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      消化道中燕麥β-葡聚糖對EGCG吸附作用的體外研究*

      2013-05-05 11:28:06馬雅欽高瑞萍崔峻趙國華
      食品與發(fā)酵工業(yè) 2013年3期
      關(guān)鍵詞:腸液超純水胃液

      馬雅欽,高瑞萍,2,崔峻,趙國華,3

      1(西南大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院,重慶,400715)2(遵義醫(yī)學(xué)院公共衛(wèi)生學(xué)院,貴州 遵義,563000)3(重慶市農(nóng)產(chǎn)品加工技術(shù)重點實驗室,重慶,400715)

      目前,膳食纖維與功能小分子相互作用研究成為熱點。多糖和多酚可以通過氫鍵、疏水相互作用等結(jié)合[1]。許多多糖能與蛋白質(zhì)競爭結(jié)合多酚[2],形成的多糖多酚復(fù)合物能為機(jī)體提供更持久的抗氧化能力[3]。燕麥β-葡聚糖是以細(xì)胞壁非淀粉多糖的形式存在的可溶性膳食纖維,在調(diào)節(jié)機(jī)體免疫功能[4]、抗腫瘤活性[5]、降低膽固醇和血脂以及調(diào)節(jié)血糖[5-6]等方面起重要作用[7],具有較強(qiáng)的吸附小分子的能力。表沒食子兒茶素沒食子酸酯(EGCG)是茶多酚中主要功能成分,具有增強(qiáng)機(jī)體抵抗力、抗氧化性、抗癌、降血糖血脂等生理功能[8-10]。前期研究表明,β-葡聚糖可主要通過氫鍵等作用力吸附茶多酚形成復(fù)合物[11],并且在合適濃度下二者的復(fù)合作用在產(chǎn)物的抗氧化影響上表現(xiàn)為增效作用[12]。影響胃腸液中β-葡聚糖吸附EGCG的因素尚不清楚。利用燕麥β-葡聚糖和EGCG為試驗材料,模擬胃腸液反應(yīng)環(huán)境,探討胃腸液中胃蛋白酶、胰蛋白酶、pH值和EGCG濃度對燕麥β-葡聚糖吸附EGCG的影響,以期探討體內(nèi)β-葡聚糖吸附EGCG的生物學(xué)作用。

      1 材料方法

      1.1 實驗材料與試劑

      燕麥β-葡聚糖,鄭州荔諾生物科技公司;EGCG:杭州禾田生物科技有限公司;胃蛋白酶(1∶10 000)、胰蛋白酶(1∶1 000),Sigma公司。色譜甲醇,天津四友化學(xué)試劑有限公司;其他試劑均為分析純,購于成都科龍試劑有限公司。

      1.2 儀器與設(shè)備

      WS-26恒溫水浴鍋,上海齊欣科學(xué)儀器有限公司;PB-10標(biāo)準(zhǔn)型電化學(xué)分析儀/pH計(酸度計),德國賽多利斯公司;ALPHA 1-4/2-4LSC真空冷凍干燥機(jī),德國christ公司;高效液相色譜儀,日本島津公司LC-20A;色譜柱,Thermo公司(Hypersil BDS)(4.6 mm ×250 mm)。

      1.3 實驗方法

      1.3.1 模擬胃腸液的制備

      參照Hussain等[13]的方法配制胃腸液。胃液:稱取3.2 g胃蛋白酶和7 mL 37%HCl加入1 L的容量瓶,用超純水定容;腸液:稱取6.8g KH2PO4溶于1 L超純水,加入3.2 g胰蛋白酶,NaOH調(diào)節(jié)至pH 6.8。不含胃蛋白酶的模擬胃液:7 mL 37%HCl加入1 L的容量瓶,用超純水定容;不含腸蛋白酶的模擬腸液:稱取6.8 gKH2PO4溶于超純水中,用1 L容量瓶加入超純水定容,NaOH調(diào)節(jié)至pH 6.8。

      1.3.2 EGCG測定及葡聚糖對EGCG吸附量計算

      游離的EGCG采用HPLC方法測定。色譜柱為Hypersil BDS(4.6 mm×250 mm)。流動相 A為100%甲醇,流動相B為2%乙酸溶液,采用等度洗脫10 min,流動相甲醇(A),2%的乙酸(B),體積比為25∶75,流速0.9 mL/min,檢測波長278 nm。葡聚糖對EGCG的吸附量用如下公式表示:Q=(c1V-c2V)/m。

      式中:Q表示葡聚糖對 EGCG的吸附量(μg/mg);c1表示吸附前EGCG的濃度(μg/mL);c2表示吸附后EGCG的濃度(μg/mL)(HPLC測定可得);m表示葡聚糖的量(mg);V表示溶液的體積。

      1.3.3 胃蛋白酶、胰蛋白酶對β-葡聚糖吸附EGCG的影響

      分別稱取12.5 mg EGCG和12.5 mg葡聚糖溶于含胃蛋白酶、胰蛋白酶和不含胃蛋白酶、胰蛋白酶的pH 1.5胃液和pH 6.8的腸液中,37℃保溫30~180 min,間隔時間30 min。經(jīng)0.45 μm濾膜后HPLC測定。β-葡聚糖對EGCG的吸附量參照1.3.2計算公式得出。

      1.3.4 模擬胃腸液的pH對葡聚糖吸附EGCG的影響

      用HCl和NaOH對模擬胃腸液的pH進(jìn)行調(diào)節(jié),使胃液 pH值為1.5~4.0,腸液 pH值5~8,稱取12.5 mg EGCG和葡聚糖分別溶于25 mL不同pH值的胃液和腸液配成0.5 mg/mL的溶液,搖勻,于37℃保溫180 min,經(jīng)0.45 μm濾膜過濾后測定游離的EGCG濃度。β-葡聚糖對EGCG的吸附量參照1.3.2計算公式得出。

      1.3.5 EGCG濃度對胃腸液中葡聚糖吸附EGCG的影響

      分別稱取 12.5、15、17.5、20、22.5、25 mg EGCG和12.5 mg葡聚糖溶于25 mL pH 1.5的胃液和25 mL pH 6.8的腸液配制成EGCG濃度為0.5~1.0 mg/mL,葡聚糖濃度為0.5 mg/mL的胃液和腸液,于37℃保溫180 min。經(jīng)0.45 μm濾膜后HPLC測定游離EGCG濃度。β-葡聚糖對EGCG的吸附量參照1.3.2計算公式得出。

      1.3.6 數(shù)據(jù)處理方法

      以上試驗均重復(fù)3次,結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤來表示。并利用SPSS分析數(shù)據(jù)軟件進(jìn)行顯著性分析,最后運用origin作圖軟件進(jìn)行作圖。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 胃蛋白酶、胰蛋白酶對β-葡聚糖吸附EGCG的影響

      由圖1可看出,總體而言含胃蛋白酶的胃液中β-葡聚糖對EGCG吸附比不含胃蛋白酶的胃液吸附量大,且隨著時間的延長,吸附量均逐漸增大,當(dāng)時間為120 min時,含胃蛋白酶和不含胃蛋白酶的模擬胃液中的吸附量基本相等。由于多糖與蛋白質(zhì)在吸附小分子物質(zhì)方面存在競爭性。所以胃蛋白酶的加入可能與β-葡聚糖競爭性吸附EGCG,胃蛋白酶吸收一部分EGCG,而使得游離EGCG減少,故而顯示出β-葡聚糖對EGCG的吸附量增大。

      圖1 模擬胃液中胃蛋白酶對β-葡聚糖吸附EGCG的影響Fig.1 The influence of pepsin on the adsorption of EGCG onto β-glucan in simulated gastric juice

      由圖2可看出,含胰蛋白酶的腸液中β-葡聚糖對EGCG吸附比不含胰蛋白酶的腸液吸附明顯增大,且隨著孵育時間延長吸附量也逐漸增大??赡艿脑蚴且鹊鞍酌缸鳛橐环N蛋白質(zhì),它的加入可能與β-葡聚糖競爭性吸附EGCG,使得游離EGCG含量減少,吸附量增大。也有可能是胰蛋白酶的加入使得β-葡聚糖活性位點發(fā)生改變,促進(jìn)了 β-葡聚糖對EGCG的吸附。

      圖2 模擬腸液中胰蛋白酶對葡聚糖吸附EGCG的影響Fig.2 The influence of trypsin on the adsorption of EGCG onto β-glucan in simulated intestinal juice

      由圖1和圖2可以看出,在含有蛋白酶的胃腸液中β-葡聚糖對于EGCG吸附量高于不含蛋白酶的EGCG吸附量。在進(jìn)食的情況下,機(jī)體分泌胃蛋白酶和腸蛋白酶的量都會增加。所以從蛋白酶對葡聚糖吸附EGCG的影響看,進(jìn)食會有利于EGCG的吸附。

      2.2 模擬胃腸液的pH值對葡聚糖吸附EGCG的影響

      如圖3所示,在模擬胃液中,隨著胃液的pH值逐漸增大,β-葡聚糖對EGCG的吸附量增大。pH值低于3.0時,吸附量處于較低的水平;當(dāng)pH值高于3.0時,EGCG吸附量增加顯著,且在pH值為3.5和4.0時無顯著性差異。低pH值時的吸附量較少的原因可能是燕麥β-葡聚糖在酸性環(huán)境下容易發(fā)生水解以及低pH值導(dǎo)致β-葡聚糖構(gòu)象發(fā)生變化。一般禁食狀態(tài)下胃液的pH值為1.5左右,由于進(jìn)食會導(dǎo)致胃液pH值增大[14],所以可以推斷進(jìn)食狀態(tài)β-葡聚糖對EGCG的吸附量較大。

      圖3 模擬胃液pH對葡聚糖吸附EGCG的影響Fig.3 The effects of the pH of simulated gastric juice on the adsorption of EGCG onto β-glucan

      如圖4所示,在體外模擬腸液中,隨著腸液pH值增大(5.0~7.5),β-葡聚糖對EGCG的吸附逐漸增大,當(dāng)pH 6.5時吸附量最大,隨后降低。分析原因可能是EGCG在偏堿性條件下不穩(wěn)定,部分EGCG發(fā)生氧化而導(dǎo)致響應(yīng)因子減少,導(dǎo)致吸附量降低[15]。

      圖4 模擬腸液pH對葡聚糖吸附EGCG的影響Fig.4 The effects of the pH of simulated intestinal juice on the adsorption of EGCG onto β-glucan

      由圖3和圖4可以看出,pH值對胃腸液中β-葡聚糖吸附EGCG有顯著影響,這主要是因為pH值的改變會影響β-葡聚糖和EGCG單體的穩(wěn)定性,導(dǎo)致響應(yīng)物質(zhì)含量改變,使得β-葡聚糖-EGCG復(fù)合物的生成量產(chǎn)生變化。這為將來研究β-葡聚糖-EGCG復(fù)合物包埋后在胃腸道中的釋放提供參考。

      2.3 模擬胃腸液的EGCG濃度對β-葡聚糖吸附EGCG的影響

      如圖5所示,β-葡聚糖對EGCG的吸附量隨著EGCG的濃度增大而逐漸增大。濃度在低于0.6 mg/mL時,吸附量處于低水平;在高于0.6 mg/mL時,β-葡聚糖對EGCG的吸附量與EGCG濃度呈線性相關(guān)。圖5中可看出,EGCG濃度對吸附具有較大的影響,故可以通過提高EGCG的濃度來提高β-葡聚糖對EGCG吸附量。

      圖5 模擬胃液中EGCG濃度對β-葡聚糖吸附EGCG的影響Fig.5 The effect of the EGCG concentration on the adsorption of EGCG onto β-glucan in simulated gastric juice

      如圖6所示,隨著EGCG濃度增大,β-葡聚糖對EGCG的吸附量逐漸增大,濃度在0.7~0.8 mg/mL之間增幅較平緩,但存在顯著性差異??梢酝ㄟ^提高EGCG的濃度來提高體外模擬腸液中 β-葡聚糖對EGCG吸附量,為體內(nèi)研究提供參考。

      圖6 模擬腸液的EGCG濃度對β-葡聚糖吸附EGCG的影響Fig.6 The effect of the EGCG concentration on the adsorption of EGCG onto β-glucan in simulated intestinal juice

      由圖5和圖6可以看出,EGCG濃度的升高與胃液和腸液中的β-葡聚糖對EGCG的吸附量增大呈正相關(guān)。原因是可能是β-葡聚糖和EGCG主要通過氫鍵相結(jié)合[11],EGCG濃度的增加,增加了EGCG響應(yīng)因子的數(shù)量,與β-葡聚糖結(jié)合機(jī)率提高,使得吸附量增大。

      3 結(jié)論

      對體外模擬胃腸液中燕麥β-葡聚糖吸附EGCG的影響因素進(jìn)行研究,結(jié)果表明模擬胃腸液中胃蛋白酶、胰蛋白酶、pH值、EGCG濃度等因素的改變會影響燕麥β-葡聚糖對于EGCG的吸附量。加入胃蛋白酶和胰蛋白酶,由于蛋白酶和燕麥β-葡聚糖存在競爭性結(jié)合關(guān)系,故使EGCG吸附量增大。pH值的改變,影響燕麥β-葡聚糖和EGCG的結(jié)構(gòu)與構(gòu)象穩(wěn)定,對燕麥β-葡聚糖吸附能力產(chǎn)生較大影響:模擬胃液中隨pH值升高,β-葡聚糖吸附能力逐漸增強(qiáng);腸液中隨pH升高,吸附能力首先升高然后下降,pH值在6.5時,其吸附能力最大。EGCG濃度的升高,會使得EGCG作為響應(yīng)因子增多,也使β-葡聚糖對EGCG的吸附能力增強(qiáng)。

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