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      芽孢桿菌生長(zhǎng)特性的研究

      2012-07-28 05:43:10王晨波
      化學(xué)與生物工程 2012年8期
      關(guān)鍵詞:耐受性活度檸檬酸

      王晨波

      (雀巢研發(fā)中心上海有限公司,上海 200080)

      芽孢桿菌是一種常見(jiàn)的導(dǎo)致食源性疾病的菌種[1],當(dāng)生存條件惡劣時(shí),它們能以孢子的形態(tài)繼續(xù)存活,因而一般的食品清潔加工手段很難將其完全清除,尤其是蠟樣芽孢桿菌(Bacilluscereus)[2]。

      芽孢桿菌能夠在食物中產(chǎn)生嘔吐毒素(Cereulide),該毒素非常穩(wěn)定,對(duì)于酸、堿(pH值2~11穩(wěn)定)和熱(121 ℃,30 min穩(wěn)定)都具有極高的耐受性。當(dāng)人體感染了大量的芽孢桿菌時(shí),它們會(huì)在小腸內(nèi)產(chǎn)生腸毒素從而導(dǎo)致人體發(fā)生嘔吐和腹瀉的癥狀[3~5]。調(diào)查發(fā)現(xiàn),引起食物中毒的事件中,芽孢桿菌的數(shù)量均達(dá)到了106~109CFU·mL-1,因此,控制芽孢桿菌的生長(zhǎng)繁殖是避免食物中毒的關(guān)鍵[6]。

      雖然已經(jīng)有不少文獻(xiàn)就芽孢桿菌的特性及其生存條件作出了指導(dǎo)性的界定[7],但均集中在對(duì)蠟樣芽孢桿菌特性的了解、分析和應(yīng)用上,很少涉及其它芽孢桿菌的菌種。而真正應(yīng)用于食品安全分析的菌種卻是毒性相對(duì)較小的菌種,如枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)、巨大芽孢桿菌(Bacillusmegaterium)和短小芽孢桿菌(Bacilluspumilis)等。因此,作者選取了14株常見(jiàn)芽孢桿菌,在此對(duì)其生存條件進(jìn)行具體分析,擬為進(jìn)一步的應(yīng)用實(shí)驗(yàn)提供指導(dǎo)。

      1 實(shí)驗(yàn)

      1.1 菌株

      14株芽孢桿菌:2株Bacilluscirculans(BC1,BC2),2株Bacillusmegaterium(BM1,BM2),2株Bacillussubtilis(BS1,BS2),1株Bacilluscereus(BAC01),3株Bacilluspumilis(BPU1,BPU2,BPU3),1株Brevibacillusbrevis(BBB1),1株Bacilluscoagulans(BCO1),1株Bacilluslichenformis(BLI1)和1株Bacilluspolymyxa(BPO1)。BC1、BM1和BPU1購(gòu)于中國(guó)工業(yè)微生物菌種保藏管理中心,其余均由Juan L.Silva(Mississippi State University,MS,USA)博士提供。

      1.2 細(xì)菌細(xì)胞的處理

      所有的菌株都在腦心浸出液肉湯(BHI Broth,Difco)中于30 ℃、有氧條件下復(fù)活復(fù)壯[8]。實(shí)驗(yàn)前均須經(jīng)過(guò)24 h的培養(yǎng),然后在離心機(jī)(Sorvall?Biofuge Fresco)1000×g轉(zhuǎn)速(4 ℃,2 min)下用0.85%的鹽水清洗2次。分別在培養(yǎng)0 d、第1 d、第3 d、第7 d和第14 d取樣,使用Tryptic Soy Agar(TSA,Becton Dickinson)平板記錄芽孢桿菌的活菌數(shù)(CFU·mL-1)。

      1.3 低水分活度環(huán)境對(duì)芽孢桿菌抑制作用的研究

      將14株芽孢桿菌用0.85%鹽水離心(1000×g,4 ℃,2 min)清洗2次,然后各取10 μL分別接入5種不同水分活度(AW,0.86、0.87、0.89、0.92、0.94;由固體氯化鈉和甘油調(diào)節(jié)AW)[9]的10 mL BHI培養(yǎng)基中,在0 d、第1 d、第3 d、第7 d和第14 d取樣觀(guān)察芽孢桿菌的生長(zhǎng)情況。

      1.4 低pH值環(huán)境對(duì)“酸適應(yīng)”芽孢桿菌抑制作用的研究

      將14株芽孢桿菌接入10 mL BHI培養(yǎng)基(由1 mol·L-1鹽酸調(diào)pH值至5.0)中,在30 ℃、有氧環(huán)境下培養(yǎng)24 h,即得“酸適應(yīng)”芽孢桿菌。將“酸適應(yīng)”芽孢桿菌用0.85%鹽水離心(1000×g,4 ℃,2 min)清洗2次,然后各取10 μL分別接入5種不同pH值(3.4、3.8、4.0、4.4、4.6;由1 mol·L-1鹽酸調(diào)pH值)[10]的10 mL BHI培養(yǎng)基中,在0 d、第1 d、第3 d、第7 d和第14 d取樣觀(guān)察芽孢桿菌的生長(zhǎng)情況。

      1.5 檸檬酸對(duì)“適應(yīng)”芽孢桿菌抑制作用的研究

      將14株芽孢桿菌接入10 mL BHI培養(yǎng)基(由1 mol·L-1檸檬酸調(diào)pH值至5.0)中,在30 ℃、有氧環(huán)境下培養(yǎng)24 h,即得“適應(yīng)”芽孢桿菌。將“適應(yīng)”芽孢桿菌用0.85%鹽水離心(1000×g,4 ℃,2 min)清洗2次,然后各取10 μL分別接入5種不同pH值(3.4、3.8、4.0、4.4、4.6;由1 mol·L-1檸檬酸調(diào)pH值)的10 mL BHI培養(yǎng)基中,在0 d、第1 d、第3 d、第7 d和第14 d取樣觀(guān)察芽孢桿菌的生長(zhǎng)情況。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 低水分活度環(huán)境對(duì)芽孢桿菌的抑制作用(圖1)

      a~e,AW:0.86,0.87,0.89,0.92,0.94

      由圖1可看出,芽孢桿菌對(duì)于低水分活度環(huán)境的耐受性有限:AW在0.86時(shí),所有的菌株都沒(méi)有生長(zhǎng),BC2和 BM2不能存活;AW在0.87時(shí),BLI1、BC1和BPU1可以生長(zhǎng),BC2、BM2和BAC01不能存活;AW在0.89時(shí),除了BPO1保持菌落數(shù)不變,BC2、BM2和BAC01的菌落數(shù)下降,其余菌株都能有不同速率的生長(zhǎng);AW在0.92時(shí),除了BM2保持菌落數(shù)不變,BC2和BAC01的菌落數(shù)下降,其余菌株都能生長(zhǎng);AW在0.94時(shí),所有菌株都能生長(zhǎng)。

      2.2 低pH值環(huán)境對(duì)“酸適應(yīng)”芽孢桿菌的抑制作用(圖2)

      由圖2可看出,芽孢桿菌對(duì)于低pH值環(huán)境的耐受性有限:pH值<4.0時(shí),所有的菌株都沒(méi)有生長(zhǎng),BC2、BAC01和 BBB1不能存活;pH值為4.4時(shí),BS1、BBB1和BCO1可以生長(zhǎng),BC2和BAC01不能存活;pH值為4.6時(shí),BS1、BS2、BBB1、BCO1、BC1、BM1、BPU1和BPO1可以生長(zhǎng),BC2和BAC01不能存活。

      2.3 檸檬酸對(duì)“適應(yīng)”芽孢桿菌的抑制作用(圖3)

      由圖3可看出,使用檸檬酸來(lái)調(diào)節(jié)pH值,加強(qiáng)了對(duì)芽孢桿菌的抑制效果,對(duì)Bacillusmegaterium的抑制效果尤其明顯:pH值<4.4時(shí),所有的菌株都沒(méi)有生長(zhǎng),BM1、BM2和 BBB1不能存活;pH值為4.6時(shí),BS2可以生長(zhǎng),BM1和BM2不能存活。

      a~e,pH值:3.4,3.8,4.0,4.4,4.6

      a~e,pH值:3.4,3.8,4.0,4.4,4.6

      3 結(jié)論

      將14株芽孢桿菌在不同水分活度和pH值條件下培養(yǎng),結(jié)果發(fā)現(xiàn),14株芽孢桿菌對(duì)低水分活度(<0.86)和低pH值(<4.4)的耐受性均有限,耐受性強(qiáng)弱(依次為):

      (1)對(duì)于水分活度(AW):BLI1>BC1>BPU1>BM1>BS1,BS2,BPU2,BPU3,BBB1>BCO1>BPO1>BM2>BC2,BAC01。

      (2)對(duì)于pH值:BS1,BCO1>BBB1>BS2,BC1,BM1,BPU1,BPO1>BM2,BPU2,BPU3,BLI1>BAC01,BC2。

      (3)對(duì)于檸檬酸:BS2>BC1,BC2,BS1,BAC2,BPU1,BPU2,BPU3,BPO1,BCO1>BLI1>BBB1>BM1,BM2。

      參考文獻(xiàn):

      [1] Lund B M,Baird-Parker T C,Gould G W.The Microbiological Sa-fety and Quality of Food[M].Aspen Publishers,2000:1029-1056.

      [2] Grein T.Outbreak ofBacilluscereusfood poisoning[D].ID Bulletin,Department of Public Health,Dublin,Ireland,2001.

      [3] Taylor J M W,Sutherland A D,Aidoo K E,et al.Heat-stable toxin production by strains ofBacilluscereus,Bacillusfirmus,Bacillusmegaterium,BacillussimplexandBacilluslicheniformis[J].FEMS Microbiology Letters,2005,242(2):313-317.

      [4] Mahler H, Pasi A,Kramer J M,et al.Fulminant liver failure in association with the emetic toxin ofBacilluscereus[J].New England Journal of Medicine,1997,1336(16):1142-1148.

      [5] Doyle M P,Beuchat L R.Food Microbiology:Fundamentals and Frontiers(2nd Ed)[M].ASM Press,2001:373-381.

      [6] Salkinoja-Salonen M S,Vuorio R,Andersson M A,et al.Toxigenic strains ofBacilluslicheniformisrelated to food poisoning[J].Appl Environ Microbiol,1999,65(10):4637-4645.

      [7] Opinion of the scientific panel on biological hazards onBacilluscereusand otherBacillusspp.in foodstuffs[Z].The EFSA Journal,2005,175:1-48.

      [8] Genigeorgis C,Martin S,Franti C E,et al.Initiation ofStaphylococcalgrowth in laboratory media[J].Appl Microbiol,1971,21(5):934-939.

      [9] Raevuori M,Genigeorgis C.Effect of pH and sodium chloride on growth ofBacilluscereusin laboratory media and certain foods[J].Appl Microbiol,1975,29(1):68-73.

      [10] Quintavalla S,Parolari G.Effects of temperature,AWand pH on the growth ofBacilluscells and spores:A response surface methodology study[J].Int J Food Microbiol,1993,19(3):207-216.

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