尹秋丹,張林波,田見暉*
(1.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院生物制藥創(chuàng)新實驗室,吉林 長春130118;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院/農(nóng)業(yè)部動物遺傳育種與繁殖重點實驗室,北京100193)
印記基因是一類具有父母雙方來源的等位基因,但是只表達(dá)其中一方的遺傳信息,而另一方處于沉默狀態(tài)的基因。其中父源表達(dá)、母源沉默的基因稱為母源印記基因,反之則稱為父源印記基因。在哺乳動物基因組中,印記基因成串出現(xiàn)在富含CpG 核苷酸的DNA 序列簇中,這些特殊的區(qū)域,稱為印記控制區(qū)域[1]。目前,哺乳類動物基因組中大約存在100 ~200 個印記基因,在鼠類和人類基因組中已確定的約80 種。印記基因?qū)τ谔旱纳L發(fā)育與行為,特別是胎盤的發(fā)育都極其重要,印記基因的異常表達(dá)會導(dǎo)致許多疾病的發(fā)生[2]。
胎盤是懷孕期間形成的第一個器官,雖然短暫,卻對胎兒發(fā)育起著至關(guān)重要的作用,例如胎兒的新陳代謝和營養(yǎng)控制、氣體和代謝物的交換以及控制內(nèi)分泌。一個功能正常的胎盤是哺乳動物存活與生長的重要保障之一[3]。胎盤是印記基因活動最重要的器官之一,盡管胎盤的形成顯示出不同物種間的差異,但是在真亞綱哺乳動物中,尤其是靈長類、嚙齒類和反芻動物中的基因印記活動是保守的。
印記作用被認(rèn)為是在胚胎發(fā)育時期母體營養(yǎng)資源分配過程中,父源基因組和母源基因組沖突假說理論的應(yīng)答變體。沖突假說,即父源表達(dá)基因促進(jìn)胎盤發(fā)育并為胎兒提供更多營養(yǎng),促進(jìn)胎兒迅速生長,以期獲得強壯個體; 母源表達(dá)基因則是為了自己的終身繁殖能力,限制胎兒生長速度和體重,節(jié)省和平均各胎次的繁殖資源[4]。胎盤是胎兒生長所需營養(yǎng)的主要資源,印記基因通過調(diào)節(jié)胎盤發(fā)育和營養(yǎng)物的轉(zhuǎn)運,就可以影響母體-胎兒資源分配和胎盤對周圍環(huán)境改變的應(yīng)激反應(yīng),以及及時變更子宮內(nèi)養(yǎng)分有效性。同時這些作用影響子宮內(nèi)組織的發(fā)育編程,并與成人以后的一些疾病的發(fā)病率息息相關(guān)[5]。因此,印記基因通過調(diào)節(jié)胎盤生長發(fā)育,從而影響胎兒發(fā)育,具有十分重要的作用。
印記基因的“印記”機(jī)理是印記一方的基因調(diào)控序列DNA(一般認(rèn)為是啟動子) 被甲基化和組蛋白被甲基化,其中DNA 甲基化是關(guān)鍵[6]。DNA 甲基化是已知最早被發(fā)現(xiàn)的與基因抑制相關(guān)的表觀遺傳機(jī)制。在哺乳動物中,它發(fā)生于CpG 二核苷酸。甲基化DNA 在基因組上的分布表明它們集中出現(xiàn)在非編碼區(qū)和散在的重復(fù)元件區(qū)域,是在DNA甲基化酶作用下,將S- 腺苷酞甲硫氨酸(SAM) 分子上的甲基轉(zhuǎn)移到DNA 分子中胞嘧啶殘基的5 位碳原子上。胞嘧啶被甲基化為5-甲基胞苷。此時該等位基因?qū)⒈魂P(guān)閉,不再表達(dá)。另一方等位基因的調(diào)控序列未被甲基化等修飾,在轉(zhuǎn)錄復(fù)合體作用下可以正常進(jìn)行mRNA 轉(zhuǎn)錄。在哺乳動物生命周期中,性原細(xì)胞階段,DNA 分子甲基化被清除。配子階段,重新建立DNA 甲基化。對于非印記基因,隨后出現(xiàn)去甲基化,在受精后父源基因組DNA 去甲基化過程是主動的,母源基因去甲基化過程是被動的[7]?;蛴∮泤^(qū)域甲基化DNA 的存在導(dǎo)致胎盤類哺乳動物中母源或父源等位基因的沉默,包括X染色體失活。這表明在進(jìn)化過程中它們獨有的利用這一表觀遺傳機(jī)制來穩(wěn)定沉默[8]。許多印記基因和印記調(diào)控子鄰近的序列存在有差異甲基化序列和DNA 甲基化修飾,DNA甲基化在基因組印記的維持中所充當(dāng)?shù)闹匾巧谶z傳學(xué)中得到了證明。
印記基因在胎盤中廣泛卻又短暫的表達(dá),但其作用對于正常胎盤發(fā)育是必需的。在嚙齒類動物中,當(dāng)印記基因甲基化的建立受損,這包括與其相關(guān)基因的異常表達(dá)和甲基化抑制劑的作用,都會使胎盤滋養(yǎng)層細(xì)胞的分化及凋亡發(fā)生異常,從而導(dǎo)致胎盤的異常發(fā)育而使其不能正常發(fā)揮功能。在老鼠中,通過選擇性基因敲除手段而產(chǎn)生的轉(zhuǎn)基因突變個體中,經(jīng)常發(fā)現(xiàn)有異常的胎盤發(fā)育,這包括異常的胎盤重量、迷路滋養(yǎng)層以及成膠質(zhì)細(xì)胞的發(fā)育異常(表1)[1]。在正常受孕的人類嬰兒中,異常的胎盤重量經(jīng)常伴隨著混亂的印記基因表達(dá)出現(xiàn),而且有報道稱,在發(fā)育遲緩或早產(chǎn)嬰兒中胎盤內(nèi)常伴有印記基因表達(dá)異常。并且各基因在胎盤發(fā)育的不同時期有不同表達(dá)量,不是所有基因在胎盤形成初始至胎兒出生都有表達(dá)[9]。
一般來講,胎盤的正常發(fā)育需要父源印記基因和母源印記基因共同調(diào)控,通過父源基因的表達(dá)快速發(fā)育,通過母源基因的表達(dá)受到發(fā)育限制,任何一方的基因表達(dá)異常都會導(dǎo)致胎盤發(fā)育異常。這已通過對敲除基因突變體各項檢測得到論證,這也與沖突假說理論表述一致。例如,H19-IGF2基因位點父源表達(dá)的IGF2基因編碼生長因子IGF2,促進(jìn)胎盤生長發(fā)育; 而母源表達(dá)的IGF2r 和H19 基因會直接或間接限制IGF2的表達(dá),從而抑制胎盤發(fā)育,減少胎盤重量(表1)[10]。類似的,Phlda2 基因敲除的小鼠胎盤的重量高于平均重量,而敲除RTL1 基因的小鼠則表現(xiàn)為胎盤生長發(fā)育遲緩。還有一些基因,例如PEG10 和Mash2,如果敲除這些基因不僅會影響血性絨毛膜胎盤的形成,甚至?xí)?dǎo)致懷孕中期胚胎致死率的增高[11]。
在很多敲除型突變個體中,胎盤重量上的改變還常伴隨著形態(tài)學(xué)上的變化,從而直接影響胎盤對胎兒營養(yǎng)的供應(yīng)。例如老鼠胎盤,分為3 個區(qū)域: 含有肝糖原細(xì)胞的底蛻膜區(qū)域,成膠質(zhì)細(xì)胞的分界區(qū)域以及包含了3 層滋養(yǎng)層細(xì)胞層的迷路區(qū)域。其中成膠質(zhì)細(xì)胞具有內(nèi)分泌作用,而滋養(yǎng)層細(xì)胞則是母體-胎兒進(jìn)行營養(yǎng)物質(zhì)運輸?shù)闹匾獏^(qū)域。當(dāng)通過敲除特異印記基因使其表達(dá)異常時,這3 個區(qū)域的發(fā)育則會發(fā)生異常。尤其是迷路區(qū)域的面積,肝糖原的數(shù)目和基因位點以及在厚度和器官膜上的變化,這些都將成為母體和胎兒之間物質(zhì)循環(huán)的障礙[12,13]。這些變化同樣會改變一些哺乳動物胎盤的表面積和滋養(yǎng)層中的多血管系統(tǒng),使成膠質(zhì)細(xì)胞不能正常發(fā)育,妨礙胎盤絨毛膜形成[14]。而且交界處總面積的變化和細(xì)胞成分上的變化都可以通過母體新陳代謝和對胎兒的營養(yǎng)物質(zhì)分配直接影響胎兒生長發(fā)育,使胎盤的糖原利用和激素生成產(chǎn)生差異,嚴(yán)重影響胎盤正常發(fā)育與功能[15,16]。
表1 在小鼠懷孕晚期,印記基因?qū)μ?胎盤生長及胎盤形態(tài)學(xué)的作用[1]
測量營養(yǎng)物質(zhì)的轉(zhuǎn)運是通過檢測在敲除印記基因或印記基因過表達(dá)的突變型個體中,胎盤所轉(zhuǎn)運物質(zhì)的量。與野生型相比,IGF2PO(父源IGF2) 胎盤會轉(zhuǎn)運更多的MeAIB(α-甲氨基異丁酸)[17],它同樣轉(zhuǎn)運更多的鈣和甲基-D-葡萄糖[18]。在大多數(shù)情況下,這些營養(yǎng)物質(zhì)運輸上的改變伴隨著胎盤上特異葡萄糖和A 系統(tǒng)氨基酸轉(zhuǎn)運蛋白表達(dá)的改變[17]。Sla38a4,父源印記基因,A系統(tǒng)氨基酸轉(zhuǎn)運子亞型,在IGF2完全失效胎盤通過這種基因的減少效應(yīng)和MeAIB 轉(zhuǎn)運蛋白的正向調(diào)節(jié),使X 和Y 氨基酸轉(zhuǎn)運子系統(tǒng)豐裕度減少,這也解釋了為何這些突變體宮內(nèi)發(fā)育遲緩[17]。這些發(fā)現(xiàn)表明,印記基因在調(diào)節(jié)胎盤上營養(yǎng)物轉(zhuǎn)運過程中扮演著重要角色。
通常情況下,胎盤厚度上的改變會影響被動擴(kuò)散性質(zhì),而胎盤的通透性則是被動擴(kuò)散的標(biāo)記,同時滋養(yǎng)層表面積的變化會影響通過簡單擴(kuò)散和轉(zhuǎn)運蛋白介導(dǎo)轉(zhuǎn)運的營養(yǎng)物的運輸過程[19]。例如,在基因表達(dá)有缺陷的突變體膜上的甘露糖、EDTA(乙二胺四乙酸) 和菊糖含量減少,導(dǎo)致胎盤或脈管系統(tǒng)的表面積減少,影響物質(zhì)運輸[20,21]。綜上,胎盤內(nèi)印記基因的正常表達(dá)以及它們之間的互作對胎盤正常生長發(fā)育、生理功能和營養(yǎng)物質(zhì)運輸都是至關(guān)重要的。
除了調(diào)節(jié)胎盤生長發(fā)育和營養(yǎng)物質(zhì)轉(zhuǎn)運之外,胎盤內(nèi)的印記基因可以迅速感應(yīng)環(huán)境變化進(jìn)而變更胎盤表型。研究表明,印記基因調(diào)控在胎盤環(huán)境微干擾中比胚胎或胎兒組織中表現(xiàn)更為敏感,尤其在胚胎植入前改變早期胚胎環(huán)境在決定以后胎盤內(nèi)印記基因表達(dá)模式中顯得尤為重要[22]。而這些發(fā)現(xiàn)與利用體外輔助生殖技術(shù)獲得人類嬰兒的胎盤中印記基因表達(dá)混亂的結(jié)果一致[23]。
環(huán)境誘發(fā)改變的印記基因表達(dá)與胎盤生長和營養(yǎng)物質(zhì)運輸能力改變有關(guān)。對比IGF2PO 和IGF2無效突變體表明,印記基因可以同樣對胎兒所需營養(yǎng)做出迅速感應(yīng)[24,25]。當(dāng)IGF2只在迷路區(qū)域中缺乏時,胎盤變得更加高效,并且可以提高營養(yǎng)物質(zhì)轉(zhuǎn)運蛋白的豐富性,通過其它表達(dá)IGF2的胎兒組織幫助維護(hù)其生長[26]。當(dāng)所有胎兒組織中IGF2的表達(dá)均缺乏時,胎盤氨基酸轉(zhuǎn)運蛋白豐富度降低,胎兒相關(guān)生長率降低[24]。當(dāng)胎盤對胎兒正常營養(yǎng)物質(zhì)的需要和供給不匹配時,IGF2PO 正向表達(dá)會增加MeAIB 運輸和Slc38a2 氨基酸轉(zhuǎn)運蛋白的表達(dá),這樣胎盤會對胎兒生長供給更多,進(jìn)而可在懷孕后期保證胎兒正常生長率。同樣,在Phlda2 過表達(dá)的胎盤中,相似的營養(yǎng)供求機(jī)制也可以促進(jìn)正向調(diào)節(jié)營養(yǎng)物質(zhì)表達(dá)和離子轉(zhuǎn)運蛋白,以保證胎兒生長發(fā)育。反過來,在懷孕后期孕體過生長時,胎盤減少的被動通透性和MeAIB 的運輸可能反射母源信號,抑制胎盤營養(yǎng)物的支配來調(diào)節(jié)胎兒生長[20]。由此可見,胎兒和胎盤間印記基因的相互影響不僅與調(diào)節(jié)營養(yǎng)物分配有關(guān),同樣可以應(yīng)答環(huán)境信號。
ARTs 是近年來迅速發(fā)展并已廣泛應(yīng)用于人類和動物,用以嘗試校正生育能力損傷的技術(shù),可以提高特殊物種生殖效率,包括體外受精、ICSI 等。雖然它的應(yīng)用廣泛,但是這項技術(shù)的使用和體外培養(yǎng)條件會對胚胎造成損傷,因此具有很高的胚胎死亡率。在實驗動物中,大多數(shù)胚胎由于異常甲基化不能重編程,無法正常發(fā)育為胚胎。同時它增加了胎盤異常形態(tài)的發(fā)病率。這都與印記基因異常表達(dá)相關(guān)。
動物體細(xì)胞克隆是應(yīng)用顯微操作技術(shù)將體細(xì)胞注入去核的卵母細(xì)胞中,再將重構(gòu)胚移入體內(nèi)培養(yǎng),以期成為正常個體。該技術(shù)中的去分化和恢復(fù)全能性是成功的關(guān)鍵。雖然已經(jīng)有多種動物通過克隆產(chǎn)生個體,但是克隆動物的存活率低,且存在大量表型異常及不同程度缺陷一直是克隆技術(shù)中存在的重要問題[27]。主要表現(xiàn)為克隆動物胚胎和胎盤的過度生長。而這正與許多印記基因表達(dá)失調(diào)導(dǎo)致的癥狀相似。體細(xì)胞克隆時,供體細(xì)胞不適當(dāng)?shù)谋碛^遺傳重編程,如DNA 甲基化,可能是導(dǎo)致體細(xì)胞克隆效率低的原因[28]。有證據(jù)表明,重編程過程中,一些印記基因會被破壞,導(dǎo)致基因組印記缺陷。而核移植操作和體外培養(yǎng)對卵母細(xì)胞和供體細(xì)胞造成的損傷及發(fā)育異常也會被帶到重構(gòu)胚中,致使印記基因表達(dá)異常[29]。例如,在體外培養(yǎng)液中加入血清會干擾DMR 的甲基化和IGF2r 的表達(dá)[30]。而基于印記基因?qū)τ谔ケP正常發(fā)育和生理功能的重要作用,在克隆動物中,胎盤及胎兒發(fā)育的異常也就不足為怪。因此這也是導(dǎo)致克隆效率低的一個重要因素。
不同基因在多樣的表觀遺傳修飾調(diào)控下開啟或關(guān)閉,執(zhí)行各自的功能?;蚪M印記就是通過甲基化作用等方式實現(xiàn)對來源于不同親本的等位基因表達(dá)的調(diào)控,從而保證各基因的正常表達(dá)。胎盤作為對胎兒生長有決定性作用的器官,有許多特異印記基因的表達(dá),這些基因表達(dá)調(diào)控胎盤的正常發(fā)育及結(jié)構(gòu)形成,同時對于胎盤的主動運輸能力和轉(zhuǎn)運蛋白的表達(dá)有極其重要的作用。這也關(guān)系到母體-胎兒之間物質(zhì)循環(huán),充足的營養(yǎng)轉(zhuǎn)運是保證胎兒發(fā)育的首要因素之一。同時,這些基因可以感應(yīng)周圍環(huán)境的微小變化并迅速作出反應(yīng),平衡母體和胎兒的營養(yǎng)供求。一旦這些基因出現(xiàn)表達(dá)上的異常,則會引起胎盤表型上的異常,導(dǎo)致其功能出現(xiàn)異常。因此這些印記基因的正常表達(dá)以及協(xié)同作用是保證胎盤的生長發(fā)育以及行使其生理功能的重要因素。
回顧哺乳動物發(fā)育中的幾種重要的基因印記作用,確定印記基因在功能健全和胎兒發(fā)育中的重要作用?;蛴∮涀饔玫墨@得和進(jìn)化是基礎(chǔ)生物學(xué)問題之一,不斷探索各基因的功能、表達(dá)機(jī)制以及基因間的互作將成為這一問題研究的必要環(huán)節(jié)。而且這些印記基因也將成為一些遺傳類疾病的治療靶點,并且可以應(yīng)用在體外輔助生殖技術(shù)中用以改良人類生育及動物繁殖中的一些問題。因此,研究胎盤內(nèi)印記基因的表達(dá)和作用具有重大意義。
[1]A L Fowden,P M Coan,E Angiolini.Imprinted genes and the epigenetic regulation of placental phenotype.Progress in Biophysics and Molecular Biology.2011,281-288.
[2]Katia D,Robert F.Epigenetic regulation of mammalian genomic imprinting.Current Opinion in Genetics & Development,2004,14: 1-8.
[3]Rossant J,Cross JC.Placental development: lessons from mouse mutants.Nat Rev Genet 2001; 2: 538-48.
[4]Partidge L,Hurst L D.Sex and C on flict.Science,1998,281: 2003-2008.
[5]Barker,D.J.P..The malnourished baby and infant.Br.Med.Bull.2001,60,69-88.
[6]張守權(quán).哺乳動物印記基因的研究進(jìn)展[J].中國生物工程雜志,2003,23: 12.
[7]Dean W,Santos F,Reik W.Epigenetic reprogramming in early mammalian development and following somatic nuclear transfer.Seminars in Cell &Developmental Biology,2003,14: 93-100.
[8]Mayer W,Niveleau A,et al.Demethylation of the zygotic paternal genome.Nature,2000,403: 501-502.
[9]Kagami M,Sekita Y.Deletions and epimutations affecting human 14q32.2 imprinted region in individuals with maternal and paternal upd(14)-like phenotypes.Nat.Genet.2008 40,237-242.
[10]C onstancia M,Hemberger M,et al.Placental-specific IGF-II is a major modulator of placental and fetal growth.Nature,2002,417: 945-948.
[11]F F Bressan,T H C De Bem,F(xiàn) Perecin.Unearthing the Roles of Imprinted Genes in the Placenta.Placenta 30,2009,823-834.
[12]Georgiades P,F(xiàn)erguson-Smith A C.Comparative developmental anatomy of the murine and human definitive placenta.Placenta,2002,23,3-19.
[13]Watson E D,Cross J C.Development of structures and transport functions in the mouse placenta.Physiology.2005,20,180-193.
[14]Georgiades P,Watkins M,Burton G J.Roles for genomic imprinting and the zyotic genome in placental development.Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.2001,98,4522-4527.
[15]Lin,Coan P.Differential regulation of imprinting in the murine embryo and placenta by the Dlk1-Dio3 imprinting control region.Development 134,2007,417-426.
[16]Tunster S J,Tycko B.The imprinted Phlda2 gene regulates extraembryonic energy stores.Mol.Cell.Biol.,2010,30,295e306.
[17]Constancia M,Angiolini E.et al.Adaptation of nutrient supply to fetal demand in the mouse involves interaction between the Igf2 gene and placental transporter systems.Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.2005.102,19219-19224.
[18]Dilworth M R,Kusinski L C,et al.Placental-specific Igf2 knockout mice exhibit hypoclacemia and adaptive changes in placental calcium transport.Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.2010,107,3894-3899.
[19]Angiolini E,F(xiàn)owden A L,et al.Regulation of placental efficiency for nutrient transport by imprinted genes.Placenta 27 (Suppl.A) ,Trophoblast Res.2006.S98eS102.,20.
[20]Coan P M,Angiolini E.et al.Adaptations in placental nutrient transfer capacity to meet fetal growth demands depend on placental size in mice.J.Physiol.2008a.586,4567e4576.
[21]Sekita Y,Wagatsuma H,et al.Role of retrotransposon-derived imprinted Rtl1,in thefeto-maternal interface of the mouse placenta.,2008.
[22]Fortier A L,Lopes F L.Superovulationalters the expression of imprinted genes in the mid gestation mouse placenta.Hum.Mol.Genet.,2008,17,1653-1665.
[23]Haycock P C,Ramsay M,Exposure of mouse embryos to ethanol during preimplantation development: effect on DNA methylation in the H19 imprinting control region.Biol.Reprod.2009,81,618e627.
[24]Constancia M,Angiolini E et al.Adaptation of nutrient supply to fetal demand in the mouse involves interaction between the Igf2 gene and placental transporter systems.Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,2005,102,19219-19224.
[25]Coan P M,F(xiàn)owden A L,et al.Disproportionate effects of Igf2 knockout on placental morphology and diffusional exchange characteristics in the mouse.J.Physiol,2008,586,5023-5032.
[26]Constancia M,Hemburger M,et al.Placental-specific IGF2is a major modulator of placental and fetal growth.Nature,2002,417,945-948.
[27]Kubota C,Y amakuchi H,et al.Six cloned calves produced from adult fibroblast cells a fter long 2term culture.Proc Natl Acad Sci(USA) ,2000,97: 990-995.
[28]Dean W,Santos F,Reik W.E pigenetic reprogramming in early mammalian development and following somatic nuclear transfer.Seminars in Cell&Developmental Biology,2003,14: 93-100.
[29]侯曉軍,焦麗紅.基因組印記對個體發(fā)育及動物克隆的影響[J].遺傳學(xué)報,2005,32(5) : 550-554.
[30]Shi W,Zzkhartchenko V,Wolf E.Epigenetic reprogramming in mammalian nuclear transfer.Differentiation,2003,71(2) : 91-113.