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      對(duì)氯甲基苯甲酸鏈接的萊克多巴胺人工抗原的合成與鑒定

      2013-03-07 08:28:12羅順菁劉成梅鄒常春汪志宇王文飛
      食品科學(xué) 2013年1期
      關(guān)鍵詞:半抗原偶聯(lián)抗原

      陳 臣,羅順菁,*,劉成梅,鄒常春,汪志宇,王文飛

      (1.南昌大學(xué) 食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江西 南昌 330047;2.南昌大學(xué)資產(chǎn)管理處,江西 南昌 330031)

      對(duì)氯甲基苯甲酸鏈接的萊克多巴胺人工抗原的合成與鑒定

      陳 臣1,羅順菁1,*,劉成梅1,鄒常春2,汪志宇1,王文飛1

      (1.南昌大學(xué) 食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江西 南昌 330047;2.南昌大學(xué)資產(chǎn)管理處,江西 南昌 330031)

      采用對(duì)氯甲基苯甲酸(CBA)為鏈接臂,用混合酸酐法將萊克多巴胺(RAC)與牛血清白蛋白(BSA)偶聯(lián)制備人工抗原(RAC-CBA-BSA),通過(guò)紫外、紅外、電泳鑒定抗原合成成功;再以卵清蛋白(OVA)為載體蛋白合成包被抗原(RAC-CBA-OVA),測(cè)定其與抗體的親和力和抑制率。間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA結(jié)果以對(duì)CBA為鏈接臂合成的包被抗原對(duì)應(yīng)的抗體滴度為7047.3、IC50為17.05ng/mL,結(jié)果表明,CBA可以用于RAC人工抗原的合成,使用RAC-CBA-OVA作為包被抗原可以提高ELISA檢測(cè)靈敏度。

      萊克多巴胺;對(duì)氯甲基苯甲酸;ELISA靈敏度;人工抗原

      萊克多巴胺(RAC)具有營(yíng)養(yǎng)重分配,降低胴體脂肪,提高瘦肉率,同時(shí)使動(dòng)物增重的作用[1-2]。但是人類(lèi)過(guò)量食用(超過(guò)1.25μg/(kggd))含有該殘留的畜產(chǎn)品會(huì)引發(fā)食物中毒,表現(xiàn)為惡心、嘔吐、心悸、頭疼、目眩等[3-4],對(duì)患有高血壓、青光眼、糖尿病等疾病的患者則可能危及生命。RAC在中國(guó)被禁止使用于飼料添加,是中國(guó)食品安全委員當(dāng)前發(fā)布的第一批82種禁止在飼料、動(dòng)物飲用水和畜禽水產(chǎn)養(yǎng)殖過(guò)程中使用的藥物和物質(zhì)之一。在體育比賽中,RAC可以增強(qiáng)運(yùn)動(dòng)員、動(dòng)物(如馬)肌肉,提高運(yùn)動(dòng)成績(jī),國(guó)際奧委會(huì)已將其列為禁用藥物。

      目前對(duì)于RAC的檢測(cè)方法主要有氣質(zhì)聯(lián)用(GC-MS)[5-6]、高效液相色譜(HPLC)[7]以及液質(zhì)聯(lián)用(LC-MS)[8-9]等方法,這些方法準(zhǔn)確、科學(xué),但對(duì)操作者的專(zhuān)業(yè)要求較,儀器昂貴,且維護(hù)費(fèi)用較高,不利于推廣應(yīng)用。酶聯(lián)免疫吸附檢測(cè)法(ELISA)是一種基于抗原抗體反應(yīng)和酶化學(xué)反應(yīng)的快速檢測(cè)方法,靈敏度高、特異性強(qiáng)、樣品前處理簡(jiǎn)單,不需要昂貴的儀器設(shè)備,對(duì)操作人員的專(zhuān)業(yè)要求相對(duì)較低,非常適于現(xiàn)場(chǎng)監(jiān)控和大批量篩選。

      RAC人工抗原是研制酶聯(lián)免疫吸附檢測(cè)試劑的首要基礎(chǔ),對(duì)于提高RAC檢測(cè)的靈敏度及準(zhǔn)確性,有重要的影響。異源性ELISA檢測(cè)中,由于抗體對(duì)包被抗原的識(shí)別減弱,使得待測(cè)物能與抗體結(jié)合機(jī)會(huì)增加,與包被抗原充分競(jìng)爭(zhēng),從而能檢測(cè)較低濃度的待測(cè)物,提高檢測(cè)靈敏度。且免疫半抗原與包被半抗原的差異性越大,檢測(cè)靈敏度越高[10]。半抗原的結(jié)構(gòu)對(duì)ELISA檢測(cè)靈敏度的影響,從高到低依次為連接位點(diǎn)、鏈接臂結(jié)構(gòu)、鏈接臂長(zhǎng)度。目前針對(duì)連接位點(diǎn)、鏈接臂結(jié)構(gòu)、鏈接臂長(zhǎng)度對(duì)RAC ELISA檢測(cè)靈敏度的影響的研究未見(jiàn)報(bào)道。

      本實(shí)驗(yàn)是針對(duì)鏈接臂結(jié)構(gòu)對(duì)ELISA檢測(cè)靈敏度影響進(jìn)行研究。鏈接臂的選擇首先必須考慮其結(jié)構(gòu)有利于進(jìn)行蛋白質(zhì)與RAC的偶聯(lián)反應(yīng);其次根據(jù)Wright等[11]提出的理論,鏈接臂越長(zhǎng),產(chǎn)生高特異性抗體的可能性越低,因此鏈接臂的長(zhǎng)度必須合適;最后要求合成抗原純化方便。對(duì)氯甲基苯甲酸(CBA)易溶于無(wú)機(jī)相,在半抗原合成中,未參加反應(yīng)的CBA遇水便可析出,方便除去,而未反應(yīng)的RAC也可以在隨后的透析中被除去,抗原純化方便。本實(shí)驗(yàn)使用對(duì)CBA作為鏈接臂,通過(guò)混合酸酐法制備人工抗原,探索對(duì)CBA作為鏈接臂制備RAC人工抗原的方法及條件,并對(duì)其進(jìn)行初步鑒定。再與以戊二酸酐為鏈接臂制備的包被抗原(RAC-SA-OVA)比較不同半抗原對(duì)ELISA檢測(cè)靈敏度的影響。

      1 材料與方法

      1.1 材料、試劑與儀器

      RAC(生物純) 武漢華美公司;CBA(分析純) 強(qiáng)中化工有限公司;牛血清白蛋白(BSA)、卵清蛋白(OVA)美國(guó)Sigma公司;N,N-二甲基酰胺(DMF)、1,4-二氧六環(huán)、三正丁胺、氯甲酸異丁酯、無(wú)水乙醇等試劑均為分析純。

      320-S pH計(jì) 梅特勒-托利多儀器有限公司;各種規(guī)格的移液槍 芬蘭雷勃公司;磁力攪拌器 德國(guó)IKA公司;WH-3漩渦混勻議 上海滬西分析儀器廠有限公司;SHZ-82氣浴恒溫振蕩器 榮華儀器設(shè)備有限公司;DU640紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 美國(guó)Beckmen公司;蛋白質(zhì)電泳儀 美國(guó)Bio-Rad公司;MK3酶標(biāo)儀、NICOLIT5700紅外光譜儀 美國(guó)熱電公司;可拆酶標(biāo)板美國(guó)康寧公司;冷凍干燥機(jī) 美國(guó)Labconco公司。

      1.2 方法

      1.2.1 RAC人工抗原的合成

      稱(chēng)取34mg RAC溶于4mL DMF-1,4-二氧六環(huán)(體積比1:1)溶液中,加入20.5mg CBA,磁力攪拌室溫下反應(yīng)過(guò)夜,加入10μL三正丁胺,冰浴反應(yīng)10min,取出反應(yīng)物至室溫,加入7μL氯甲酸異丁酯,室溫下反應(yīng)2h;稱(chēng)取130mg BSA、45mg OVA分別溶解于10mL DMF-PBS-蒸餾水(體積比1:1:2)中;分別取5mL BSA、OVA溶液,0℃冰浴備用,各取600μL RAC-CBA溶液以每1滴/50s的速率分別滴加至BSA、OVA溶液中,期間用0.1mol/L NaOH溶液調(diào)整pH8.0左右,冰浴反應(yīng)4h,反應(yīng)液1000r/min離心10min,取上清4℃透析3d。冷凍干燥至粉末備用。

      1.2.2 全抗原的鑒定

      1.2.2.1 全抗原紅外光譜掃描

      分別稱(chēng)取干燥的RAC-BSA全抗原2mg和KBr 200mg放入瑪瑙缽中,在紅外燈的照射下將混合物研磨均勻后,裝入壓片模具中,在8t壓力下壓制10min,壓制成厚度為1mm的透明KBr壓片,同樣方法制備BSA和RAC的KBr壓片后,用紅外光譜儀進(jìn)行掃描,得到紅外光譜圖。

      1.2.2.2 全抗原紫外光譜掃描及偶聯(lián)比的計(jì)算

      將RAC、BSA、OVA和兩種全抗原RAC-BSA、RAC-OVA用PBS稀釋成一定濃度的溶液,然后用DU460紫外掃描儀在波長(zhǎng)200~400nm處進(jìn)行紫外掃描,得到紫外吸光圖譜。根據(jù)公式(1)進(jìn)一步計(jì)算出兩種全抗原的濃度比,即偶聯(lián)比(c1/c2)[12]。

      式中:OD274nm為全抗原在RAC最大吸收波長(zhǎng)處的光密度;OD’278nm為BSA在其最大吸收波長(zhǎng)處的光密度;ODB274nm為BSA在RAC最大吸收波長(zhǎng)處的光密度;OD278nm為全抗原在BSA最大吸收波長(zhǎng)處的光密度;OD’274nm為RAC在其最大吸收波長(zhǎng)處的光密度;ODB278nm為RAC在BSA最大吸收波長(zhǎng)處的吸光度;c’1為RAC標(biāo)準(zhǔn)物的濃度;c’2為BSA標(biāo)準(zhǔn)物的濃度。

      1.2.2.3 全抗原SDS-PAGE電泳

      用蒸餾水分別稀釋RAC、BSA、OVA和兩種全抗原RAC-BSA、RAC-OVA,煮沸5min再冰浴5min,1000r/min離心5min,取上清。5%濃縮膠、16%分離膠,電極緩沖液為250mmol/L,Tris-HCl(pH8.3),甘氨酸0.1% SDS。起始恒定電流2.1mA/cm濃縮樣品,溴酚藍(lán)進(jìn)入分離膠后,將電流調(diào)制3.0mA/cm,電壓為60V,直至溴酚藍(lán)條帶距封底膠約0.5cm時(shí)停止電泳,用0.025g/mL的考馬斯亮藍(lán)(R-250)染色,用25%的甲醇和10%的冰乙酸制成脫色液脫色至背景清晰。用凝膠成像儀得到電泳圖[13]。

      1.2.3 動(dòng)物免疫

      采用以戊二酸酐為鏈接臂制備的RAC-SA-BSA免疫原免疫小鼠制備抗血清。具體方法為:初免將人工抗原與弗氏完全佐劑1:1混合,采用皮下多點(diǎn)注射,免疫5周齡的雌性Balb/c小鼠;二免、三免、四免使用弗氏不完全佐劑替換弗氏完全佐劑與抗原1:1混合,同樣方法免疫Balb/c小鼠。四免后斷尾取血并用ELISA法檢測(cè)。

      1.2.4 不同包被抗原對(duì)抗體親和力的影響

      用間接ELISA法對(duì)比兩種包被抗原與抗體的親和力。具體如下: RAC-SA-OVA、RAC-CBA-OVA稀釋至5μg/mL包被酶標(biāo)板,每孔100μL,4℃靜置過(guò)夜后用1% PBST洗滌;加入380μL 3%脫脂牛奶封閉酶標(biāo)板,37℃溫育1h后洗滌;加入100μL梯度稀釋的抗體,抗體稀釋度為1:800~1:51200倍比稀釋?zhuān)?7℃溫育1h后洗滌;加入100μL酶標(biāo)羊抗小鼠IgG,37℃溫育1h后洗滌;加入100μL TMB顯色液,37℃溫育15min;加入50μL 2mol/L的H2SO4溶液終止顯色,用酶標(biāo)儀檢測(cè)其在波長(zhǎng)450nm處OD值為陽(yáng)性值。抗體滴度OD值為1.0時(shí)的抗體稀釋度。

      1.2.5 不同包被抗原對(duì)ELISA檢測(cè)靈敏度的影響

      用間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法檢測(cè)不同包被抗原對(duì)ELISA檢測(cè)靈敏度的影響。將1.2.4節(jié)中加梯度稀釋抗體一步改為加入50μL質(zhì)量濃度為0、4、10、20、40、100、140、200ng/mL RAC標(biāo)準(zhǔn)品及50μL最佳工作質(zhì)量濃度的RAC單抗,其余步驟相同,計(jì)算抑制率(IR)。半數(shù)抑制率IC50為抑制率達(dá)到50%時(shí)的競(jìng)爭(zhēng)品質(zhì)量濃度。

      式中:OD為加入競(jìng)爭(zhēng)品孔的OD值;OD0為競(jìng)爭(zhēng)品質(zhì)量濃度為0孔的OD值。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 全抗原紅外光譜掃描結(jié)果

      圖 1 RAC、BSA和RAC-BSA紅外掃描光譜圖Fig.1 IR spectra of RAC, BSA and RAC-BSA

      如圖1所示,對(duì)比BSA和RAC-BSA人工抗原的紅外光譜圖在3500~2600cm-1和1900~1500cm-1區(qū)域出現(xiàn)了類(lèi)似的吸收峰,且明顯呈現(xiàn)蛋白質(zhì)吸收特點(diǎn):3297cm-1處的胺基NüH吸收峰、1666cm-1和1549cm-1的兩個(gè)酰胺譜帶[14]等,判斷應(yīng)該是BSA中氨基酸產(chǎn)生的特征峰;同時(shí),對(duì)照RAC和RAC-BSA人工抗原的紅外光譜圖發(fā)現(xiàn)它們?cè)?30cm-1附近有類(lèi)似的吸收出現(xiàn),且BSA的紅外光譜圖不具備這個(gè)特點(diǎn);另外在RAC-BSA全抗原的紅外光譜圖中還能找到1000~1280cm-1處出現(xiàn)的由于RAC與BSA偶聯(lián)而產(chǎn)生的CüN伸縮振動(dòng)吸收峰。綜上所述,可以得出結(jié)論在RAC-BSA的KBr壓片中含有RAC和BSA,且RAC-BSA人工抗原偶聯(lián)成功。

      2.2 全抗原紫外光譜掃描結(jié)果

      如圖2所示,RAC和BSA的最大吸收峰分別在波長(zhǎng)為274nm和278nm處;而RAC-BSA全抗原的最大吸收峰在波長(zhǎng)為276nm處,與BSA比較,波峰左移,證明人工抗原偶聯(lián)成功。同樣,RAC和OVA人工抗原的紫外光譜圖中看到相同情況,RAC-OVA全抗原的最大吸收與OVA比較同樣向左偏移,證明RAC-OVA人工抗原也偶聯(lián)成功。

      圖 2 RAC、BSA和RAC-BSA紫外掃描光譜圖Fig.2 UV spectra of RAC, BSA and RAC-BSA

      2.3 偶聯(lián)比的計(jì)算結(jié)果

      RAC-BSA全抗原偶聯(lián)比為17.6:1;RAC-OVA全抗原的偶聯(lián)比為4.4:1。

      2.4 全抗原SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳結(jié)果

      圖 3 人工抗原SDS-PAGE圖Fig.3 Identif i cation of artif i cial antigens by SDS-PAGE

      如圖3所示,RAC-BSA全抗原的泳動(dòng)速度小于BSA,可見(jiàn)RAC-BSA全抗原的分子質(zhì)量大于BSA,由此可以證明RAC與BSA已經(jīng)偶聯(lián)成功,同時(shí),RAC-BSA全抗原的條帶在其相應(yīng)位置出現(xiàn)了一定程度的彌散現(xiàn)象,這是因?yàn)槊恳粋€(gè)BSA分子和RAC小分子偶聯(lián)的數(shù)目并不完全相同。使用紫外凝膠成像系統(tǒng)分析軟件分析后,得出BSA的分子質(zhì)量約66.2kD, RAC-BSA全抗原的分子質(zhì)量大約為73.5kD,全抗原中RAC與BSA的偶聯(lián)比約為18.9:1,與紫外掃描結(jié)果基本一致。OVA的結(jié)果為4.5:1,與紫外掃描結(jié)果基本相符。

      2.5 抗體效價(jià)檢測(cè)結(jié)果

      在包被抗原濃度等其他ELISA條件相同時(shí),改變包被抗原種類(lèi),則其在波長(zhǎng)450nm處的OD值反映了不同包被抗原對(duì)抗體的親和力,OD值越高,親和力越高。圖4為兩種包被抗原間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法中對(duì)應(yīng)的抗體稀釋曲線。相同抗體稀釋度下,RAC-SA-OVA的OD值略高于RAC-CBA-OVA,由圖計(jì)算二者的抗體滴度分別為17325.6和7047.3。由于與免疫半抗原具有不同的鏈接臂,降低了人工抗體對(duì)鏈接臂部分的識(shí)別,因此RACCBA-OVA對(duì)抗體的親和力略小于RAC-SA-OVA[15]。

      提高ELISA檢測(cè)的靈敏度是優(yōu)化ELISA檢測(cè)方法的重要手段。圖5所示為間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA的抑制曲線,在相同抑制率下,RAC-CBA-OVA組的競(jìng)爭(zhēng)品質(zhì)量濃度低于RAC-SA-OVA組。同時(shí),半數(shù)抑制率IC50為判斷ELISA靈敏度的重要參數(shù),包被RAC-CBA-OVA的ELISA檢測(cè)的IC50為17.05ng/mL低于包被RAC-SA-OVA的20.90ng/mL。由于CBA-OVA在ELISA檢測(cè)過(guò)程中與抗體結(jié)合力下降,使得抗體與RAC作用幾率增加,檢測(cè)的抑制率被提高,因此使用RAC-CBA-OVA做ELISA檢測(cè)包被抗原對(duì)檢測(cè)提高靈敏度有所幫助[16]。

      圖 4 兩種包被抗原間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA的抗體稀釋曲線圖Fig.4 Antibody dilution curves obtained using two different coating antigens

      圖 5 兩種包被抗原間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA的抑制曲線Fig.5 ELISA inhibition curves obtained using different coating antigens

      3 討 論

      食品中殘留的農(nóng)藥、抗生素及其他人為添加的有害成分的分子質(zhì)量普遍小于1kD,這些小分子物都屬于半抗原,即雖然具有抗原性,但不具備免疫原性,這是因?yàn)楦鶕?jù)小分子半抗原與大分子載體偶聯(lián),即人工抗原[17]。小分子物質(zhì)的免疫分析研究的關(guān)鍵在于合成出高質(zhì)量的人工抗原。BSA和OVA由于具有穩(wěn)定的理化性質(zhì)、良好的溶解性以及具有較多容易修飾的官能團(tuán),而被普遍認(rèn)為是比較合適的人工抗原載體蛋白,同時(shí),人工抗原合成之后,對(duì)其進(jìn)行相應(yīng)的鑒定是十分必要的,本實(shí)驗(yàn)中對(duì)人工抗原的鑒定主要目的在于判斷抗原是否偶聯(lián)成功、偶聯(lián)率的計(jì)算以及人工抗原的純度鑒定。通過(guò)紅外吸收光譜法、紫外吸收光譜法、SDS-PAGE凝膠電泳對(duì)合成的人工抗原進(jìn)行綜合鑒定,表明對(duì)CBA作為鏈接臂的RAC人工抗原合成成功。同時(shí),以對(duì)CBA為間接臂合成的RAC-BSA人工抗原其偶聯(lián)比與常用的以戊二酸酐連接的人工抗原偶聯(lián)比接近,且符合Schneider等[18]提出的有關(guān)人工免疫原最適宜偶聯(lián)比應(yīng)在10:1~20:1之間的要求,故可用于全抗原的合成。

      根據(jù)有關(guān)包被抗原對(duì)ELISA檢測(cè)靈敏度影響的相關(guān)報(bào)道[19],以對(duì)CBA為鏈接臂合成的RAC-OVA的偶聯(lián)比也較為適宜。同時(shí),由于CBA和戊二酸酐在合成人工抗原時(shí)結(jié)合位點(diǎn)相同,而其結(jié)構(gòu)和長(zhǎng)度并不相同,兩者對(duì)比,能直觀地反映人工抗原鏈接臂在ELISA檢測(cè)靈敏度中的影響。Kim等[10]的報(bào)道中提到,改變包被抗原鏈接臂能在一定程度上減少連接臂對(duì)ELISA檢測(cè)靈敏度的干擾,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在以RAC-SA-BSA為免疫原的體系中,包被抗原RAC-CBA-OVA的親和力低于RAC-SAOVA,卻擁有更高的靈敏度,這是由于包被抗原與免疫抗原所采用的鏈接臂不同,減少了對(duì)抗體中鏈接臂部分識(shí)別的干擾,故對(duì)提高ELISA檢測(cè)靈敏性有積極作用。

      [1] SHELVER W L, SIMINTH D J, BERRY E S. Production and characterization of a monoclonal antibody against the β-adrenergic agonist ractopamine[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2000, 48: 4020-4026.

      [2] GABIOLA C, CALONGE M A G, PORTILLO M P, et al. Validation of a method for the determination of salbutamol in animal urine by gas chromatography-mass spectrometry and its application to treated lamb samples[J]. J Microcolumn Separations, 1996, 8: 361-364.

      [3] VANOOSTHUYZE K E I, ARTS C J M, PETEGHEM C H V. Development of a fast and simple method for determination of β-agonists in urine by extraction on empore membranes and detection by a test strip immunoassay[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1997, 45: 3129-3137.

      [4] SHELVER W L, SMITH D J. Determination of ractopamine in cattle and sheep urine samples using an optical biosensor analysis:comparative study with HPLC and ELISA[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2003, 51: 3751-3721.

      [5] SHEN S H, OYANG J, BAEYENS W R G, et al. Determination of β-agonists by ion chromatography with direct conductivity detection[J]. J Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2005, 38: 166-172.

      [6] REGUEIRO J A G, PEREZ B, CASADMONT G. Determination of clenbuterol and salbutamol in urine by capillary gas chromatography with capillary columns of 100 μm[J]. J Chromatogr A, 1993, 655: 73-76.

      [7] POLETTINIA A, MONTAGNA M, HOGENDOORN E A, et al. Applica-bility of coupled-column liquid chromatography to the analysis of β-agonists in urine by direct sample injection 1. Development of a single-residue reversed-phase liquid chromatography-UV method for clenbuterol and selection of chromatographic conditions suitable for multi-residue analysis[J]. J Chromatogr A, 1995, 695: 19-31.

      [8] JOSEFSSON M, SABANOVIC A. Sample preparation on polymeric solid phase extraction sorbents for liquid chromatographic-tandem mass spectrometric analysis of human whole blood: a study on a number of beta-agonists and beta-antagonists[J]. J Chromatogr A, 2006, 1120: 1-12.

      [9] SPYRIDAKI M H, VONAPARTI P K A, VALAVIANI P, et al. Doping control analysis in human urine by liquid chromatographyelectrospray ionization ion trap mass spectrometry for the Olympic Games Athens 2004: determination of corticosteroids and quantif i cation of ephedrines, salbutamol and morphine[J]. Anal Chim Acta, 2006, 573: 242-249.

      [10] KIM Y J, CHO Y A, LEE H S, et al. Investigation of the effect of hapten heterology on immunoassay sensitivity and development of an enzyme-linked immunosorbent assay for the organophosphorus insecticide fenthion[J]. Analytica Chimica Acta, 2003, 494(1/2): 29-40.

      [11] WRIGHT A, TAO M H, KABAT E A, et al. Antibody variable region glycosylation: position effects on antigen binding and carbohydrate structure[J]. EMBO J, 1991, 10(10): 2717-2723.

      [12] TIJSSEN P. Practice and theory of enzyme immunoassays[M]. New York: Elsevier Amsterdam, 1985: 27.

      [13] SAMBROOK J, RUSSELL D W. Molecular cloning: a laboratory manul[M]. 3rd ed. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2002.

      [14] 陳奎治, 彭亦如, 林偉, 等. 光譜分析法研究八羧酸酞菁鋁配合物與牛血清白蛋白的結(jié)合作用[J]. 光譜學(xué)與光譜分析, 2007, 27(9): 84.

      [15] ZHANG Q, WANG L, AHN K C, et al. Hapten heterology for a specific and sensitive indirect enzyme-linked immunosorbent assay for organophosphorus insecticide fenthion[J]. Analytica Chimica Acta, 2007, 596(2): 303-311.

      [16] BUTLER J E. Enzyme-linked immunosorbent assay[J]. Journal of Immunoassay, 2000, 21(2): 165-209.

      [17] LANDSTEINER K. The specificity of serological reactions[M]. Boston: Harvard University Press, 1945: 78-86.

      [18] SCHNEIDER P, HAMMOCK B D. Influence of the ELISA format and the hapten-enzyme conjugate on the sensitivity of an immunoassay for S-triazine herbicides using monoclonal antibodies[J]. Agric Food Chem, 1992, 40(3): 525-530.

      [19] 羅舜菁, 鐘寒燕, 劉成梅, 等. 氯霉素免疫抗原及包被抗原的制備[J].食品科學(xué), 2010, 31(10): 91-94.

      Synthesis and Characterization of Ractopamine Antigen Linked by 4-Methylbenzoic Acid

      CHEN Chen1,LUO Shun-jing1,*,LIU Cheng-mei1,ZOU Chang-chun2,WANG Zhi-yu1,WANG Wen-fei1
      (1. State Key Laboratory of Food Science and Technolog, Nanchang University, Nanchang 330047, China;2. Asset Management Department, Nanchang University, Nanchang 330031, China)

      The mixed anhydride method was used to prepare artif i cial antigen through the conjugation between ractopamine (RAC) and bovine serum albumin (BSA) in the presence of 4-chloromethyl benzoic acid (CBA). The prepared artif i cial antigen was identif i ed by IR, UV and SDS-PAGE. RAC-CBA was also conjugated with OVA to form a coating antigen. The aff i nity and inhibitory activity of the coating antigen were measured. This study suggests that CBA can be used to prepare artif i cial RAC antigens. Meanwhile, CBA conjugated with RAC to form coating agent improves the sensitivity of ELISA.

      ractopamine;4-chloromethyl benzoic acid;ELISA sensitivity;artif i cial antigens

      S859.84

      A

      1002-6630(2013)01-0180-05

      2011-10-07

      江西省科技支撐計(jì)劃項(xiàng)目(2010BNA09500)

      陳臣(1982ü),男,碩士,研究方向?yàn)闋I(yíng)養(yǎng)與食品衛(wèi)生。E-mail:jordan0297@vip.sina.com

      *通信作者:羅順菁(1969ü),女,副教授,碩士,研究方向?yàn)槭称钒踩?。E-mail:luoshunjing@yahoo.com.cn

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