黃 典,陳 莉,邵宗澤,孫風(fēng)琴,張少博,林 達(dá),張鼎楠,喻子牛,張吉斌
(1.華中農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)業(yè)微生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院 微生物農(nóng)藥國(guó)家工程研究中心,湖北 武漢430070;2.國(guó)家海洋局第三海洋研究所 海洋生物遺傳資源重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福建 廈門361005)
細(xì)菌病害是一類重要的植物病害,每年都造成重大的農(nóng)作物產(chǎn)量和經(jīng)濟(jì)損失。目前,防治植物細(xì)菌病害主要以化學(xué)防治為主、生物防治為輔,但由于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)過程中化學(xué)農(nóng)藥的過量使用,其產(chǎn)生的各種問題諸如對(duì)環(huán)境、人類健康和非靶標(biāo)生物的危害等,使得化學(xué)防治受到很大的限制[1,2]。因此,植物細(xì)菌病害的生物防治越來越受到人們的關(guān)注[3-6]。目前國(guó)內(nèi)外主要利用陸地微生物來進(jìn)行植物細(xì)菌病害的防治工作,利用海洋微生物的相關(guān)報(bào)道不多。
研究者從深海分離得到一株枝芽胞桿菌(Virgibacillus dokdonensis)A493,其產(chǎn)生的新活性物質(zhì)Z11經(jīng)初步鑒定為新型的氨基糖苷類化合物,對(duì)植物細(xì)菌水稻黃單胞菌有較強(qiáng)拮抗效果。作者在此以水稻黃單胞菌(Xanthomonas oryzae pv.oryzae)為研究對(duì)象,研究新活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌生理、生化方面的影響,了解其抗菌機(jī)理,擬為生物農(nóng)藥的開發(fā)奠定理論基礎(chǔ)。
水稻黃單胞菌,由華中農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)業(yè)微生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室菌種保藏中心(CCAM)提供;深海枝芽胞桿菌A493(MCCC1A00493),由國(guó)家海洋局第三海洋研究所海洋生物遺傳資源重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室邵宗澤研究員鑒定并提供。
海洋細(xì)菌培養(yǎng)基(2216E):蛋白胨10g,酵母粉5g,牛肉浸粉1g,乙酸鈉1g,硝酸銨0.2g,檸檬酸鈉0.5g,檸檬酸鐵0.1g,人工海水定容至1L,終pH=7.6±0.2。
人工海水配方:氯化鈉19.45g,氯化鎂0.75g,硫酸鎂0.75g,氯化鈣1g,氯化鉀0.55g,碳酸氫鈉0.16g,溴化鉀0.08g,氯化鍶34mg,硼酸22mg,硅酸鈉4mg,氟化鈉2.4mg,磷酸氫二鈉8mg,氯化錳0.5mg,硫酸銅0.5mg,硫酸鋅10mg,純水定容至1L。
水稻黃單胞菌培養(yǎng)基(協(xié)本氏培養(yǎng)基PSA):馬鈴薯300g,蔗糖15g,十二水合磷酸氫二鈉2g,四水合硝酸鈣0.5g,蛋白胨5.0g,蒸餾水1L。相應(yīng)固體培養(yǎng)基按1.5%~2.5%瓊脂粉配制。
高速離心機(jī),超凈工作臺(tái),恒溫?fù)u床,冷凍離心機(jī),超聲破碎儀,紫外分光光度計(jì),DU730型核酸蛋白分析儀,DDS-801A型電導(dǎo)儀,Waters高效液相色譜儀,C18色譜柱(4.6mm×250mm),50μL進(jìn)樣針。
1.4.1 活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌生長(zhǎng)的影響
取處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的水稻黃單胞菌細(xì)胞,按1%接種量接種于5mL PA瓶中,設(shè)置7個(gè)濃度梯度,分別加入活性物質(zhì)Z11 0μL、5μL、10μL、20μL、40μL、80μL、160μL,終濃度(μg·mL-1)分別為0、14、28、56、112、224、448;于28℃、180r·min-1恒溫振蕩培養(yǎng)24h;再于4℃、8000r·min-1離心30min,收集沉淀;用生理鹽水洗滌3次后,離心,將沉淀用等體積生理鹽水懸浮,測(cè)定其OD600值。檢測(cè)不同濃度活性物質(zhì)Z11作用下的水稻黃單胞菌生長(zhǎng)情況。
1.4.2 活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌蛋白質(zhì)合成的影響
取處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的水稻黃單胞菌細(xì)胞,按1%接種量接種于5mL PA瓶中,設(shè)置5個(gè)濃度梯度,分別加入活性物質(zhì)Z11 0μL、5μL、10μL、20μL、40 μL,終濃度(μg·mL-1)分別為0、14、28、56、112;于28℃、180r·min-1恒溫振蕩培養(yǎng)24h;再于4℃、8000r·min-1離心30min,收集沉淀;用生理鹽水洗滌3次后,離心,將沉淀用等體積生理鹽水懸浮,測(cè)定其OD600值;取1.5mL菌懸液經(jīng)冰浴超聲波(300W)破碎菌體(3min,每次3s,間隔3s),于3000r·min-1離心30min;取上清液在核酸蛋白分析儀上測(cè)定280nm和260nm處的吸光度。按下式計(jì)算蛋白質(zhì)濃度:
蛋白質(zhì)濃度(mg·mL-1)=1.45OD280-0.74OD260(1)
1.4.3 活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌細(xì)胞膜通透性的影響
取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞培養(yǎng)液2mL,于8000r·min-1、4℃離心30min,收集沉淀,用ddH2O洗滌沉淀3次,再用0.9%NaCl懸浮至5mL,分別加入活性物質(zhì)Z11 0μL、5μL、10μL、20μL,終濃度(μg·mL-1)分別為0、14、28、56,充分搖勻,作用0min、30min、60 min、90min、120min、150min后測(cè)定其電導(dǎo)率。
1.4.4 活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌細(xì)胞壁合成關(guān)鍵酶的影響
以尿苷三磷酸(UTP)和N-乙酰葡糖胺-1-磷酸(GlcNAc-1-P)為反應(yīng)底物,在水稻黃單胞菌細(xì)胞壁合成關(guān)鍵酶N-乙酰葡糖胺-1-磷酸尿苷酰轉(zhuǎn)移酶(GlmU)的催化作用下生成尿苷二磷酸-N-乙酰葡糖胺(UDP-GlcNAc),通過HPLC檢測(cè)活性物質(zhì)Z11加入前后反應(yīng)的產(chǎn)物量即可計(jì)算酶活抑制率,以反映活性物質(zhì)Z11對(duì)GlmU酶的抑制效果。
反應(yīng)體系:15μL Buffer(50mmol·L-1Tris-HCl、10mmol·L-1MgCl2、1mmol·L-1DTT)、10μL 2mmol·L-1UTP和10μL 2mmol·L-1GlcNAc-1-P作為反應(yīng)底物、2μL活性物質(zhì)Z11作為抑制劑、5μL GlmU酶最后加入。在37℃反應(yīng)10min后,于沸水中煮10min終止反應(yīng);然后于12 000r·min-1離心5min;反應(yīng)混合物以20mmol·L-1、pH值為5.0的三乙胺醋酸(TEAA)+0.35%甲醇為流動(dòng)相,流速1mL·min-1,室溫下分離底物和產(chǎn)物,檢測(cè)波長(zhǎng)為254nm,進(jìn)樣量為20μL。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,記錄HPLC譜圖中產(chǎn)物峰面積,按下式計(jì)算酶活抑制率:
式中:S0、S1分別為加入活性物質(zhì)Z11前后產(chǎn)物的峰面積。
表1 活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌生長(zhǎng)的影響Tab.1 The effect of active substance Z11on growth of X.oryzae pv.oryzae
由表1可看出,在不同濃度活性物質(zhì)Z11作用下,菌體OD600值之間存在顯著差異,說明活性物質(zhì)Z11能夠顯著影響水稻黃單胞菌的生長(zhǎng)。一定濃度范圍內(nèi),隨著活性物質(zhì)Z11濃度的增大,OD600值減小,菌體濃度降低,菌體生長(zhǎng)受到抑制;當(dāng)活性物質(zhì)Z11濃度達(dá)到56μg·mL-1之后,可以直接殺死水稻黃單胞菌。
表2 活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌蛋白質(zhì)合成的影響Tab.2 The effect of active substance Z11on protein synthesis of X.oryzae pv.oryzae
由表2可看出,在不同濃度活性物質(zhì)Z11作用下,菌體蛋白質(zhì)濃度之間存在顯著差異,說明活性物質(zhì)Z11能夠影響水稻黃單胞菌蛋白質(zhì)的合成。在抑制菌體生長(zhǎng)的濃度范圍內(nèi),隨著活性物質(zhì)Z11濃度的增大,蛋白質(zhì)濃度不斷減小,當(dāng)活性物質(zhì)Z11濃度超過56μg·mL-1后,蛋白質(zhì)的合成幾乎停止。
表3 活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌細(xì)胞膜通透性的影響Tab.3 The effect of active substance Z11on cell membrane permeability of X.oryzae pv.oryzae
由表3可知,在不同濃度活性物質(zhì)Z11作用下,隨著處理時(shí)間的延長(zhǎng),電導(dǎo)率的變化趨勢(shì)一致,菌體電導(dǎo)率值之間沒有顯著性差異。說明活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌細(xì)胞膜通透性沒有影響。
催化反應(yīng)底物和產(chǎn)物的高效液相色譜見圖1。
圖1 催化反應(yīng)底物和產(chǎn)物的高效液相色譜Fig.1 The HPLC spectrum of substrate and product in the catalytic reaction
由圖1數(shù)據(jù)計(jì)算,加入活性物質(zhì)Z11前后產(chǎn)物的峰面積分別為928386.7±32046.7、744613.3±34679.1,活性物質(zhì)Z11對(duì)GlmU酶的抑制率為(19.74±3.55)%。表明活性物質(zhì)Z11對(duì)GlmU酶存在一定抑制效果,GlmU酶蛋白可能為潛在靶標(biāo)之一。
深海枝芽胞桿菌A493所產(chǎn)抗菌活性物質(zhì)Z11為一種新型的氨基糖苷類活性物質(zhì),前期研究顯示活性物質(zhì)Z11耐酸堿、耐高溫、性質(zhì)穩(wěn)定、抗菌譜窄,推測(cè)其抗菌機(jī)理具有特異性,本研究結(jié)果顯示新活性物質(zhì)Z11并不改變病原菌細(xì)胞膜的通透性能,但是能夠明顯影響病原菌蛋白質(zhì)的合成,可能在病原菌核糖體內(nèi)存在其相應(yīng)的作用靶標(biāo)。
肽聚糖是細(xì)菌細(xì)胞壁的主要組成部分,如果肽聚糖的生物合成受阻,細(xì)菌細(xì)胞壁的合成必定會(huì)受到影響。UDP-GlcNAc作為肽聚糖和脂多糖生物合成的一種必需的細(xì)胞質(zhì)前體[7-9],是細(xì)菌細(xì)胞壁合成所必需的。GlmU酶具有乙酰基轉(zhuǎn)移酶活性和尿嘧啶轉(zhuǎn)移酶活性,是UDP-GlcNAc生物合成途徑中的關(guān)鍵酶,GlmU酶受到抑制將直接導(dǎo)致細(xì)菌細(xì)胞壁合成受阻而死亡[10],HPLC法測(cè)定水稻黃單胞菌GlmU酶活性是根據(jù)核苷酸糖類在254nm處有特征吸收峰,而且不同的核苷酸糖在以三乙胺醋酸為流動(dòng)相時(shí)的保留時(shí)間不同而成功分離底物GlcNAc-1-P、UTP以及產(chǎn)物UDPGlcNAc[11],為水稻黃單胞菌中潛在靶標(biāo)蛋白的尋找和驗(yàn)證提供了一種準(zhǔn)確、簡(jiǎn)單、可行的方法。
以一株抗菌譜窄的深海枝芽胞桿菌(Virgibacillus dokdonensis)A493為研究對(duì)象,對(duì)其產(chǎn)生的新的氨基糖苷類抗菌活性物質(zhì)Z11抑制水稻黃單胞菌的濃度范圍和抗菌作用機(jī)理進(jìn)行了研究。結(jié)果表明:Z11抑制水稻黃單胞菌的濃度范圍為14~56μg·mL-1;活性物質(zhì)Z11不改變水稻黃單胞菌細(xì)胞膜通透性,但能影響其蛋白質(zhì)的合成和細(xì)胞壁合成關(guān)鍵酶N-乙酰葡糖胺-1-磷酸尿苷酰轉(zhuǎn)移酶(GlmU)的活性,從而影響其細(xì)胞壁的合成及其完整性。研究結(jié)果說明活性物質(zhì)Z11對(duì)水稻黃單胞菌的作用機(jī)制是多方面的,但是,明確其抗菌分子機(jī)制還需要進(jìn)一步深入研究。
[1]Fininsa C.Relationship between common bacterial blight severity and bean yield loss in pure stand and bean-maize intercropping systems[J].International Journal of Pest Management,2003,49(3):177-185.
[2]Oerke E C,Dehne H W.Safeguarding production——Losses in major crops and the role of crop protection[J].Crop Protection,2004,23(4):275-285.
[3]EI-Tarabily K A,Soliman M H,Nassar A H,et al.Biological con-trol of Sclerotinia minor using a chitinolytic bacterium and actinomycetes[J].Plant Pathology,2000,49(5):573-583.
[4]黃維真,方金瑞.福建沿海底棲放線菌及其產(chǎn)生的抗菌物質(zhì)[J].中國(guó)海洋藥物,1991,10(3):1-6.
[5]田黎,顧振芳,陳杰,等.海洋細(xì)菌B-9987菌株產(chǎn)生的抑菌物質(zhì)及對(duì)幾種植物病原真菌的作用[J].植物病理學(xué)報(bào),2003,33(1):77-80.
[6]Ji G H,Wei L F,He Y Q,et al.Biological control of rice bacterial blight by Lysobacter antibioticus strain 13-1[J].Biological Control,2008,45(3):288-296.
[7]Zhang W,Jones V C,Scherman M S,et al.Expression,essentiality,and a microtiter plate assay for mycobacterial GlmU,the bifunctional glucosamine-1-phosphate acetyltransferase and Nacetylglucosamine-1-phosphate uridyltransferase[J].International Journal of Biochemistry & Cell Biology,2008,40(11):2560-2571.
[8]Pereira M P,Blanchard J E,Murphy C,et al.High-throughput screening identifies novel inhibitors of the acetyltransferase activity of Escherichia coli GlmU[J].Antimicrobial Agents and Chemotherapy,2009,53(6):2306-2311.
[9]Gehring A M,Lees W J,Mindiola D J,et al.Acetyltransfer precedes uridyltransfer in the formation of UDP-N-acetylglucosamine in separable active sites of the bifunctional GlmU protein of Escherichia coli[J].Biochemistry,1996,35(2):579-585.
[10]R bin J,M ki M,Savilahti E M,et al.Analysis of nucleotide sugars from cell lysates by ion-pair solid-phase extraction and reversed-phase high-performance liquid chromatography[J].Glycoconjugate Journal,2001,18(10):799-805.
[11]Barreteau H,Kovac A,Boniface A,et al.Cytoplasmic steps of peptidoglycan biosynthesis[J].FEMS Microbiology Reviews,2008,32(2):168-207.