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    柑橘黃龍病侵染相關(guān)抗病基因同源序列的克隆鑒定與表達(dá)分析

    2012-02-28 07:47:52劉婷婷殷幼平林亞玉賢家旭陳世偉王中康
    植物保護(hù) 2012年2期
    關(guān)鍵詞:黃龍抗病侵染

    劉婷婷, 殷幼平, 林亞玉, 賢家旭, 陳世偉, 王中康*

    (1.重慶大學(xué)生物工程學(xué)院基因研究中心,重慶 400030;2.廣西利添生物科技發(fā)展 (合浦)有限公司,北海 536128)

    柑橘黃龍病 (Citrus Huanglongbing,HLB)是影響世界柑橘產(chǎn)業(yè)的一種毀滅性病害[1]。該病害至今未能得到穩(wěn)定的純培養(yǎng),妨礙了病害侵染機(jī)理的深入研 究[2]。Jeong-Soon Ki m[3]、Ute Albrecht[4]用生物芯片技術(shù)對(duì)柑橘染病后體內(nèi)的基因表達(dá)進(jìn)行了研究,從分子角度對(duì)柑橘被黃龍病菌侵染后的反應(yīng)進(jìn)行了分析。利用寄主抗病性是防治病害的一種經(jīng)濟(jì)有效的方法,國(guó)際對(duì)于柑橘的分子抗性育種也正在研究中[5],但尚未有商用的抗性品種問世。依據(jù)現(xiàn)有的研究報(bào)道及田間觀察,發(fā)現(xiàn)長(zhǎng)期生長(zhǎng)在柑橘黃龍病病區(qū)的多年生柚樹(10~30年)病害癥狀不明顯,對(duì)黃龍病呈現(xiàn)一定程度的耐病性,是抗黃龍病育種的潛在的基因資源,因此可以由此入手分析其抗病相關(guān)基因的特性。迄今為止,已經(jīng)分離鑒定出約50余種抗病基因[6],通過對(duì)這些基因進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)其表達(dá)產(chǎn)物具有特定的保守結(jié)構(gòu)域,如核苷酸結(jié)合位點(diǎn)(nucleotide binding site,NBS)、亮氨酸重復(fù)序列(leucine-rich repeat,LRR)、絲氨酸/蘇氨酸蛋 白 激酶(serine-threonine kinase,STK)等[7-8]。根據(jù)已知抗病基因表達(dá)產(chǎn)物的保守區(qū)域設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物PCR擴(kuò)增得到的序列稱為抗病基因同源序列(resistance gene analogs,RGAs),目前通過該方法已經(jīng)從甘蔗[9]、姜[10]、杏[11]、大豆[12]、小麥[13]等植物中擴(kuò)增得到了大量RGAs。但是從基因組中得到的RGA可能有不表達(dá)的假基因,而從c DNA中分離的RGA則一般都是表達(dá)序列[14],通過對(duì)已克隆RGA的分析,并不是所有的RGA都與抗病基因相關(guān),因此需要對(duì)得到的RGA進(jìn)行抗病相關(guān)性的分析和鑒別以確定抗病相關(guān)基因?;虻墓δ芸梢酝ㄟ^基因的表達(dá)特征反映出來,定量PCR是研究基因表達(dá)較為靈敏、快速、簡(jiǎn)單的方法,目前已經(jīng)在各個(gè)研究領(lǐng)域得到了廣泛的應(yīng)用[15]。利用定量PCR技術(shù),蔡高磊等[16]研究了小麥Ta OZR基因的表達(dá)情況,張薇等[17]對(duì)煙草激活蛋白Pea T1的誘導(dǎo)抗性作用進(jìn)行了研究,楊立桃等[18]對(duì)轉(zhuǎn)基因水稻外源基因拷貝數(shù)進(jìn)行了分析。本研究利用較耐病的柑橘屬柚c DNA為模板,根據(jù)植物抗病基因表達(dá)產(chǎn)物的保守區(qū)域設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物擴(kuò)增抗病基因相似序列,然后設(shè)計(jì)特異性引物,采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù),驗(yàn)證抗性基因相似序列與黃龍病菌侵染的相關(guān)性,期望獲得具有抗病基因保守區(qū)域的黃龍病抗性候選基因,為黃龍病抗性基因的克隆及抗病基因作用機(jī)制的研究提供理論基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料處理及RNA提取

    供試植物為10年生琯溪蜜柚葉片(福建長(zhǎng)泰)與奧林達(dá)夏橙(由廣西合浦烏家柑橘種植場(chǎng)提供)。甜橙采取兩組處理方式,一組嫁接黃龍病病芽(T),一組不嫁接作為空白對(duì)照(C),每組8棵植株。處理后的兩組植物分別放于溫室內(nèi)培養(yǎng),保持持續(xù)的自然光照射,溫度為17~25℃。嫁接1個(gè)月后開始取樣,每株取3片葉片,以后每個(gè)月取1次連續(xù)取8個(gè)月。每次取的樣品洗凈后液氮速凍后于-80℃冰箱保存。提取DNA,選取定量PCR檢測(cè)為陽(yáng)性的3株樣品用于進(jìn)一步試驗(yàn)。用Trizol法提取植物的總RNA,每組樣品3個(gè)生物重復(fù),RNase-free DNase I處理樣品以排除DNA的污染,分光光度計(jì)檢測(cè)樣品,并于1.0%的瓊脂糖凝膠上電泳檢測(cè)RNA的完整性,A260nm/A280nm的比值在1.8~2.0之間的樣品利用隨機(jī)引物和M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶合成c DNA第1鏈。

    1.2 RGA的擴(kuò)增及序列分析

    根據(jù)抗性基因保守區(qū)利用Pri mer5.0設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物(表1),以琯溪蜜柚c DNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,產(chǎn)物于1.5%的瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè),回收、連接、轉(zhuǎn)化,挑選陽(yáng)性克隆酶切,篩選部分差異陽(yáng)性克隆測(cè)序。序列輸入Gen Bank進(jìn)行Blast比對(duì),ORF Finder用于尋找RGA的開放閱讀框。推導(dǎo)的氨基酸序列與已克隆的NBS類抗性基因利用DNA MAN軟件進(jìn)行序列比對(duì),尋找其保守區(qū)域,并利用Cl ustal x及MEGA4進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化樹的構(gòu)建。

    表1 PCR擴(kuò)增所需引物1)

    1.3 定量PCR表達(dá)分析

    根據(jù)測(cè)序結(jié)果利用beacon designer 7.0設(shè)計(jì)特異性定量引物(表2),對(duì)甜橙c DNA進(jìn)行擴(kuò)增,經(jīng)驗(yàn)證后的特異性引物進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR。PCR反應(yīng)體系為25μL,其中包括 SYBGREEN Mix 12.5μL,10μmol/L引物各1μL,反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物2μL作為模板,每個(gè)樣品3個(gè)技術(shù)重復(fù),空白處理水為模板以排除污染。最后通過IQ5軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。

    表2 用于實(shí)時(shí)熒光定量PCR的引物

    2 結(jié)果與分析

    2.1 柚子c DNA RGA的克隆與序列分析

    利用引物對(duì)柚c DNA進(jìn)行擴(kuò)增,將目的條帶進(jìn)行回收和克隆,通過RFLP篩選差異陽(yáng)性克隆,共選取6個(gè)送去測(cè)序,分別命名為GJ10、GJ17、GJ20、GJ28、GJ31、GJ35,通過DNA MAN軟件將序列與煙草N、亞麻L(zhǎng)6、擬南芥RPS2、RPS5、RPP8、RPM1等基因進(jìn)行多序列比對(duì),發(fā)現(xiàn)除GJ17以外,其余5個(gè)序列與選取的R基因具有一致的NBS保守區(qū)(P-loop、kinase-2、GLPL 等)(圖1),上傳到 Gen Bank中,登錄號(hào)為H M777043~HM777047。同時(shí),序列分析顯示其在氨基酸水平上的相似性為分別為32.52%、19.71%、28.41%、39.23%、42.86%。通過Clustalx,MEGA等軟件進(jìn)行進(jìn)一步的系統(tǒng)分析,構(gòu)建進(jìn)化樹(圖2),如圖所示5個(gè)RGAs與擬南芥RPS2、RPS5形成一個(gè)分支,擬南芥RPM1、RPP8和土豆I2C屬于一個(gè)分支簇,亞麻L(zhǎng)6和煙草N 屬于一個(gè)分支簇。

    2.2 定量PCR的表達(dá)分析

    為確定得到的RGAs是否受黃龍病誘導(dǎo)而表達(dá)變化,采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)分析其表達(dá)。根據(jù)得到的RGAs設(shè)計(jì)的特異性引物以甜橙c DNA為模板均能夠得到擴(kuò)增曲線,經(jīng)克隆測(cè)序驗(yàn)證屬于甜橙序列,因此可利用定量PCR方法研究黃龍病侵染過程中5個(gè)RGAs的表達(dá)情況。同時(shí),根據(jù)本實(shí)驗(yàn)室石小剛博士的研究結(jié)果,GAPDH和NADH是分析柑橘黃龍病侵染過程中基因表達(dá)最合適的內(nèi)參基因[19]。結(jié)果(圖3)顯示在嫁接病芽后8個(gè)月的連續(xù)采樣中5個(gè)RGAs的表達(dá)受到不同程度的調(diào)控,GJ20和GJ31在試驗(yàn)組第2次采樣中表達(dá)量大幅上升,而在嫁接病原前后的其余月份中表達(dá)相對(duì)比較穩(wěn)定;GJ28在試驗(yàn)組第4次采樣時(shí)表達(dá)上調(diào),其余幾個(gè)月表達(dá)趨于穩(wěn)定;GJ35在嫁接病原后總體表達(dá)較對(duì)照組大幅度下調(diào);GJ10在嫁接病原后3個(gè)月時(shí)表達(dá)下降,其余月份與對(duì)照組幾乎達(dá)到平衡。

    圖1 克隆得到的5個(gè)RGAs推導(dǎo)的氨基酸序列與7個(gè)已知抗病基因NBS保守結(jié)構(gòu)域的比對(duì)

    圖2 5個(gè)序列推導(dǎo)的氨基酸與已知物種抗病基因蛋白產(chǎn)物的系統(tǒng)進(jìn)化樹

    3 討論

    由于黃龍病寄主植物通常樹體大,生長(zhǎng)周期長(zhǎng),很難通過傳統(tǒng)方法克隆抗性基因,RGAs的分離鑒定及表達(dá)分析可以為抗性基因的克隆提供一定的線索,但是利用基因組DNA為模板擴(kuò)增得到的RGA或許包含內(nèi)含子,而從c DNA中得到的序列則是無終止子的編碼序列。迄今為止,從柚c DNA中分離鑒定RGA僅見1篇報(bào)道[20],他們以柚花柱c DNA為模板擴(kuò)增得到了10個(gè)序列,但并未對(duì)其進(jìn)行表達(dá)特性的研究分析。本試驗(yàn)從柚c DNA中成功獲得5個(gè)RGAs,所得到的5個(gè)RGAs與7個(gè)已知的植物抗性基因的NBS保守區(qū)域具有高度相似性。然而,核苷酸結(jié)合位點(diǎn)(NBS)僅僅是植物抗性基因的一個(gè)保守區(qū)域,它不僅在抗性基因中存在,在ATP和GTP結(jié)合蛋白中也存在[21]。除了核苷酸結(jié)合位點(diǎn)(NBS),柚NBS-LRR類抗性基因還應(yīng)具有其他的重要 結(jié) 構(gòu),例 如 TOLL、TIR(Interluken-1-receptor)或LRR(Leucine-rich repeats),因此所得到的5個(gè)RGAs只能作為抗性候選基因。

    圖3 接種黃龍病后5個(gè)RGAs的相對(duì)表達(dá)分析

    為證實(shí)本研究得到的抗病同源基因是否為抗黃龍病相關(guān)基因,采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)來觀察其在黃龍病病原侵染過程中的表達(dá)是否發(fā)生變化,如果能被誘導(dǎo)進(jìn)行上調(diào)或下調(diào)表達(dá),則可能是抗病候選特異基因,參與病原侵染過程。由于柚感染黃龍病后相關(guān)癥狀表現(xiàn)并不十分明顯,尤其是多年生的大樹,甚至并不能被病原所感染。本試驗(yàn)嫁接柚多次未能得到感染株,遂利用得到全部感染病程的奧林達(dá)夏橙作為定量PCR的材料,因此試驗(yàn)結(jié)果或許會(huì)有些許差異。本試驗(yàn)中的5個(gè)RGAs經(jīng)實(shí)時(shí)熒光定量PCR后,其表達(dá)量均有所變化,可以初步確定為抗病相關(guān)基因,但是其表達(dá)只是在特定時(shí)期發(fā)生微量變化,推測(cè)除了病原其表達(dá)可能同時(shí)也受其他因素的影響。其中GJ20和GJ31在接種后第2月表達(dá)量大幅度上升,其余月份表達(dá)穩(wěn)定,根據(jù)黃龍病的生長(zhǎng)情況推測(cè)其可能是因?yàn)樵谇秩境跗诓【鷶?shù)量相對(duì)較少,對(duì)基因表達(dá)的誘導(dǎo)不強(qiáng);而后病菌增殖,致使相關(guān)基因表達(dá)增強(qiáng),又反過來抑制了病菌繁殖,使得基因表達(dá)下降并最終趨于穩(wěn)定。GJ10、GJ28和GJ35的表達(dá)相對(duì)來說無明顯的規(guī)律。根據(jù)表達(dá)情況,推測(cè)GJ20和GJ31較有可能與HLB菌的相關(guān)抗性基因相關(guān),進(jìn)一步的試驗(yàn)主要是通過獲得其全長(zhǎng)序列,構(gòu)建表達(dá)載體,通過RNAi技術(shù)進(jìn)一步驗(yàn)證,以確定其功能。

    [1] Bove J M.Huanglongbing:A destr uctive,newly-emerging,century-old disease of Citr us[J].Plant Pat hology,2006,88(1):7-37.

    [2] Wang Z K,Sun X Y,Yin Y P,et al.Comparison of PCR,DIA and pathogenicity assay for detection of Xanthomonas axonopodis pv.citri,the causal agentof citrus bacterial canker disease[J].Agricultural Science in China,2004,3(6):442-447.

    [3] Ki m J S,Sagara m U S,Bur ns J K,et al.Response of sweetorange(Citr us sinensis)to‘Candidatus Liberibacter asiaticus’infection,micr oscopy and microarray analyses[J].Phytopat hology,2009,99(1):50-57.

    [4] Al brecht U,Bowman K D.Gene expression in Citr us sinensis(L.)Osbeck f ollowing infection with the bacterial pat hogen Candidatus Liberibacter asiaticus causing Huanglongbing in Florida[J].Plant Science,2008,175(3):291-306.

    [5] Dutt M,Madhavaraj J,Gr osser J W.Agrobacteriu m t u mef aciens-mediated genetic transfor mation and plant regeneration fro m a co mplex tetraploid hybrid citr us r ootstock[J].Scientia Horticult urae,2010,123:454-458.

    [6] Hulbert S H,Webb C A,Smit h S M,et al.Resistance gene co mplexes:evolution and utilization[J].Annual Review of Phytopathology,2001,39:285-312.

    [7] Jones J D.Putting knowledge of plant disease resistance genes to work[J].Current Opinion in Plant Biology,2001,4:281-287.

    [8] Dangl J L,Jones J D G.Plant pat hogens and integrated defence responses to infection[J].Nat ure,2001,411:826-833.

    [9] Que Y X,Xu L P,Lin J W,et al.Isolation and characterization of NBS-LRR resistance gene analogs from sugarcane[J].Acta Agron Sinica,2009,35(4):631-639.

    [10]Aswati N R,Tho mas G.Isolation,characterization and expression st udies of resistance gene candidates(RGCs)from Zingiber spp.[J].Theoretical and Applied Genetics,2007,116:123-134.

    [11]Soriano J M,Vilanova S,Ro mer o C,et al.Characterization and mapping of NBS-LRR resistance gene analogs in apricot(Pr unus ar meniaca L.)[J].Theoretical and Applied Genetics,2005,110:980-989.

    [12]Wang B J,Wang Y J,Wang Q,et al.Characterization of an NBS-LRR resistance gene ho mologue from soybean[J].Journal of Plant Physiology,2004,161:815-822.

    [13]Bozkurt O,Hakki E E,Akkaya M S.Isolation and sequence analysis of wheat NBS-LRR type disease resistance gene analogs using degenerate PCR pri mers[J].Biochemical Genetics,2007,45:469-486.

    [14]闕友雄,許莉萍,林劍偉,等.斑茅NBS-LRR類抗病基因同源序列的克隆與分析[J].熱帶作物學(xué)報(bào),2009,30(2):192-197.

    [15]吳靜,吳茂森,何晨陽(yáng).實(shí)時(shí)定量PCR的原理及其在植物病理學(xué)研究中的應(yīng)用[J].植物保護(hù),2007,33(6):123-128.

    [16]蔡高磊,王曉杰,劉丹,等.條銹菌誘導(dǎo)的小麥Ta OZR的克隆及特征分析[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,43(12):2403-2409.

    [17]張薇,楊秀芬,邱德文,等.激活蛋白Pea T1誘導(dǎo)煙草對(duì)T MV的系統(tǒng)抗性[J].植物病理學(xué)報(bào),2010,40(3):290-299.

    [18]楊立桃,丁嘉羽,張大兵,等.利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法分析轉(zhuǎn)基因水稻外源基因拷貝數(shù)[J].中國(guó)食品衛(wèi)生雜志,2005,17(2):140-144.

    [19]Shi X G,Hu X F,Yin Y P,et al.Reference gene selection for gene expression analysis in Huanglongbing infected sweetorange of citr us[J].(sub mitted to BMC Molecular Biology).

    [20]黃代青,王平,呂柳新.柚c DNA中NBS-LRR類R基因同源序列的分離[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2004,37(10):1580-1584.

    [21]Shirasu K,Schulze-Lefert P.Regulators of cell deat h in disease resistance[J].Plant Mol Biol,2003,44:371-385.

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