周生民,趙 偉
(山東福洋生物科技有限公司,山東 德州 253100)
葡萄糖酸鈉是一種多羥基羧酸鈉,白色結(jié)晶顆?;蚍勰瑯O易溶于水,微溶于酒精,不溶于乙醚,又被稱為五羥基已酸鈉,分子式為C6H11O7Na,分子質(zhì)量為218.14,含量大都在98%以上。目前,葡萄糖酸鈉生產(chǎn)普遍采用黑曲霉發(fā)酵法生產(chǎn)。據(jù)統(tǒng)計(jì)黑曲霉發(fā)酵中產(chǎn)生的酶有過氧化氫酶、纖維素酶、半乳糖酶、葡萄糖氧化酶等20多種酶[1-2]。其中,葡萄糖氧化酶在葡萄糖氧化反應(yīng)中起主導(dǎo)作用。因此,對(duì)葡萄糖氧化酶的研究直接影響葡萄糖酸鈉的生產(chǎn)。
葡萄糖氧化酶系統(tǒng)稱為β-D-葡萄糖氧化還原酶(glucose oxidase,GOD),是一種淡黃色透明液體酶制劑,能催化葡萄糖氧化成葡糖酸并產(chǎn)生過氧化氫的酶。該酶含有兩分子黃素腺嘌呤二核苷酸(flavin adenine dinucleotide,F(xiàn)AD)的黃素蛋白,圖1為葡萄糖氧化酶氧化葡萄糖為葡萄糖酸的反應(yīng)機(jī)理[3-4]。
葡萄糖氧化酶的pH穩(wěn)定范圍較寬,在pH4~8范圍內(nèi)較穩(wěn)定。酶蛋白在pH5.0~5.5范圍酶活基本不變,在pH6~8范圍內(nèi)也較穩(wěn)定,酶活力均保持在72%以上。葡萄糖氧化酶蛋白在20℃~50℃范圍內(nèi)熱穩(wěn)定性很好,30℃時(shí)酶活力比原酶活力可上升16%,60℃時(shí)酶活力下降至51%,70℃時(shí)下降更為顯著[5]。葡萄糖是該酶的穩(wěn)定劑,一般來說,酶反應(yīng)受底物濃度的影響不大,葡萄糖濃度為5%~20%,反應(yīng)速度幾乎不變[6]。
葡萄糖酸鈉具有非常廣泛的用途,在建筑業(yè)中被廣泛用作水泥緩凝劑,可以防止混凝土在運(yùn)輸?shù)倪^程中凝固和結(jié)塊現(xiàn)象,另外還可被用作鋼鐵表面清洗劑、阻垢緩蝕劑。食品級(jí)和醫(yī)藥級(jí)產(chǎn)品,可以調(diào)節(jié)人體的酸堿平衡,有效防止低鈉綜合癥的發(fā)生,用作食品添加劑和醫(yī)藥中間體等。
圖1 葡萄糖氧化酶氧化機(jī)理Fig.1 Oxidation mechanism of glucose oxidase
黑曲霉(Aspergillus niger):福洋生物科技有限公司保藏菌種。
小型在線檢測發(fā)酵罐:國強(qiáng)生化有限公司;722紫外分光光度計(jì):上海元析儀器有限公司;電爐:武漢嘉華爐業(yè)有限公司;MAX300LG質(zhì)譜儀:杭州瑞析科技有限公司;XSPBM-2CBAC顯微鏡:西派克光學(xué)儀器有限公司;HA-HH-4恒溫水浴鍋:環(huán)宇科學(xué)儀器廠。
葡萄糖氧化酶酶活定義:在pH5.6,溫度為30℃條件下,每分鐘催化1μmol葡萄糖轉(zhuǎn)化為葡萄糖酸和過氧化氫所需的葡萄糖氧化酶的量為一個(gè)酶活力單位(U)。
根據(jù)酶的pH穩(wěn)定性和底物濃度穩(wěn)定性,選擇發(fā)酵液pH5.2左右和糖濃度19%時(shí)取發(fā)酵液過濾處理,在酶活相對(duì)穩(wěn)定的環(huán)境下測定此時(shí)酶活并記錄。取4支離心管分別標(biāo)號(hào)Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ,將過濾后的發(fā)酵液分別裝入4支離心管,將Ⅰ號(hào)離心管存放在4℃冰箱內(nèi),將Ⅱ號(hào)離心管常溫25℃保存,Ⅲ號(hào)離心管放入37℃恒溫箱保存,Ⅳ號(hào)離心管放入70℃恒溫箱保存,每1h檢測1次酶活并記錄。
酶活檢測:分別添加2.4mL用無水乙酸鈉稀釋的鄰聯(lián)茴香胺、0.5mL 10%葡萄糖溶液、0.1mL辣根過氧化氫酶溶液于35℃水浴鍋提前預(yù)熱5min。檢測時(shí)向混合溶液中添加0.1mL過濾后的發(fā)酵液,于波長500nm處每30s記錄吸光度值(A500nm),每30s記錄一次,以A500nm對(duì)時(shí)間作圖,找出最大斜率△A/min。酶活計(jì)算公式如下:
注:7.5為氧化型鄰聯(lián)茴香胺的消光系數(shù)。
測定過程中維持發(fā)酵液葡萄糖氧化酶活性測定結(jié)果在1000U/mL左右為宜,活性過高則應(yīng)稀釋,不得超過5000U/mL。
根據(jù)葡萄糖氧化酶pH穩(wěn)定性和底物濃度穩(wěn)定性,對(duì)所取樣品進(jìn)行檢測,測得的pH值為5.3,葡萄糖濃度為18%,都處于葡萄糖氧化酶活力穩(wěn)定范圍[7]。每1h對(duì)所取的3個(gè)處于不同溫度的樣品進(jìn)行酶活性檢測。
圖2 不同溫度下酶活隨時(shí)間的變化趨勢Fig.2 Change of enzyme activity at different temperatures
從圖2可以看出,保存于4℃的樣品不同時(shí)間所測得的酶活性基本接近于初始值,保存于25℃、37℃和70℃的樣品都偏離初始值,25℃時(shí)所測得的酶活性呈上升趨勢,比初始值有所上升,而37℃和70℃時(shí)所測得的酶活性有下降趨勢,并且溫度處在70℃時(shí)酶活性下降最明顯。
從圖2還可以看出,葡萄糖氧化酶活性范圍比較寬,從4℃~70℃葡萄糖氧化酶都存在活性,4℃和25℃葡萄糖氧化酶的穩(wěn)定性都比較好,而25℃更接近于真實(shí)值,37℃和70℃葡萄糖氧化酶波動(dòng)較大不能真實(shí)反映酶的活性,從酶的動(dòng)力學(xué)方面看,可能是溫度對(duì)酶的活性基團(tuán)有一定的影響,才改變了不同溫度下酶的活性[7-9]。
在產(chǎn)葡萄糖酸鈉的黑曲霉發(fā)酵過程中,氧化葡萄糖形成葡萄糖酸鈉的酶是葡萄糖氧化酶,其活性決定了耗糖速率大小和產(chǎn)酸的快慢,所以研究酶活性的變化趨勢相當(dāng)重要[10-11]。發(fā)酵液中酶活性在取樣之后立刻檢測才能較真實(shí)反映酶的活性,從圖2中可以看出,酶在4℃時(shí)酶活性基本保持與初始值相似基本反映發(fā)酵過程中酶活力的大小。而25℃、37℃和70℃時(shí)酶活性都偏離了初始值,也就都偏離了發(fā)酵罐中酶的真實(shí)活性[12-13]。
葡萄糖酸鈉發(fā)酵是一個(gè)復(fù)雜的生物發(fā)酵過程,其中存在各種酶參與的各種復(fù)雜的生物化學(xué)反應(yīng),只有了解了酶活的變化趨勢才能更好的控制生產(chǎn)工藝,才能使發(fā)酵過程中的酶達(dá)到最高效的催化氧化的效果,產(chǎn)品的質(zhì)量和產(chǎn)量才能進(jìn)一步得到提高[14-15]。
[1]王樹慶,劉秀華.葡萄糖氧化酶及其在食品工業(yè)上的應(yīng)用[J].食品科技,2001(3):30-31.
[2]郭魯宏,楊順楷.黑曲霉產(chǎn)生的酶類及其應(yīng)用[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),1997,10(4):87-93.
[3]李 艷,肖凱軍,王兆梅,等.葡萄糖酸鈉檢測方法研究[J].食品研究與開發(fā),2006,27(9):109-111.
[4]郭茸愷,王澤建,莊英萍,等.葡萄糖酸鈉發(fā)酵中底物-產(chǎn)物作用對(duì)氧傳遞的影響及發(fā)酵過程優(yōu)化[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(22):11151-11153.
[5]王志新,于宏偉,韓 軍,等.黑曲霉A9 葡萄糖氧化酶的酶學(xué)性質(zhì)研究[J].河北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2006,29(4):69-83.
[6]劉 超,袁建國,王元秀,等.葡萄糖氧化酶的研究進(jìn)展[J].食品與藥品,2010,12(7):285-288.
[7]李 艷,李 靜.葡萄糖氧化酶及其應(yīng)用[J].食品工程,2006,3(2):9-11.
[8]黃道震,余麗秀,王桂香,等.葡萄糖酸鈉的生產(chǎn)工藝及研究動(dòng)態(tài)[J].河南化工,1999(5):35-36.
[9]王 煒,杜連祥.納他霉素發(fā)酵工藝探討[J].食品工業(yè)科技,2006,27(4):113-115.
[10]周利南,國建娜,蔣予箭,等.黑曲霉AS3.4309 產(chǎn)糖化酶條件的研究[J].中國釀造,2009,28(7):53-57.
[11]楊慧英,李弘毅,劉建忠,等.黑曲霉中提取葡萄糖氧化酶的探索I.葡萄糖氧化酶合成及其性質(zhì)[J].中山大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,1998,37(5):49-52.
[12]蔣嘯靖,夏建業(yè),趙 劼,等.生物攪拌反應(yīng)器內(nèi)混合情況的CFD 模擬及在發(fā)酵中的應(yīng)用[J].化學(xué)與生物工程,2008,25(7):54-57.
[13]姜菲菲,李丕武,馬春玲,等.產(chǎn)葡萄糖酸鈉黑曲霉培養(yǎng)條件優(yōu)化研究[J].中國釀造,2009,28(10):61-63.
[14]楊 超,李春震,譚天偉.響應(yīng)面法優(yōu)化黑曲霉產(chǎn)葡萄糖氧化酶條件[J].北京化工大學(xué)學(xué)報(bào),2011,38(1):97-100.
[15]FIEDUREK J,ILCZUK Z.Isolation and screening of glucose oxides producing microorganisms from natural source s[J].Acta Microbiol Pol,1992,41(3-4):179-186.