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      米曲霉木聚糖酶N端引入二硫鍵對其熱穩(wěn)定性的影響

      2013-02-19 06:53:18陳忠法唐存多汪俊卿鄔敏辰
      關(guān)鍵詞:二硫鍵聚糖熱穩(wěn)定性

      陳忠法, 唐存多, 汪俊卿, 吳 靜, 鄔敏辰*

      (1.江南大學(xué) 生物工程學(xué)院,江蘇 無錫 214122;2.江南大學(xué) 無錫醫(yī)學(xué)院,江蘇 無錫 214122)

      木聚糖是植物細(xì)胞壁的主要結(jié)構(gòu)多糖物質(zhì)之一,在自然界中含量極為豐富。木聚糖酶是可將木聚糖降解成低聚木糖和木糖的一類酶的總稱,能從木聚糖分子主鏈的內(nèi)部水解β-1,4糖苷鍵,產(chǎn)物為不同長度的木寡糖和少量木糖,為木聚糖降解酶系中最關(guān)鍵的酶[1]。通過酶分子一級結(jié)構(gòu)的序列比對和疏水簇分析,大多數(shù)木聚糖酶屬于糖苷水解酶10和11家族[2]。木聚糖酶在造紙、食品、能源、飼料以及環(huán)境等領(lǐng)域里都有著重要的應(yīng)用價(jià)值,但由于一些工藝過程如食品、飼料制粒加工等需要較高工作溫度[1],而天然酶往往難以滿足其生產(chǎn)要求,因此,如何提高木聚糖酶的熱穩(wěn)定性已成為廣泛關(guān)注的焦點(diǎn)。

      影響木聚糖酶熱穩(wěn)定性的因素很多,主要有疏水作用、氫鍵、離子鍵、二硫鍵、包裝效應(yīng)、螺旋結(jié)構(gòu)等多種因素[3]。目前對于11家族木聚糖酶熱穩(wěn)定性提高的報(bào)道有很多是關(guān)于酶的N端的改造,例如,Duman等對一種11家族木聚糖酶的N端進(jìn)行了7個(gè)定點(diǎn)突變,突變酶比野生酶的Tm值提高了約25℃[4];Xiong等在一種里氏木霉木聚糖酶的N端和中部β折疊處引入二硫鍵,突變酶DB1比野生酶在65℃時(shí)的半衰期提高約112倍[5];高樹娟等把一種超耐熱木聚糖酶N端前42個(gè)氨基酸替代了一種米曲霉木聚糖酶前37個(gè)氨基酸,突變酶比野生酶在70℃時(shí)的半衰期提高約197倍[6]。

      作者已克隆和表達(dá)了一個(gè)來自Aspergillus oryzae的11家族常溫木聚糖酶基因Aoxyn11A,該酶在常溫條件下酶活性比較高,但溫度大于50℃時(shí)熱穩(wěn)定性差[7],存在應(yīng)用上的不足。通過同源建模和分子動(dòng)力學(xué)模擬分析評估的基礎(chǔ)上,采用定點(diǎn)突變技術(shù),期望獲得一株表達(dá)高熱穩(wěn)定性木聚糖酶的工程菌。

      1 材料與方法

      1.1 菌株、質(zhì)粒和培養(yǎng)基

      含有原始基因的重組質(zhì)粒pUCm-TAoXyn11A,pPIC9KM-Aoxyn11A由作者所在實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建和保存;Escherichia coli DH5α、Pichia pastoris GS115和表達(dá)質(zhì)粒pPIC9KM由作者所在實(shí)驗(yàn)室保藏;pUCm-T質(zhì)粒:購自上海 Sangon公司;LB、YPD、MD、BMGY和 BMMY培養(yǎng)基參見 Multi-Copy Pichia Expression Kit(Invitrogen 公司)操作手冊。

      1.2 主要試劑

      rTaq酶、T4 DNA連接酶、各種限制性內(nèi)切酶、250 bp DNA Ladder Marker和低相對分子質(zhì)量蛋白質(zhì)Marker:購于大連TaKaRa公司;Tryptone、Yeast Extract、YNB、G418 和 EZ-10 Spin Column Plasmid Mini-Preps Kit:購自上海Sangon公司;標(biāo)準(zhǔn)木糖、櫸木木聚糖、樺木木聚糖和考馬斯亮藍(lán)R-250:Sigma公司產(chǎn)品;其它試劑均為國產(chǎn)或進(jìn)口分析純。

      1.3 野生型酶AoXyn11A和超耐熱木聚糖酶EvXyn11TS序列的對比

      超耐熱酶EvXyn11TS是屬于木聚糖酶11家族中熱穩(wěn)定性最高的酶之一[4]。作者所在實(shí)驗(yàn)室登錄NCBI將其進(jìn)行密碼子優(yōu)化,選擇Pichia pastoris GS115偏愛型的密碼子,然后人工合成了這段序列(Syxyn11,GenBank accession No.JX459567), 該優(yōu)化基因在Pichia pastoris GS115中表達(dá),測其最適溫度在反應(yīng)時(shí)間為15 min時(shí)為85℃,其最高酶活達(dá)到17.74 U/mL;在80℃保溫60 min后,保留未熱處理原酶85.9%的活性,進(jìn)一步證實(shí)了該酶有很高的熱穩(wěn)定性[8]。本研究擬采用DNAMAN程序?qū)δ揪厶敲窤oXyn11A(GenBank accession No.JQ326257)和超耐熱酶EvXyn11TS進(jìn)行N端氨基酸序列同源比對,希望找出與酶分子熱穩(wěn)定性相關(guān)的氨基酸殘基。

      1.4 計(jì)算機(jī)同源建模和分子動(dòng)力學(xué)模擬

      在Protein Data Bank數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行同源搜索,尋找到3個(gè)與AoXyn11A一級結(jié)構(gòu)同源性較高的、分別來源于繩狀青霉菌Penicillium funiculosum(1TE1)、E.coli (2VUL) 和紅褐 肉座菌 Hypocrea jecorina(1ENX)的11家族木聚糖酶晶體結(jié)構(gòu),作為同源建模的模板。同源建模在蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)服務(wù)器(http:/swissmodel.expasy.org/) 和 程 序 MODELLER 9.9(http://salilab.org/modeller/)上完成[9]。

      分子動(dòng)力學(xué)(MD)模擬使用GROMACS 4.0軟件,采用GROMOS96力場,該力場中蛋白的立場參數(shù)數(shù)據(jù)均給予實(shí)驗(yàn)值擬合模擬溫度為500 K,溶劑采用TIP3P水模型。對于每個(gè)模擬體系,均在溶質(zhì)外圍加上1.5 nm的水分子層。MD模擬之前,對體系分別進(jìn)行了兩次能量優(yōu)化,首先約束溶質(zhì),用最陡下降法優(yōu)化800步,再用共軛梯度法優(yōu)化1 200步。然后去約束后再進(jìn)行800步最陡下降法優(yōu)化,1200步共軛梯度法優(yōu)化。MD模擬分為兩步:首先進(jìn)行20 ps的約束溶質(zhì)分子的MD模擬,此時(shí)溫度從0 K逐步升高到500 K;接著進(jìn)行500 ps的無約束恒溫MD模擬,最后分別得到野生型酶和突變酶的均方根偏差(RMSD)值。

      1.5 定點(diǎn)突變引入N端二硫鍵

      1.5.1 引物的突變 根據(jù)木聚糖酶基因Aoxyn11A和目的突變位點(diǎn)設(shè)計(jì)引物(表1)。

      表1 引入二硫鍵的引物Table 1 Oligonucleotide primers for the introduction of a disulfide bridge

      1.5.2 定點(diǎn)突變程序 (1)大引物PCR程序按照相關(guān)文獻(xiàn)[10]的步驟操作。(2)兩步PCR程序,第一步PCR:質(zhì)粒pUCm-T-AoXyn11A為PCR模板,用引物Xyn11-F和Xyn11-Rm進(jìn)行擴(kuò)增,擴(kuò)增條件:94℃預(yù)變性 5 min;94℃變性 30 s,55 ℃退火 30 s,72℃延伸30 s,30個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min,產(chǎn)物為含突變位點(diǎn)的N端前108個(gè)堿基。第二步PCR:取以上PCR產(chǎn)物,以割膠回收物為N端大引物,Xyn11-R為C端引物進(jìn)行擴(kuò)增。擴(kuò)增條件:94℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性 30 s,45 ℃退火 30 s,72 ℃延伸 60 s;72℃延伸10 min。回收目的基因,連接到pUCm-T載體上,獲得重組質(zhì)粒pUCm-T-Aoxyn11AM,對其進(jìn)行測序驗(yàn)證。

      1.6 突變酶基因表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建

      pPIC9K載體在畢赤酵母表達(dá)時(shí),許多情況下Stel13切割Glu-Ala重復(fù)片段效率不高,Glu-Ala重復(fù)序列就留在了表達(dá)目的蛋白的N端,作者采用pPIC9KM(專利號 201110410391.0)載體,在其 N 端引入Kex2裂解位點(diǎn),以保證表達(dá)目的蛋白具有天然N端[11]。將質(zhì)粒pUCm-T-AoXyn11A用XhoⅠ和NotⅠ進(jìn)行雙酶切,回收目的片段,與經(jīng)同樣雙酶切的質(zhì)粒pPIC9KM連接,轉(zhuǎn)化Escherichia coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,經(jīng)通用引物PCR驗(yàn)證后,測序正確的重組質(zhì)粒命名為pPIC9KM-Aoxyn11A。

      1.7 野生型酶和突變酶基因在Pichia pastoris中的表達(dá)

      將質(zhì)粒pPIC9KM-Aoxyn11A和pPIC9KMAoxyn11AM用SacⅠ線性化后,電擊轉(zhuǎn)化畢赤酵母,挑取陽性轉(zhuǎn)化子。電轉(zhuǎn)化及篩選方法參見Invitrogen公司的操作手冊。重組酵母的培養(yǎng)、誘導(dǎo)表達(dá)和檢測的具體方法見文獻(xiàn)。

      1.8 木聚糖酶的活性測定

      采用改進(jìn)的DNS法測定木聚糖酶活性。2.4 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.5%櫸木木聚糖溶液 (pH 5.5)加入0.1 mL適當(dāng)稀釋的酶液,50℃下反應(yīng)10 min后,加入2.5 mL DNS試劑,沸水中顯色7 min,定容后測定A540nm。在上述反應(yīng)條件下,每分鐘產(chǎn)生1 μmol還原糖所需的酶量定義為一個(gè)酶活性單位 (U)。

      1.9 酶學(xué)性質(zhì)分析

      1.9.1 酶的最適反應(yīng)溫度和熱穩(wěn)定性 取適當(dāng)稀釋酶液于40~75℃水浴條件下進(jìn)行酶解反應(yīng),每隔5℃測定酶活性,以最高者為100%,作溫度-相對酶活性曲線;將酶液于不同溫度下保溫30 min后,按常規(guī)方法測定殘余酶活性,以未保溫處理酶液的活性定義為100%,作溫度-相對酶活性曲線。反應(yīng)所用的緩沖液為0.1 mol/L檸檬酸-磷酸緩沖液(pH 5.5)。

      1.9.2 酶的最適pH和pH穩(wěn)定性 取適當(dāng)稀釋酶液,溫度為最適反應(yīng)溫度,在pH 3.0~8.5的條件下進(jìn)行酶解反應(yīng),每隔0.5個(gè)pH單位測定酶活性,以最高者為100%,作pH-相對酶活性曲線;將酶在不同的pH值條件下于40℃保溫1 h,再分別測定殘留酶活性,以最高者為100%,作pH-相對酶活性曲線。反應(yīng)所用的緩沖液為:0.1 mol/L檸檬酸-磷酸緩沖液(pH 3.5~8.0)和 0.05 mol/L 甘氨酸-氫氧化納緩沖液(pH 8.5)。

      1.9.3 酶動(dòng)力學(xué)參數(shù)的測定 底物為不同濃度的樺木木聚糖溶液 (0.1 mol/L檸檬酸-磷酸緩沖液配置,pH 5.5),在酶的最適溫度下測定其活性,按Lineweaver-Burk法作圖,求出酶的Km和Vmax值。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 米曲霉木聚糖酶和超耐熱酶氨基酸序列的比對

      圖1序列比對顯示它們的N端氨基酸殘基序列相似性為43.5%,EvXyn11TS含有二硫鍵和糖基化位點(diǎn)(見圖1),而后面的氨基酸殘基序列的相似性在70%以上。作者擬以AoXyn11A為母本,在對應(yīng)于EvXyn11TS的位置上對這兩個(gè)基因進(jìn)行同源建模和分子動(dòng)力學(xué)模擬分析

      圖2顯示突變酶AoXyn11AM和野生型酶AoXyn11A相比較,其N端增加一個(gè)二硫鍵 (C5和C32,藍(lán)色標(biāo)識),但是它的三維結(jié)構(gòu)和活性中心并沒有受到影響。

      圖1 AoXyn11A和EvXyn11TS的N端同源序列比對Fig.1 N-terminal amino acid homology alignment of AoXyn11A with EvXyn11TS

      圖2 通過同源建模預(yù)測的AoXyn11A和AoXyn11AM分子結(jié)構(gòu)Fig.2 Predicted molecular structures of AoXyn11A and AoXyn11AMby homology modeling

      分子動(dòng)力學(xué)模擬顯示(圖3),隨著模擬高溫時(shí)間的延長,突變酶的RMSD值在各個(gè)時(shí)間點(diǎn)都低于野生型酶,預(yù)示著突變酶在模擬高溫環(huán)境中變形小于野生型酶,具有更好的熱穩(wěn)定性。

      2.2 原基因的定點(diǎn)突變

      以原基因?yàn)槟0?、N端引物Xyn11-F、C端引物Xyn11-Rm經(jīng)大引物PCR法擴(kuò)增獲得含有突變位點(diǎn)(Cys5-Cys32)的片段,該片段和理論長度(120 bp,圖4a)相符。以該片段為N端引物,C端引物為Xyn11-R進(jìn)行PCR,獲得目的片段Aoxyn11AM與理論長度(602 bp,圖4b)相符。把目的片段克隆進(jìn)pUCm-T載體,挑選陽性克隆子經(jīng)測序驗(yàn)證,證明重組質(zhì)粒pUCm-T-Aoxyn11AM含有目的基因。

      圖3 AoXyn11A和AoXyn11AM的RMSDFig.3 RMSD values of AoXyn11A and AoXyn11AM

      圖4 定點(diǎn)突變過程Fig.4 Process of site-directed mutagenesises

      2.3 重組表達(dá)質(zhì)粒pPIC9KM-Aoxyn11AM的構(gòu)建

      按照1.6的方法構(gòu)建重組表達(dá)質(zhì)粒,經(jīng)通用引物PCR擴(kuò)增,目的條帶與理論長度 (1 076 bp,圖4c)相符,測序正確的重組質(zhì)粒命名為pPIC9KMAoxyn11AM。

      2.4 野生型酶和突變酶基因在Pichia pastoris中的表達(dá)

      野生型酶和突變酶的理論相對分子質(zhì)量分別為20 700和21 200,與圖5顯示的蛋白質(zhì)相對分子質(zhì)量大致相符,表明野生型酶和突變酶基因在畢赤酵母中得到了精確的表達(dá)。

      圖5 AoXyn11A和AoXyn11AM在畢赤酵母中表達(dá)后的SDS-PAGE分析Fig.5 SDS-PAGE analysis of AoXyn11A and AoXyn11AM expressed in Pichia pastoris GS115

      2.5 重組木聚糖酶酶學(xué)性質(zhì)

      2.5.1 最適反應(yīng)溫度與熱穩(wěn)定性 在1.9描述的方法和條件下,反應(yīng)時(shí)間為10 min時(shí),圖6顯示野生型酶的最適反應(yīng)溫度為55℃,此時(shí)該酶的最大酶活性為333 U/mL;突變酶的最適反應(yīng)溫度為60℃,此時(shí)該酶的最大酶活性為250 U/mL。隨著溫度升高,高溫使酶蛋白逐漸變性而失活,引起酶反應(yīng)速率下降,在55~75℃這一區(qū)間,由于N端引入了二硫鍵,其形成對構(gòu)象起穩(wěn)定作用,使突變酶表現(xiàn)出較好的穩(wěn)定性,其變性慢于野生型酶,因而表現(xiàn)出相對較高的相對酶活性,這一結(jié)果和分子模擬比對是一致的。

      把這兩種酶置于不同的溫度中保溫30 min后,由圖7顯示,隨著溫度的升高,突變酶的相對酶活性一直高于野生型酶,表明該二硫鍵使突變酶具有更好的熱穩(wěn)定性。

      圖6 溫度對AoXyn11A和AoXyn11AM活性的影響Fig.6 Effectsoftemperatureson theactivitiesof AoXyn11 and AoXyn11AM

      圖7 溫度對AoXyn11A和AoXyn11AM熱穩(wěn)定性的影響Fig.7 Effects of temperatures on the thermostability of AoXyn11A and AoXyn11AM

      2.5.2 酶的最適pH與pH穩(wěn)定性 圖8顯示這兩種酶的最適pH集中在pH 5~6之間,pH穩(wěn)定性測試結(jié)果也大致相同,說明突變酶的酸堿耐受性變化不大。

      圖8 pH對AoXyn11A和AoXyn11AM活性的影響Fig.8 Effects of pH on the activities of AoXyn11A and AoXyn11AM

      2.5.3 酶的比酶活和Km在1.9的方法和條件下,測得野生型酶的比酶活為3 490 U/mg,Km為7.67 mg/mL;突變酶的比酶活為2480 U/mg,Km為2.75 mg/mL。對這一現(xiàn)象的推測是由于突變酶引入了二硫鍵而具有較好的穩(wěn)定性,在適量的底物濃度時(shí),和底物結(jié)合更加緊密和快速,表現(xiàn)出低的Km值;當(dāng)?shù)孜餄舛瘸^一定量時(shí),野生型酶由于整體柔性較好,能夠隨著底物量的增多而舒展結(jié)構(gòu),結(jié)合更多的底物并參加反應(yīng),表現(xiàn)出高的Vmax。

      3 結(jié)語

      自然界酶的種類雖然比較多,但是全球飛速發(fā)展的經(jīng)濟(jì)對生物催化提出各不相同的要求。分析某個(gè)催化過程,利用基因工程手段對酶進(jìn)行定點(diǎn)突變,從而改變酶的特定的酶學(xué)性質(zhì),使目的催化過程以最經(jīng)濟(jì)、最環(huán)保的方式完成,這對于我國加快經(jīng)濟(jì)結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)型,搶占技術(shù)至高點(diǎn)具有重要意義。通過目的酶和耐熱酶的序列比對能夠有效的確定具有“熱穩(wěn)定效應(yīng)”的氨基酸殘基和相關(guān)的模式結(jié)構(gòu),提示了生物大分子對溫度的進(jìn)化適應(yīng),但是通常情況下只有一小部分的氨基酸的突變能夠提高熱穩(wěn)定性,絕大部分的突變僅僅是“基因漂移”的結(jié)果。依靠計(jì)算機(jī)輔助設(shè)計(jì),如同源建模、分子模擬等方法可以使我們更有效的預(yù)測出與酶熱穩(wěn)定性相關(guān)的那部分氨基酸,從而使實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)更具針對性。

      通過計(jì)算機(jī)分析為先導(dǎo)再開展實(shí)驗(yàn),分析和實(shí)驗(yàn)結(jié)果的一致性表明了作者實(shí)驗(yàn)方法的有效性。突變酶比酶活雖有一定的下降,但是具有更高的熱穩(wěn)定性和較好的底物親和力(低的Km值),有很大的應(yīng)用潛力。

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