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      牛精原干細(xì)胞研究進(jìn)展

      2013-02-20 06:56:39王春偉扶曉波郭秋萍張衛(wèi)藝胡建宏
      家畜生態(tài)學(xué)報(bào) 2013年10期
      關(guān)鍵詞:精原細(xì)胞睪丸干細(xì)胞

      王春偉,扶曉波,呂 妍,趙 軍,郭秋萍,張衛(wèi)藝,胡建宏

      (西北農(nóng)林科技大學(xué) 動(dòng)物科技學(xué)院,陜西 楊凌 712100)

      精子發(fā)生是雄性動(dòng)物終身產(chǎn)生大量精子的一個(gè)過(guò)程,其特點(diǎn)是由二倍體生殖細(xì)胞(精原干細(xì)胞)的單向分化,通過(guò)減數(shù)分裂形成精母細(xì)胞,最后產(chǎn)生單倍體配子精子[1]。精原干細(xì)胞(spermatogonial stem cells,SSCs)是哺乳動(dòng)物出生后唯一能進(jìn)行自我更新并將遺傳信息傳遞給后代的具有像胚胎干細(xì)胞一樣增殖和分化潛能的干細(xì)胞[2]。精原干細(xì)胞的建立,不僅提供了一種新的工具來(lái)分析精子發(fā)生或干細(xì)胞的自我更新,同時(shí)也開(kāi)辟了干細(xì)胞實(shí)際應(yīng)用的新領(lǐng)域。本文通過(guò)分析牛精原干細(xì)胞分離純化、培養(yǎng)鑒定、冷凍保存和誘導(dǎo)分化的研究現(xiàn)狀,指出目前存在的主要問(wèn)題,并展望其應(yīng)用前景,以期為精原干細(xì)胞的研究提供借鑒。

      1 牛精原干細(xì)胞的發(fā)生

      精原干細(xì)胞位于睪丸曲細(xì)精管的上皮基底膜上,由四周的支持細(xì)胞緊密連接,主要參與精子發(fā)生,通過(guò)自我更新維持生殖干細(xì)胞穩(wěn)定或自我分化成一定數(shù)量的精母細(xì)胞,并最終發(fā)育成精子,保證雄性動(dòng)物正常的生殖能力。精原干細(xì)胞起源于原始生殖細(xì)胞(primordial germ cells,PGCs),而PGCs起源于胚胎外胚層細(xì)胞。PGCs從尿囊基部沿后腸遷移到雙側(cè)生殖腺嵴,在雄性生殖腺嵴PGCs被支持細(xì)胞的前體細(xì)胞所包圍,然后與支持細(xì)胞一起形成生殖索。PGCs演化為生殖母細(xì)胞(性原細(xì)胞),即精原干細(xì)胞的前體細(xì)胞。雄性動(dòng)物睪丸曲細(xì)精管中存在As(single)、Apr(paired)、Aal(aligned)、A1、A2、A3、A4等多個(gè)時(shí)期的細(xì)胞[2]。精原干細(xì)胞的發(fā)育順序?yàn)锳s-Apr-Aal-A1-A2-A3-A4-I-B-Spc。As型(type-A single spermatogonia)細(xì)胞為精子發(fā)生過(guò)程中的干細(xì)胞,是成體內(nèi)唯一能將遺傳信息傳遞給后代的干細(xì)胞[3]。在體內(nèi),基于超微結(jié)構(gòu)特征可將牛的精原細(xì)胞前體細(xì)胞分為基地干細(xì)胞(BSCs)、集合精原細(xì)胞前體細(xì)胞(ASPCs)和定向精原細(xì)胞前體細(xì)胞(CSPCs)三類。其中BSCs見(jiàn)于25和30周齡的犢牛睪丸內(nèi),而在成年牛睪丸內(nèi)數(shù)量很少。BSCs呈圓形,有一格位于胞質(zhì)中央的核。在25周齡的犢牛睪丸內(nèi),多數(shù)生精細(xì)胞屬ASPCs,一般多個(gè)緊密相鄰存在。CSPCs一般具有核周體和胞質(zhì)突起,核的輪廓呈球形或卵圓形。

      2 牛精原干細(xì)胞的分離純化

      精原干細(xì)胞的生物學(xué)研究需要大量高活性、高純度的細(xì)胞。但是,睪丸中精原干細(xì)胞的數(shù)量非常少,需要成熟的分離和純化技術(shù)。目前分離精原干細(xì)胞的常用方法有機(jī)械分離法、組合酶分離法等。牛精原干細(xì)胞常用的分離方法是在兩步酶消化法和Percoll分離法的基礎(chǔ)上進(jìn)行。Yang等[4]研究發(fā)現(xiàn),機(jī)械法與酶消化法相結(jié)合比單純使用機(jī)械法的活細(xì)胞獲得率提高約9倍。在分離方法中,采用不同的酶進(jìn)行消化,例如分散酶、胰蛋白酶及IV型膠原酶等,也可單用或多種酶聯(lián)合使用,通過(guò)兩步法消化獲得精原干細(xì)胞[5-6]。目前常用的純化方法主要有差速貼壁法[5]、磁激活分選[7]等。Lzadyar等[8]結(jié)合差異貼壁和Percoll密度梯度離心法得到了純度為73 %的小牛A型精原細(xì)胞。

      3 牛精原干細(xì)胞的培養(yǎng)鑒定

      3.1 精原干細(xì)胞的培養(yǎng)

      體外大量增殖培養(yǎng)精原干細(xì)胞是研究細(xì)胞功能的基本要求。Aponte等[9]采用小鼠精原干細(xì)胞培養(yǎng)體系進(jìn)行牛精原干細(xì)胞分離培養(yǎng),使精原干細(xì)胞增殖10000倍,但僅能培養(yǎng)1個(gè)月。飼養(yǎng)細(xì)胞層可以支持精原干細(xì)胞的體外培養(yǎng),常用的飼養(yǎng)層細(xì)胞有MEF(mouse embryonic fibroblasts)細(xì)胞[5]、STO(SIM mouse embryoderived thioguanine and ouabain resistant)細(xì)胞[7]等。Kubota等[10]選用體外精原干細(xì)胞無(wú)血清培養(yǎng)體系,發(fā)現(xiàn)飼養(yǎng)層對(duì)于精原干細(xì)胞必不可少。Lzadyar等[8]研究發(fā)現(xiàn),適量的血清可以明顯改善精原干細(xì)胞的存活和增殖情況,但高濃度的血清會(huì)導(dǎo)致精原干細(xì)胞的分化[7,11]。在一些非支持細(xì)胞作為飼養(yǎng)層的培養(yǎng)體系中,常需要添加乳酸鹽和丙酮酸鹽[12]。根據(jù)所選基礎(chǔ)培養(yǎng)基的不同,有時(shí)候還需要添加 Hepes、谷氨酰胺、非必須氨基酸等[13];生長(zhǎng)因子如GDNF和LIF等,也可促進(jìn)精原干細(xì)胞體外擴(kuò)增[14-15]。

      3.2 精原干細(xì)胞的鑒定

      精原干細(xì)胞的鑒定主要包括形態(tài)學(xué)鑒定、細(xì)胞表面特異性標(biāo)記鑒定和干細(xì)胞功能鑒定等。

      對(duì)于多數(shù)哺乳動(dòng)物而言,精原干細(xì)胞的形態(tài)學(xué)特征是較睪丸體細(xì)胞體積大,呈圓形或橢圓形,細(xì)胞間由間橋連接,胞核較大,核仁常位于中央。顆粒較少,核不明顯,常見(jiàn)2個(gè)或多個(gè)[16]。常用的染色鑒定的方法有AP染色法、免疫熒光染色法[17-18]、堿性磷酸酶染色法[19]。在基因鑒定方面,精原干細(xì)胞具有與其他干細(xì)胞相似的一些標(biāo)志物,例如Oct4、Thy-1、β1-integrin和α6-integrin、CD9、CD2為陽(yáng)性;CD51、MHC-I、c-kit、Sca、CD34為陰性。未分化的A型精原細(xì)胞標(biāo)志有Ngn3+基因[20]、C-Ret[20]、CDH1[21]、PGP9.5[22]等。GFRA1、OCT-4、c-Ret是目前體外鑒定精原干細(xì)胞常用的表面標(biāo)志物。Prdm1和Dppa3是早期生殖細(xì)胞標(biāo)志基因[23]。Thy-1、GFRa-1、c-kit為精原干細(xì)胞在生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中不同階段表達(dá)的部分標(biāo)志物[24]。CD133、VASA、DAZL和TSPYL2等在精原干細(xì)胞中特異性表達(dá)[25]。Foxo1是未分化精原干細(xì)胞的表面標(biāo)志,對(duì)于維持精原干細(xì)胞的穩(wěn)定和啟動(dòng)精子發(fā)生過(guò)程有重要作用,F(xiàn)oxo1、Foxo3和Foxo4,可維持精原干細(xì)胞功能[26]。Stra8是哺乳動(dòng)物生殖細(xì)胞有絲分裂變?yōu)闇p數(shù)分裂前的特異表達(dá)基因[27]。

      4 牛精原干細(xì)胞的冷凍保存

      精原干細(xì)胞體外培養(yǎng)與冷凍保存技術(shù)相結(jié)合,為保護(hù)珍稀動(dòng)物和優(yōu)良家畜遺傳資源提供又一條新的途徑[28]。常用的抗凍劑可以分為滲透性抗凍劑和非滲透性抗凍劑。滲透性冷凍保護(hù)劑主要有甘油(Glycerol)、二甲基亞砜(Dimethyl sulphoxide, DMSO)、丙二醇(Propylene glycol, PROH)、乙二醇(Ethyleneglycol, EG)、木糖醇、乙酰胺、阿東糖醇等。非滲透性保護(hù)劑主要有蔗糖(Sucrose)、海藻糖(Trehalase)、聚蔗糖(Ficoll)、葡聚糖(Dextran)、聚乙烯吡咯烷酮(Polyvinyl pyrrolidone, PVP)、聚已二醇(Polyethylene glycol, PEG)以及白蛋白(Albumin) 等。鄭鵬等[29]研究發(fā)現(xiàn),以10%的二甲基亞砜為冷凍劑冷凍保存精原干細(xì)胞效果最好;冷凍保存支持細(xì)胞以10%乙二醇和0.1 mmol/L海藻糖組合冷凍效果最好;Izadyar等[30]表明,使用含有MEM+10%FCS+10%DMSO+0.07M蔗糖的凍存液,采用慢速降溫冷凍方式,冷凍復(fù)蘇后可獲得70%以上的細(xì)胞活率;馬良宏等[31]采用常規(guī)方法冷凍保存的精原干細(xì)胞移植后仍保持其增殖分化和形成成熟精子的能力;丁曉麟等[32]采用非程控降溫方法凍存精原干細(xì)胞后,復(fù)溫后細(xì)胞能夠快速增殖。

      5 牛精原干細(xì)胞的誘導(dǎo)分化

      Sato[33]和Takashi等[34]研究發(fā)現(xiàn),精原干細(xì)胞有歸巢行為和克隆形成的能力,這些均與微環(huán)境分泌的趨化因子有關(guān),如膠質(zhì)細(xì)胞源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(glial cell-line derived neurotrophic factor, GDNF)和基質(zhì)細(xì)胞衍生因子-1(stromal-derived factor 1, SDF-1),從而探究精原干細(xì)胞在曲細(xì)精管中的行為。Kanatsu-Shinohara等[35]成功將新生小鼠SSCs誘導(dǎo)為胚胎干細(xì)胞樣(ES-like)細(xì)胞。Guan等[36]收集成年小鼠的SSCs,在特定的培養(yǎng)條件下也具有了ES的特性,并將這些細(xì)胞命名為多能性成體生殖干細(xì)胞(maGSCs)。Simon等[37]首次報(bào)道將新生SSCs置于誘導(dǎo)性微環(huán)境轉(zhuǎn)分化為三個(gè)胚層的組織。Kossack等[38]發(fā)現(xiàn)SSCs表達(dá)與胚胎干細(xì)胞標(biāo)記物相似的標(biāo)志,表明SSCs具有類似ES的多潛能性。目前,關(guān)于牛精原干細(xì)胞誘導(dǎo)分化方面的研究較少,但已經(jīng)初步建立牛精原干細(xì)胞體外培養(yǎng)體系及體外分析鑒定牛精原干細(xì)胞分化能力的基本方法。

      6 牛精原干細(xì)胞研究存在的主要問(wèn)題

      動(dòng)物睪丸中精原干細(xì)胞的數(shù)量和比例很低,隨著年齡的增加,精原干細(xì)胞比例明顯降低,所以獲得并富集精原干細(xì)胞的難度增加。牛出生后5~7月齡更容易獲得大量精原干細(xì)胞[39]。精原干細(xì)胞的分裂增殖需要適宜的環(huán)境和良好的條件,溫度、細(xì)胞因子都對(duì)精原干細(xì)胞的分裂增殖有影響[3]。目前精原干細(xì)胞體外培養(yǎng)存在爭(zhēng)議[40],培養(yǎng)基的成分復(fù)雜,含有各種生長(zhǎng)因子,對(duì)SSCs作用不清楚,不利于精原干細(xì)功能的研究,需要找到更合適的培養(yǎng)基。對(duì)小鼠等模式動(dòng)物精原干細(xì)胞的培養(yǎng)已經(jīng)成熟,但對(duì)牛等家畜大動(dòng)物的精原干細(xì)胞的特定的培養(yǎng)技術(shù)體系仍處于探索階段。因此,需要深入研究牛的精原干細(xì)胞的體外培養(yǎng)體系,探究精原干細(xì)胞的自我更新和分化機(jī)制,實(shí)現(xiàn)牛精原干細(xì)胞的長(zhǎng)期培養(yǎng)。

      目前利用雄性精原干細(xì)胞介導(dǎo)的技術(shù)已經(jīng)制備出轉(zhuǎn)基因動(dòng)物[41],為瀕危動(dòng)物的保種[42]提供高效而簡(jiǎn)便的途徑。近年來(lái),精原干細(xì)胞開(kāi)始應(yīng)用于研究治療原發(fā)性無(wú)精子癥,對(duì)于解決雄性不育等問(wèn)題具有廣闊的應(yīng)用前景[43]。精原干細(xì)胞增殖培養(yǎng)、誘導(dǎo)分化與動(dòng)物育種技術(shù)相結(jié)合,將會(huì)大規(guī)模的生產(chǎn)優(yōu)良家畜,為人類帶來(lái)優(yōu)質(zhì)的動(dòng)物產(chǎn)品。精原干細(xì)胞的冷凍保存與移植技術(shù)的聯(lián)合有重要的實(shí)踐意義。在醫(yī)學(xué)、干細(xì)胞生物學(xué)以及畜牧業(yè)生產(chǎn)方面,精原干細(xì)胞體外增殖培養(yǎng)以及誘導(dǎo)分化的研究具有重要的理論意義及廣闊的應(yīng)用前景。

      參考文獻(xiàn):

      [1] Oatley J M and Brinster R L. Regulation of spermatogonial stem cell self-renewal in mammals[J]. Annu Rev Cell Dev Biol, 2008, 24: 263-286.

      [2] Ehmcke J, Wistuba J, Schatt S.Spermatogonial stem cells: questions, models and perspectives [J]. Hum Reprod Update, 2006, 12(3):275-282.

      [3] 張學(xué)明,李德雪,于家傲,等.精原干細(xì)胞的生物學(xué)特性[J].細(xì)胞生物學(xué)雜志,2006,28(1): 37-41.

      [4] Li S L, Wang X H, Yang Z H, et al. Comparion of mechanical procedure and enzymatic digestion methods in isolating spermatogenic cells from rat tests[J].Chinese Journal of Tissne Engineering Rdsearch,2007, 11(50):10 105-10 108.

      [5] Shen F, Zhang C, Zheng H, et al. Long-term culture and transplantion of spermatogonial stem cells from BALB/cmice[J]. Cells Tissues Organs, 2010, 191(5):372-381.

      [6] Wu Z, Luby-Phelps K, Bugde A, et al. Capacity for stochastic self-renewal and differentiation in mammalian spermatogonial stem cells[J]. J Cell Biol, 2009, 187(4):513-524.

      [7] Kubota H, Avarbock M R,Brinster R L. Culture conditions and single growth factors affect fate determination of mouse spermatogonial stem cells [J]. Biol Reprod, 2004, 71(3): 722-731.

      [8] Izadyar F,Spierenberg G T,Creemers L B,et al. Isolation and purification of type A spermatogonia from the bovine testis[J].Reproduction,2002 ,124 (1) :85-94.

      [9] Aponte P M, Soda T, Teerds K J, et al. Propagation of bovine spermatogonial stem cells in vitro [J]. Reproduction, 2008, 136(5):543-557.

      [10] Kubota H, Avarbock M R, Brinster R L. Growth factors essential for self renewal and expansion of mouse spermatogonial stem cells [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA,2004, 101 (47):16 489-16 494.

      [11] Kanatsu-shinohara M, Miki H, Inoue K, et al. Long-term culture of mouse male germline stem cells under serum-or feeder-free conditions[J].Bio Reprod, 2005, 72(4):985-991.

      [12] 阿拉達(dá)爾.山羊精原干細(xì)胞體外培養(yǎng)體系的建立與移植研究[D].陜西楊凌:西北農(nóng)林科技大學(xué),2007.

      [13] 張學(xué)明,李德雪,岳占碰.精原干細(xì)胞的體外增殖與分化[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2005,21(5):16-23.

      [14] 李恩中,李德雪,張世慶,等.精原干細(xì)胞移植及體外培養(yǎng)研究進(jìn)展[J].軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院院刊,2006,30(3): 280-283.

      [15] Koruji M, Movahedin M, Mowla S J, et al. Efficiency of adult mouse spermatogonial stem cell colony formation under several culture conditions [J]. In Vitro Cell Dev Biol Anim.2009, 45(5-6):281-289.

      [16] Yoshida S. Stem Cell Niche System in Mouse Spermatogenesis[M].Male Germline Stem Cells:Developmental and Regenerative Potential, 2011:159-175.

      [17] Kossack N, Meneses J, Shefi S, et al. Isolation and characterization of pluripotent human spermatogonial stem cell-derived cells [J]. Stem Cells, 2009, 27(1): 138-149.

      [18] 潘少輝,胡玥,張姍姍,等.成年昆明小鼠雄性生殖干細(xì)胞的分離培養(yǎng)及其多能性研究[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2010,38(6): 23-30.

      [19] 李蓮軍,陸峻波,施江濱,等.堿性磷酸酶細(xì)胞化學(xué)法檢測(cè)體外培養(yǎng)精原細(xì)胞[J].云南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2004,19(3): 318-321.

      [20] Yoshida S, Takakura A, Ohbo K,et al. Neurogenin3 delineates the earliest stages of spermatogenesis in the mouse testis[J]. Dev Biol, 2004, 269(2): 447-458.

      [21] Tokuda M, Kadokawa Y, Kurahashi H, et al. CDH1 is a specific marker for undifferentiated spermatogonia in mouse testes[J]. Biol Reprod, 2007, 76(1): 130-141.

      [22] Luo J, Megee S, Rathi R,et al. Protein gene product 9.5 is a spermatogonia-specific marker in the pig testis: Application to enrichment and culture of porcine spermatogonia[J]. Mol Reprod Dev, 2006, 73(12): 1 531-1 540.

      [23] Kee K, Angeles V T, Flores M, et al. Human DAZL, DAZ and BOULE genes modulate primordial germ-cell and haploid gamete formation[J]. Nature, 2009, 462(7270):222-225.

      [24] Yeh J R, Nagano M C. Spermatogonial stem cell biomarkers: improved outcomes of spermatogonial transplantation in male fertility restoration[J]. Expert Rev Mol Diagn,2009, 9(2):109-114.

      [25] Kanatsu-Shinohara M, Takashima S, Ishii K, et al. Dynamic changes in EPCAM expression during spermatogonial stem cell differentiation in the mouse testis[J]. Plos One, 2011, 6(8):e23663.

      [26] Goertz M J, Wu Z, Gallardo T D, et al. Foxo1 is required in mouse spermatogonial stem cells for their maintenance and the initiation of spermatogenesis [J]. J Clin Invest, 2011, 121(9):3 456-3 466.

      [27] Anderson E L, Baltus A E, Roepers-Gajadien H L,et al. Stra8 and its inducer, retinoic acid, regulate meiotic initiation in both spermatogenesis and oogenesis in mice[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2008, 105(39):14 976-14 980.

      [28] 唐 紅,石國(guó)慶,管 峰,等.精原干細(xì)胞體外培養(yǎng)研究進(jìn)展[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2008,29(6): 87-89.

      [29] 鄭 鵬,李冬旭,田亞光,等.新生牛睪丸細(xì)胞的分離純化與冷凍保存[J].2010,41(2):96-100.

      [30] Izadyar F, Den Ouden K, Creemers L B, et al. Proliferation and differentiation of bovine type A spermatogonia during long-term culture [J]. Bio Reprod, 2003, 68(1), 272-281.

      [31] 馬良宏,丁 強(qiáng),馮立新,等.精原干細(xì)胞冷凍保存后再移植的生精功能[J].中組織工程研究與臨床康復(fù),2010,31(14):5 767-5 772.

      [32] 丁曉麟,張寒瑩,王子玉,等.小鼠精原干細(xì)胞冷凍保存[J].解剖學(xué)報(bào),2009,40(4):685-689.

      [33] Sato T, Katagiri K, Yokonishi T, et al. In vitro production of fertile sperm from murine spermatogonial stem cell lines[J]. Nature Communication, 2011, 2:472.

      [34] Takashi N, Atsuo O, Talashi S. Reconstitution of mouse spermatogonial stem cell niches in culture[J]. Cell Stem Cell, 2012, 11(4):567-578.

      [35] Kanatsu-Shinohara M, Inoue K, Lee J,et al. Generation of pluripotent stem cells from neonatal mouse testis [J]. Cell, 2004, 119:1 001-1 012.

      [36] Guan K, Nayernia K, Maier L S, et al. Pluripotency of spermatogonial stem cells from adult mouse testis [J]. Nature, 2006, 440:1 199-1 203.

      [37] Simon L, Ekman G C, Kostereva N, et al. Direct Transdifferentiation of Stem/Progenitor Spermatogonia Into Reproductive and Nonreproductive Tissues of All Germ Layers [J]. Stem Cells, 2009, 27(7): 1 666-1 675.

      [38] Kossack N, Meneses J, Shefi S, et al. Isolation and Characterization of Pluripotent Human Spermatogonial Stem Cell-Derived Cells[J]. Stem Cells, 2009,27(1): 138-149.

      [39] Herrid M, Vignarajan S, Davey R, et al. Successful transplantation of bovine testicular cells to heterologous recipients [J].Reproduction, 2006,132(4):617-624.

      [40] Nagano M C, Techniques for culturing spermatogonial stem cells continue to improve[J]. Biol Reprod, 2011, 84(1):5-6.

      [41] Zhao Q, Wang J L, Zhang Y, et al. Generation of histocompatible androgenetic embryonic stem cells using spermatogenic [J]. Stem Cells, 2010, 2(28): 229-239.

      [42] Olive V, ois Cuzin F. The spermatogonial stem cell:from basic knowledge to transgenic technology [J]. Int J Biochem Cell Biol, 2005, 37: 246-250.

      [43] Kubota H, Brinster R L. Technology Insight: in vitro culture of spermatogonial stem cells and their potential therapeutic uses [J]. Nature Revs Endocrinol, 2006, 2: 99-108.

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