郭志坤 郭建昇 苗晉陽(yáng)
山西醫(yī)科大學(xué)第一醫(yī)院普通外科,山西太原 030001
門脈高壓(PHT)是肝硬化導(dǎo)致的最常見(jiàn)也是最復(fù)雜的癥狀之一,同時(shí)也是肝硬化導(dǎo)致死亡的最主要原因。許多臨床和實(shí)驗(yàn)室數(shù)據(jù)表明酒精、非甾體類抗炎藥物、缺血再灌注、胃黏膜損傷與修復(fù)都增加了胃黏膜損傷的敏感性[1-2]?,F(xiàn)在人們已經(jīng)逐漸接受了PHT導(dǎo)致局部血液量增加、外周血液循環(huán)抵抗降低而導(dǎo)致心輸出量增加,因而被稱之為高動(dòng)力循環(huán)的觀點(diǎn)[3-5]。胃黏膜的機(jī)能障礙被認(rèn)為與PHT有關(guān),而這些機(jī)能障礙被稱為門脈高壓性胃病。然而具體的失代償機(jī)理現(xiàn)在仍不清楚。
1.1.1 試劑 兔抗鼠COX-1單克隆抗體;兔抗鼠COX-2單克隆抗體;兔抗鼠Fas-L單克隆抗體;山羊抗小鼠LgG;5%BSA封閉液;SABC。以上試劑均購(gòu)自武漢博士德生物工程有限公司。
1.1.2 動(dòng)物及分組 雄性SD大鼠20只,體重220~250 g(山西醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供)。隨機(jī)分為兩組。實(shí)驗(yàn)組:半結(jié)扎門靜脈及左腎靜脈組;對(duì)照組:?jiǎn)渭儽┞队坞x門靜脈組。
1.2.1 建立門靜脈高壓大鼠模型 大鼠于術(shù)前12 h禁食,術(shù)前8 h禁飲。3%戊巴比妥鈉針腹腔注射麻醉(0.1 mL/100 g BW)。實(shí)驗(yàn)組大鼠開(kāi)腹后游離暴露門靜脈主干后用7號(hào)鈍性針頭平行放置于門靜脈干,用3-0絲線結(jié)扎后將鈍性針頭抽出,待門靜脈結(jié)扎處部分充盈后輕輕結(jié)扎。然后暴露左腎上腺靜脈然后結(jié)扎。
1.2.2 大鼠門靜脈壓力測(cè)量 于術(shù)后兩周將所有大鼠麻醉后開(kāi)腹,實(shí)驗(yàn)組大鼠用20號(hào)套管針穿刺腸系膜上靜脈近端,退出針芯并將套管送入門靜脈結(jié)扎遠(yuǎn)端,該處測(cè)得壓力作為門靜脈壓;對(duì)照組則將套管針直接插入門靜脈處測(cè)壓,另一端接壓力傳感器(型號(hào)TSD104A),傳感器將收集的壓力信號(hào)轉(zhuǎn)化為數(shù)字信號(hào)后輸入計(jì)算機(jī),采用MP2100型多道生理記錄儀測(cè)定門靜脈壓力。
1.2.3 大鼠胃組織中COX-1、COX-2、Fas-L的表達(dá) 門靜脈半結(jié)扎兩周后處死大鼠,收集胃組織,甲醛固定,脫水,石蠟包埋,切片。用免疫組織化學(xué)的方法檢測(cè)大鼠胃組織中COX-1、COX-2、Fas-L的表達(dá)情況。應(yīng)用MIAS-2000型醫(yī)學(xué)圖像彩色分析系統(tǒng)測(cè)定胃組織中COX-1、COX-2、Fas-L的平均面積密度值,每張切片隨機(jī)選取5個(gè)視野,取其均值轉(zhuǎn)化為陽(yáng)性單位。
所有數(shù)據(jù)均采用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件處理。計(jì)量資料數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,比較采用t檢驗(yàn),計(jì)數(shù)資料采用百分率表示,組間對(duì)比采用χ2檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
門靜脈半結(jié)扎兩周后,實(shí)驗(yàn)組大鼠門靜脈的壓力為(28.25±2.89)cm H2O(1 cm H2O=0.098 kPa),對(duì)照組大鼠門靜脈壓力為(13.07±2.74)cm H2O,實(shí)驗(yàn)組壓力明顯高于對(duì)照組(P<0.05)。
胃組織中COX-1陽(yáng)性表達(dá)于黏膜層,可見(jiàn)黃色產(chǎn)物,陽(yáng)性細(xì)胞為胞漿內(nèi)可見(jiàn)棕黃色顆粒,實(shí)驗(yàn)組COX-1表達(dá)強(qiáng)度較對(duì)照組明顯減弱。胃組織中COX-2陽(yáng)性表達(dá)于黏膜層,可見(jiàn)黃色產(chǎn)物,陽(yáng)性細(xì)胞為胞漿內(nèi)可見(jiàn)棕黃色顆粒,實(shí)驗(yàn)組COX-2表達(dá)強(qiáng)度較對(duì)照組無(wú)明顯差別。胃組織中Fas-L陽(yáng)性表達(dá)于黏膜層,可見(jiàn)棕黃色產(chǎn)物,陽(yáng)性細(xì)胞為胞漿內(nèi)可見(jiàn)棕黃色顆粒,實(shí)驗(yàn)組Fas-L表達(dá)強(qiáng)度較對(duì)照組明顯增強(qiáng)。見(jiàn)表1。
表1 胃組織中COX-1、COX-2、Fas-L的表達(dá)(±s)
表1 胃組織中COX-1、COX-2、Fas-L的表達(dá)(±s)
注:對(duì)照組比較,*P<0.05
組別 例數(shù) COX-1 COX-2 Fas-L對(duì)照組實(shí)驗(yàn)組10 10 6.450±0.641 2.470±0.674*1.390±0.579 1.220±0.773 4.960±0.731 15.680±0.339*
目前在認(rèn)識(shí)PHT的過(guò)程中,前列腺素類(PGs)在其中所起的作用仍比較有爭(zhēng)議。在人體試驗(yàn)中胃黏膜中的前列腺素水平顯示出增加,降低,或并無(wú)差異,但動(dòng)物試驗(yàn)中胃黏膜中前列腺素水平顯示降低[6-8]。但無(wú)論是在動(dòng)物模型還是人體試驗(yàn)中運(yùn)用前列腺素抑制劑后,胃黏膜均呈現(xiàn)不同程度的損害。環(huán)氧合酶(COX)是花生四烯酸合成前列腺素和血栓素中的關(guān)鍵酶。目前至少存在3種環(huán)氧化酶。COX-1主要存在于胃腸道以及大多數(shù)組織中,COX-2更容易在炎癥部位表達(dá),而COX-3則是新一代抗炎鎮(zhèn)痛藥物的重要代表[9-10]。COX-1和COX-2在不同組織細(xì)胞中的作用有所不同,而對(duì)同一細(xì)胞在不同條件下其作用也不相同。COX-1與COX-2是否參與了門脈高壓性胃病形成過(guò)程以及其形成的機(jī)理目前并不清楚。
通過(guò)本試驗(yàn)筆者證明了兩步結(jié)扎法可以明顯的使大鼠門靜脈壓力增高,且可誘導(dǎo)內(nèi)臟血管阻塞和腸系膜靜脈擴(kuò)張。此外筆者發(fā)現(xiàn)門靜脈高壓大鼠模型中胃黏膜中COX-1表達(dá)降低而COX-2的表達(dá)并無(wú)明顯異常,同時(shí)細(xì)胞凋亡因子Fas-L的表達(dá)水平明顯增加。
TNF受體家族中凋亡因子Fas配體Fas-L除主要在活化的T淋巴細(xì)胞和自然殺傷細(xì)胞中表達(dá)外還出現(xiàn)在免疫豁免的部位。Fas作為細(xì)胞膜抗原主要介導(dǎo)細(xì)胞凋亡,具有抵抗Bcl-2蛋白抑制細(xì)胞凋亡的作用。Suda等人克隆了Fas抗原配體(Fas-L),已產(chǎn)生出Fas-L單克隆抗體,發(fā)現(xiàn)Fas-L同樣有促進(jìn)細(xì)胞凋亡的作用。
由于COX-1和COX-2的不同表達(dá)方式導(dǎo)致了其不同的病理生理作用。目前認(rèn)為COX-1源性酶催化生成的PGs參與了穩(wěn)態(tài)反應(yīng),而COX-2源性酶催化生成的COX-2則參與了炎性以及癌變的病理過(guò)程。胃部的PG合成主要為COX-1源性。但是最近的研究發(fā)現(xiàn)COX-2源性PG在某種條件下可以參與胃黏膜的保護(hù)作用[11]。通過(guò)本研究發(fā)現(xiàn)PHT明顯的抑制了COX-1在胃黏膜中的表達(dá),但是并沒(méi)有抑制COX-2的表達(dá)。試驗(yàn)數(shù)據(jù)表明PHT抑制了COX-1源性PGE2在胃黏膜的產(chǎn)生。而COX-1源性PGE2對(duì)胃黏膜具有保護(hù)作用,但其具體機(jī)制目前還不清楚。COX-2源性PGs被認(rèn)為參與局部炎癥反應(yīng),目前已被廣泛接受,本實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)表明門脈高壓并沒(méi)有造成明顯的胃黏膜炎性反應(yīng)。在胃組織中由于COX-1分布的特異性,也可能大量的COX-1源性PGE2的表達(dá)掩蓋了COX-2源性PGs的作用。
總的來(lái)說(shuō),F(xiàn)as-L的高表達(dá)說(shuō)明門脈高壓性胃腸病的形成過(guò)程中胃黏膜細(xì)胞的增殖作用減弱,同時(shí)存在促凋亡作用增強(qiáng)。由COX-1源性PGE2表達(dá)的降低導(dǎo)致胃黏膜防護(hù)機(jī)制減弱,也可能通過(guò)促進(jìn)胃黏膜細(xì)胞凋亡及PGE2分泌紊亂引起的局部血管舒縮活性異常及體液調(diào)節(jié)失調(diào)后共同作用引起的內(nèi)臟血管高動(dòng)力實(shí)現(xiàn)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,門脈高壓導(dǎo)致COX-1局部胃黏膜低表達(dá)可能通過(guò)凋亡途徑參與了門脈高壓胃病的形成過(guò)程,其具體機(jī)制目前還不清楚。而COX-2表達(dá)無(wú)差異表明炎癥反應(yīng)可能并沒(méi)有參與門脈高壓的形成過(guò)程,或者在其形成過(guò)程中不起主要作用。
[1]Kinjo N,Kawanaka H,Akahoshi T,et al.Significance of ERK nitration in portal hypertensive gastropathy and its therapeutic implications[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2008,295:1016-1024.
[2]Kawanaka H,Tomikawa M,Jones MK,et al.Portal hypertensive gastric mucosa has reduced activation of MAP kinase(ERK2)in response to alcohol injury:a key to impaired healing?[J].FASEB J,2000,15:574-576.
[3]Pateron D,Tazi KA,Sogni P,et al.Role of aortic nitric oxidesynthase 3(eNOS)in the systemic vasodilation of portal hypertension[J].Gastroenterology,2000,119:196-200.
[4]Yokoyama Y,Baveja R,Sonin N,et al.Hepatic neovascularization after partial portal vein ligation:novel mechanism of chronic regulation of blood flow[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2001,280:21-31.
[5]Yokoyama Y,Wawrzyniak A,Baveja R,et al.Altered endothelin receptor expression in prehepatic portal hypertension predisposes the liver to microcirculatory dysfunction in rats[J].J Hepatol,2001,35:29-36.
[6]Wallace JL.Prostaglandins,NSAIDs,and gastric mucosal protection:why doesn′t the stomach digest itself[J].Physiol Rev,2008,88:1547-1565.
[7]Camara PR,F(xiàn)erraz GJ,F(xiàn)ranco CF,et al.Ablation of primary afferent neurons by neonatal capsaicin treatment reduces the susceptibility of the portal hypertensive gastric mucosa to ethanol-induced injury in cirrhotic rats[J].Eur J Pharmacol,2008,589:245-250.
[8]Skill NJ,Theodorakis NG,Wang YN,et al.Role of cyclooxygenase isoforms in prostacyclin biosynthesis and murine prehepatic portal hypertension[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2008,295:953-964.
[9]Chandrasekharan NV,Dai H,Roos KL,et al.COX-3,a cyclooxygenase-1 variant inhibited by acetaminophen and otheranalgesic/antipyretic drugs:cloning,structure,and expression[J].Proc Natl Acad Sci USA,2002,99:13926-13931.
[10]Schwab JM,Beiter T,Linder JU,et al.COX-3-a virtual paintarget in humans[J].FASEB J,2003,17:2174-2175.
[11]Wallace JL,McKnight W,Reuter BK,et al.NSAID inducedgastric damage in rats:requirement for inhibitionof both cyclooxygenase 1 and 2[J].Gastroenterology,2000,119:706-714.