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      葡聚糖的環(huán)氧化修飾與表征

      2013-01-14 09:04:22楊梅竹薛亞楠齊國斌喻發(fā)全
      化學(xué)與生物工程 2013年2期
      關(guān)鍵詞:側(cè)鏈投料葡聚糖

      楊梅竹,薛亞楠,蔡 寧,齊國斌,張 寒,喻發(fā)全

      (武漢工程大學(xué)化工與制藥學(xué)院 綠色化工過程教育部重點實驗室,湖北 武漢430073)

      葡聚糖與生物組織具有良好的生物相容性,無毒,對溫度和pH值的穩(wěn)定性好[1],經(jīng)過化學(xué)改性后,可作為一種理想的藥物載體材料。葡聚糖的環(huán)氧化是在葡聚糖的結(jié)構(gòu)單元中引入了環(huán)氧基團(tuán)。環(huán)氧化葡聚糖由于引入了環(huán)氧基團(tuán),不僅水溶性得到提高,而且能夠很好地與帶有羥基(-OH)、氨基(-NH2)、羧基(-COOH)或巰基(-SH)官能團(tuán)的藥物、蛋白質(zhì)、DNA等[2-4]結(jié)合,形成具有特殊用途的藥物前驅(qū)體、藥物載體、基因載體等[2-6]。

      作者在此以葡聚糖(Dex)為原料、1,4-丁二醇二縮水甘油醚(BDE)為雙端帶有環(huán)氧基團(tuán)的環(huán)氧化試劑,在堿性條件下將葡聚糖分子鏈修飾上環(huán)氧基團(tuán),并考察了投料比、pH值、反應(yīng)時間等條件對環(huán)氧取代度的影響;通過改變反應(yīng)條件對環(huán)氧取代度進(jìn)行調(diào)控,得到環(huán)氧取代度可調(diào)的環(huán)氧化葡聚糖,為葡聚糖進(jìn)一步功能化修飾及應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。

      1 實驗

      1.1 試劑與儀器

      葡聚糖(20kDa),分析純,阿拉丁試劑有限公司;1,4-丁二醇二縮水甘油醚,分析純,華威銳科試劑有限公司;氫氧化鈉(NaOH)、硼氫化鈉(NaBH4)、濃鹽酸(HCl)、五水合硫代硫酸鈉(Na2S3O3·5H2O)、酚酞,分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;重水(D2O),青島騰龍微波科技有限公司。所有試劑均直接使用,未經(jīng)純化處理。

      透析袋(截留分子量Mw=3500),上海晨易生物有限公司;Heal Force SUPER NW型系列超純水儀,力康科技有限公司。

      1.2 環(huán)氧化葡聚糖的合成方法

      按設(shè)定的反應(yīng)條件,將一定量的葡聚糖溶解到0.6mol·L-1的NaOH溶液(含2mg·mL-1NaBH4)中,攪拌下將上述溶液經(jīng)注射泵緩慢加入到過量的BDE溶液中,37℃下攪拌反應(yīng)一定時間。反應(yīng)結(jié)束后,將反應(yīng)混合液轉(zhuǎn)入透析袋中,室溫透析3d,所得透析液經(jīng)冷凍干燥后得到目標(biāo)產(chǎn)物。反應(yīng)式如圖1所示。

      1.3 環(huán)氧化葡聚糖的結(jié)構(gòu)表征

      以重水(D2O)為溶劑,用Mercury VX-300型核磁共振波譜儀在300MHz下對環(huán)氧化葡聚糖進(jìn)行核磁共振氫譜(1HNMR)的測定。

      圖1 葡聚糖的環(huán)氧化反應(yīng)Fig.1 Epoxidation of dextran

      1.4 分析與檢測

      1.4.1 環(huán)氧化葡聚糖分子量及其分布的測定

      采用多角度激光光散射(MALLS)和尺寸排阻色譜(SEC)聯(lián)用分析系統(tǒng)(MALLS-SEC)測定環(huán)氧化葡聚糖的分子量及其分布。其中尺寸排阻色譜使用Waters-2690DHPLC裝備Ultrahydrogel 120和250柱,流動相為PBS緩沖溶液(0.5mol·L-1,pH值8.0),流速為0.6mL·min-1,柱溫為25℃。光散射數(shù)據(jù)由Wyatt DAWN DSP型多角度光散射檢測儀和Waters 2410型示差折光檢測器雙檢測系統(tǒng)獲得。

      1.4.2 環(huán)氧化葡聚糖環(huán)氧取代度的測定

      參照文獻(xiàn)[7]測定產(chǎn)物中環(huán)氧基團(tuán)的含量,進(jìn)而對葡聚糖的環(huán)氧取代度進(jìn)行表征:

      1.4.3 環(huán)氧化葡聚糖在水中穩(wěn)定性的測定

      將樣品配制成0.01mol·L-1的水溶液,4℃靜置,通過檢測環(huán)氧基團(tuán)隨時間的變化情況考察其在水中的穩(wěn)定性。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 環(huán)氧化葡聚糖的結(jié)構(gòu)表征

      原料葡聚糖和產(chǎn)物環(huán)氧化葡聚糖的核磁共振氫譜見圖2。

      圖2 葡聚糖(a)和環(huán)氧化葡聚糖(b)的核磁共振氫譜(D2O為溶劑)Fig.2 1 HNMR Spectra of dextran(a)and epoxy-activated dextran(b)using D2O as solvent

      由圖2可以看出,3.4~4.0ppm處的4個峰(峰a~d)分別對應(yīng)于葡聚糖骨架上的質(zhì)子信號峰;而產(chǎn)物核磁譜圖中的3.2ppm(峰e)、2.8ppm(峰f)、2.6ppm(峰g)與1.5ppm(峰h)處則出現(xiàn)了不同于葡聚糖骨架的特征峰,它們分別歸屬于側(cè)鏈中與氧原子相連的亞甲基側(cè)鏈末端環(huán)氧基團(tuán)中的次甲基與亞甲基以及側(cè)鏈中亞甲基的質(zhì)子信號峰。表明環(huán)氧基團(tuán)被成功地引入到葡聚糖的側(cè)鏈中,并且由于BDE側(cè)鏈的引入使3.4ppm(峰d)處信號峰強(qiáng)度增強(qiáng)。通過計算側(cè)鏈末端環(huán)氧基團(tuán)中的特征信號峰(峰g或f)與葡聚糖骨架單元中特征信號峰(峰a或b)的積分面積比可以得到產(chǎn)物的環(huán)氧取代度。同時,由于交聯(lián)副產(chǎn)物的生成,使得峰h的積分面積增大。通過計算產(chǎn)物中峰h與峰g或f的積分面積比可以得到產(chǎn)物中交聯(lián)產(chǎn)物的比例。結(jié)果發(fā)現(xiàn),該產(chǎn)物中約有25%交聯(lián)副產(chǎn)物,使得側(cè)鏈的有效環(huán)氧化率有所降低。

      2.2 環(huán)氧化葡聚糖的分子量及其分布(表1)

      表1 葡聚糖和環(huán)氧化葡聚糖的分子量及其分布Tab.1 Molecular weight and its distribution of dextran and epoxy-activated dextran

      由表1可以看出,由于側(cè)鏈基團(tuán)的引入,產(chǎn)物環(huán)氧化葡聚糖的分子量相對于原料葡聚糖而言有所增加,分子量分布寬度也有所變大;且對應(yīng)的GPC淋出曲線均呈單峰分布(圖略),證明所得產(chǎn)物中沒有產(chǎn)生大的交聯(lián)物。

      2.3 反應(yīng)條件對環(huán)氧取代度的影響

      2.3.1 投料比(Dex與BDE的摩爾比,下同)對環(huán)氧取代度的影響

      在堿性條件下,醇羥基引發(fā)BDE上的環(huán)氧基團(tuán)發(fā)生開環(huán)反應(yīng);再將活性環(huán)氧基團(tuán)引入到葡聚糖的側(cè)鏈中,得到環(huán)氧化葡聚糖。通過采用過量BDE的方法,減少交聯(lián)葡聚糖副產(chǎn)物的生成。

      在37℃、不同pH值條件下反應(yīng)4h得到的環(huán)氧化葡聚糖的環(huán)氧取代度隨投料比的變化見圖3。

      圖3 不同pH值條件下,投料比對環(huán)氧取代度的影響Fig.3 Effect of molar ratio of Dex to BDE on epoxy degree at different pH values

      由圖3可以看出,隨著BDE用量的增加,產(chǎn)物的環(huán)氧取代度明顯升高。這是因為,BDE兩端各帶有一個環(huán)氧基團(tuán),為保證葡聚糖側(cè)鏈上引入環(huán)氧基團(tuán),BDE上只能有一端環(huán)氧基團(tuán)參加反應(yīng),因此,BDE的用量要過量。當(dāng)BDE用量較少時,兩端環(huán)氧基團(tuán)均參加反應(yīng)的幾率增大,從而使交聯(lián)副產(chǎn)物的比例提高,環(huán)氧化目標(biāo)產(chǎn)物的量相應(yīng)減少;增加BDE用量,反應(yīng)體系中環(huán)氧基團(tuán)過量程度提高,交聯(lián)反應(yīng)的幾率就會減小,環(huán)氧取代度相應(yīng)升高。因此,通過增加BDE的用量,可以有效提高產(chǎn)物的環(huán)氧取代度,降低交聯(lián)幾率。綜合考慮,確定適宜的投料比n(Dex)∶n(BDE)為1∶30。

      2.3.2 pH值對環(huán)氧取代度的影響

      在37℃、投料比n(Dex)∶n(BDE)=1∶30的條件下,反應(yīng)4h得到的環(huán)氧化葡聚糖的環(huán)氧取代度隨pH值的變化見圖4。

      圖4 pH值對環(huán)氧取代度的影響Fig.4 Effect of pH value on epoxy degree

      由圖4可以看出,環(huán)氧取代度隨pH值的增大先升高后降低;在pH值為12.6~12.7時,環(huán)氧取代度達(dá)到最高。這是因為,增大pH值,有利于誘導(dǎo)環(huán)氧基的開環(huán),與葡聚糖的反應(yīng)變得容易,環(huán)氧取代度相應(yīng)升高;但進(jìn)一步增大pH值,可使剩余的環(huán)氧基團(tuán)相繼開環(huán),甚至可進(jìn)一步誘導(dǎo)葡聚糖間的交聯(lián),反而導(dǎo)致環(huán)氧取代度降低。因此,確定適宜的pH值為12.6。

      2.3.3 反應(yīng)時間對環(huán)氧取代度的影響

      在37℃、n(Dex)∶n(BDE)=1∶30、pH值為12.6的條件下,反應(yīng)不同時間(2~48h)得到的環(huán)氧化葡聚糖的環(huán)氧取代度見圖5。

      圖5 反應(yīng)時間對環(huán)氧取代度的影響Fig.5 Effect of reaction time on epoxy degree

      由圖5可以看出,環(huán)氧取代度隨反應(yīng)時間的延長先升高后降低;在反應(yīng)12h時,環(huán)氧取代度達(dá)到最高;12h以后,由于反應(yīng)基本完成,隨反應(yīng)時間的繼續(xù)延長,產(chǎn)物側(cè)鏈中的環(huán)氧基團(tuán)發(fā)生進(jìn)一步開環(huán)反應(yīng),使交聯(lián)反應(yīng)的幾率增大,從而導(dǎo)致環(huán)氧化目標(biāo)產(chǎn)物不斷減少,環(huán)氧取代度相應(yīng)降低。因此,確定適宜的反應(yīng)時間為12h。

      2.4 環(huán)氧化葡聚糖在水中的穩(wěn)定性(圖6)

      圖6 環(huán)氧化葡聚糖在4℃水中的穩(wěn)定性Fig.6 The stability of epoxy-activated dextran in water at 4℃

      由圖6可以看出,30d內(nèi)環(huán)氧化葡聚糖中環(huán)氧基團(tuán)的含量基本保持不變,說明低溫下(4℃)環(huán)氧化葡聚糖在水中的穩(wěn)定性良好。

      3 結(jié)論

      以葡聚糖(Dex)為原料、1,4-丁二醇二縮水甘油醚(BDE)為環(huán)氧化試劑,在堿性條件下,通過BDE的開環(huán)反應(yīng)得到環(huán)氧基團(tuán)修飾的環(huán)氧化葡聚糖,并且通過改變反應(yīng)條件可得到取代度可控、穩(wěn)定的環(huán)氧化葡聚糖,在37℃、投料比n(Dex)∶n(BDE)=1∶30、pH=12.6、反應(yīng)時間為12h的條件下,環(huán)氧取代度高達(dá)16%,且4℃的低溫下環(huán)氧化葡聚糖在水中的穩(wěn)定性良好。

      [1]羅成果.改性葡聚糖和蛋白質(zhì)作為高分子功能材料的研究[D].鄭州:鄭州大學(xué),2006.

      [2]Torres P,Batista-Viera F.Immobilization of β-galactosidase from Bacillus circulans onto epoxy-activated acrylic supports[J].Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic,2012,74(3-4):230-235.

      [3]Torres P,Batista-Viera F.Improved biocatalysts based on Bacillus circulansβ-galactosidase immobilized onto epoxy-activated acrylic supports:Applications in whey processing[J].Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic,2012,83:57-64.

      [4]Assem E,Tania Y,Ibrahim S,et al.A one step separation of immunoglobulin G from bovine serum by pseudobioaffinity chromatography on histidine grafted to epoxy activated sepharose[J].Biotechnology and Bioprocess Engineering,2012,17(3):584-590.

      [5]Gómez S A,Alcalde M,Yates M,et al.Immobilization of dextransucrase from Leuconostoc mesenteroides NRRL B-512Fon Eupergit C supports[J].Biotechnol Prog,2004,20(5):1414-1420.

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      [7]Sundberg L,Porath J.Preparation of adsorbents for biospecific affinity chromatography:I.Attachment of group-containing ligands to insoluble polymers by means of bifunctional oxiranes[J].Journal of Chromatography,1974,90(1):87-98.

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