢出1,3-DCP,檢出率為10.8%,質(zhì)量濃度均未超過20μg/kg。

    4 結(jié) 語

    本試驗(yàn)所建立的方法能同時(shí)測定雞精中3-MCPD和1,3-DCP的質(zhì)量濃度,方法靈敏度較高,回收率較高,相對偏差較小,可以準(zhǔn)確地測定雞精中2種氯丙醇的質(zhì)量濃度;方法定量限0.01mg/kg,能滿足雞精中2種氯丙醇限量檢測的要求;試驗(yàn)所用儀器易于普及,便于推廣應(yīng)用,是一種較理想的分析方法。本方法也適用于其他調(diào)味品和存在氯丙醇污染的食品中3-MCPD和1,3-DCP的限量測定。

    [1]Baer I,De La Calle B,Taylor P.3-MCPD in food other than soy sauce or hydrolysed vegetable protein(HVP)[J].Analytical and Bioanalytical Chemistry,2010,396(1):443-456.

    [2]FAO,WHO.Summary of the fifty-seventh meeting of the joint FAO/WHO expert committee on food additives[Z].Rome:FAO/WHO,2001:20-21.

    [3]GB/T 5009.191—2006,食品中氯丙醇含量的測定[S].

    [4]趙文杰,盧奎,馮業(yè)振.氣相色譜-電子捕獲檢測法測定醬油中1,3-二氯-2-丙醇的含量[J].食品科技,2010,35(11):285-288.

    [5]周相娟,謝精精,趙玉琪,等.氣相色譜-質(zhì)譜法測定醬油中氯丙醇類化合物[J].中國調(diào)味品,2011,36(5):88-90,120.

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    [7]趙廣西,杜偉,劉浩,等.醬油中氯丙醇測定的注意事項(xiàng)[J].中國調(diào)味品,2011,36(9):23-25.

    [8]傅武勝,吳永寧.食品中氯丙醇測定方法研究進(jìn)展[J].食品科學(xué),2007,28(3):353-357.

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