張鏡,刁樹平
(嘉應(yīng)學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,廣東梅州,514015)
原花青素是一類天然自由基清除劑與抗氧化劑,具有抗輻射、抗突變,防癌、增強(qiáng)免疫、延緩衰老、改善腸道菌群等多種生物活性,廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥保健、功能性食品及化妝品等[1-6]。但生產(chǎn)原花青素的原料來源受季節(jié)與區(qū)域等的限制,產(chǎn)品供不應(yīng)求,價(jià)格昂貴。原花青素的研發(fā)雖逾半個(gè)世紀(jì),而尋求原花青素含量高、原料成本低廉的植物資源,仍是天然活性產(chǎn)物研發(fā)的重要課題[7-9]。
海南蒲桃[S.cumini],別名烏墨、楠木,是我國(guó)熱帶、南亞熱帶地區(qū)野生常綠喬木,喜溫暖濕潤(rùn)氣候,對(duì)土壤要求不高,適宜在5~10 cm以上的沙壤土及表層為紅壤或黃壤土中生長(zhǎng),并有火燒不死之稱[10]。海南蒲桃花多實(shí)豐,果實(shí)內(nèi)含多種成分,具有治療糖尿病、痢疾等疾病的藥用價(jià)值,鮮果生食對(duì)慢性咳嗽和哮喘有治療效果,是一種藥效很好的野生水果。我國(guó)華南地區(qū)海南蒲桃大量用于行道及水源涵養(yǎng)林種植。但海南蒲桃果實(shí)一直沒開發(fā)利用,大量海南蒲桃原花青素資源長(zhǎng)期廢棄。近年張亮亮等對(duì)海南蒲桃色素的提取及穩(wěn)定性[11-13]、黃思梅等對(duì)海南蒲桃果實(shí)原花青素抗氧化活性的穩(wěn)定性做了一定的研究[14],本文研究了海南蒲桃果實(shí)原花青素的提取工藝。
1.1.1 材料來源及預(yù)處理
于廣東梅州市采摘果皮顏色褪綠及淡紅色的八成熟海南蒲桃果實(shí),除去過熟、果皮軟化的紫黑色果實(shí)以及傷果與雜物等,自來水洗凈、晾干,冷凍干燥,粉碎,80篩目過篩粉末低溫保存?zhèn)溆谩?/p>
1.1.2 主要試劑
甲醇、無水乙醇、丙酮、正丁醇、濃鹽酸、硫酸鐵銨,均為分析純。
1.1.3 主要儀器與設(shè)備
低速大容量多管離心機(jī)(JLL28-B),上海安亭科學(xué)儀器廠;凍干機(jī)(BT2K XL),美國(guó)VirTis公司;紫外-可見分光光度計(jì)(U-2800),日本日立公司;酸度計(jì)(PHS-2C),上海滬西分析儀器廠;電子分析天平(FA1604A),上海精天電子儀器有限公司。
1.2.1 原花青素提取效果與含量的測(cè)定
原花青素提取液定容后,以正丁醇-鹽酸法加熱顯色、測(cè)定各處理液A546值:取1 mL提取液于比色管中,依次加入6 mL體積比為95∶5的正丁醇-鹽酸溶液及0.2 mL 2%硫酸鐵銨溶液,沸水浴40 min,然后迅速冷卻,以蒸餾水代替樣液為參比,測(cè)定其A546值。以A546值為衡量提取效果的指標(biāo),以文獻(xiàn)[15]公式計(jì)算原花青素的含量:
式中:A,吸光度;V,稀釋倍數(shù);m,樣品質(zhì)量(mg);0.366,在546 nm處原花青素的吸光度。
1.2.2 提取溶劑試驗(yàn)
準(zhǔn)確稱取適量海南蒲桃粉末,分別以不同體積分?jǐn)?shù)的甲醇、乙醇、丙酮及水為提取劑按1∶10(g:mL)的料液比,室溫浸提2 h,4 500 r/min離心20 min,收集上清夜,凍干后蒸餾水定容,得原花青素提取液,同1.2.1測(cè)定提取液A546值。
1.2.3 提取時(shí)間試驗(yàn)
準(zhǔn)確稱取適量海南蒲桃粉末,以60%丙酮為提取劑,料液比1∶10(g:mL),室溫浸提至實(shí)驗(yàn)設(shè)定時(shí)間,4 500 r/min離心20 min,收集上清夜,同1.2.1方法測(cè)定提取液A546值。
1.2.4 提取料液比試驗(yàn)
準(zhǔn)確稱取適量海南蒲桃粉末,以不同的料液比體積分?jǐn)?shù)與60%丙酮溶液混合,室溫浸提2 h,4 500 r/min離心20 min,收集上清夜,同1.2.1方法測(cè)定提取液A546值。
1.2.5 提取液pH試驗(yàn)
準(zhǔn)確稱取適量海南蒲桃粉末,分別與不同pH值的60%丙酮溶液以料液比1∶10(g:mL)混合,室溫浸提2 h,4 500 r/min離心 20 min,收集上清夜,同1.2.1方法測(cè)定提取液A546值。
1.2.6 提取溫度試驗(yàn)
準(zhǔn)確稱取適量海南蒲桃粉末,以料液比1∶10(g:mL)與60%丙酮提取劑混合,于10~70℃ 內(nèi)恒溫水浴中浸提2 h,4 500 r/min離心20 min,收集上清夜,3次重復(fù),同1.2.1方法測(cè)定不同料液比原提取液的吸光度。
1.2.7 提取參數(shù)的正交優(yōu)化
根據(jù)單因素試驗(yàn),對(duì)溶劑濃度、pH值、料液比及提取溫度進(jìn)行4因素、3水平的正交優(yōu)化。
1.2.8 不同提取次數(shù)原花青素的提取率
以正交試驗(yàn)獲得的優(yōu)化參數(shù)提取八成熟果實(shí)物料原花青素5次,測(cè)定不同提取次數(shù)海南蒲桃原花青素的吸光度,以5次提取的吸光度總和為100%的提取率,然后計(jì)算不同提取次數(shù)原花青素的累計(jì)提取率。
1.2.9 果實(shí)不同成熟度原花青素的含量
八成熟度與充分成熟的海南蒲桃果實(shí),冷凍干燥,粉碎,80篩目過篩,以正交優(yōu)化所獲參數(shù)提取的5次,同前述方法測(cè)定提取液A546值,計(jì)算原花青素的含量。
1.2.10 處理設(shè)置與數(shù)據(jù)分析
各處理重復(fù)3次,試驗(yàn)數(shù)據(jù)平均值以excel作圖,用SPSS 11.0進(jìn)行方差分析,相關(guān)數(shù)據(jù)進(jìn)行Duncans’差異顯著性分析,P<0.0 5表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著。
海南蒲桃果實(shí)物料以4種溶劑室溫浸提原花青素2 h的相對(duì)效果見圖1。從圖1看出甲醇、乙醇及丙酮隨著濃度增加原花青素的提取效果相應(yīng)提高,達(dá)到一定濃度后提取效果又逐漸下降,但無水甲醇、乙醇及丙酮均無明顯的提取作用;60%溶液丙酮浸提的效果為最佳,70%溶液乙醇溶液其次,甲醇溶液的提取效果更差。供試的3種有機(jī)溶劑原花青素提取液最大的吸光度間差異極顯著(P<0.01)。蒸餾水具一定的提取作用,但遠(yuǎn)低于含適宜比例有機(jī)濃度的提取效果。
圖1 溶劑種類及濃度對(duì)原花青素提取的影響
3種有機(jī)溶劑原花青素提取效果最佳的溶劑濃度不一。甲醇、丙酮與乙醇溶劑對(duì)原花青素提取效果最佳的濃度分別為50%、60%及70%,溶劑使用的濃度越高,提取過程中消耗的溶劑越多,提取費(fèi)用越大。但因60%丙酮提取的原花青素達(dá)50%甲醇溶液的1.55倍,與乙醇相比不僅溶劑消耗量低而且提取的效果好,因而丙酮作為提取溶劑為最適。
以60% 丙酮溶液為提取溶劑,室溫下不同時(shí)間原花青素的浸提效果見圖2。
圖2 浸提時(shí)間對(duì)原花青素提取的影響
從圖2中可以看出,浸提時(shí)間在0.5~2.0 h內(nèi),隨提取時(shí)間的延長(zhǎng)原花青素的溶出量逐漸增加,且2相鄰處理間提取液吸光度的差異顯著(P<0.05)。浸提時(shí)間2.0~5.0 h內(nèi)提取液原花青素的吸光度存在小幅波動(dòng),但彼此間差異不顯著。結(jié)果表明,在實(shí)驗(yàn)條件下浸提2.0 h時(shí)物料中的原花青素的溶解已基本達(dá)到平衡,溶液中原花青素的量已達(dá)最大值。
海南蒲桃粉末與60%丙酮溶液以不同料液比(質(zhì)量/體積)混合,浸提2 h后的吸光度見圖3。結(jié)果料液比1∶4~1∶9內(nèi)隨料液比的增加,提取的原花青素量不斷增加,料液比1∶9原花青素的提取量與其它料液比提取的原花青素的差異顯著。結(jié)果表明,海南蒲桃原花青素以60%丙酮溶液浸提最適的料液比為 1∶9。
料液比的高低與提取液的極性無關(guān),改變料液比不會(huì)改變目的物質(zhì)在溶液中的溶解度。但料液比的變化影響提取物的濃度與溶劑的使用量,溶劑若是使細(xì)胞膜溶解及膠體物質(zhì)變性而促進(jìn)目的物質(zhì)的溶出,則溶劑量越大對(duì)細(xì)胞膜的破壞作用越大、膠性物質(zhì)沉淀越徹底,目的物質(zhì)越容易從胞內(nèi)擴(kuò)散至溶液。而且料液比越大,目的物質(zhì)胞內(nèi)與胞外的濃度差越大,目的物質(zhì)由胞內(nèi)向胞外擴(kuò)散的速度越快。
圖3 料液比對(duì)原花青素提取的影響
不同pH值的60%丙酮溶液原花青素的浸提效果見圖4。
圖4 pH值對(duì)原花青素提取的影響
由圖4可見,pH=2時(shí),原花青素的提取效果最好,提取液的吸光度分別為pH=1和pH=3提取液的1.16倍及1.67倍,而且與pH=1的差異顯著、pH=3差異極顯著。當(dāng)提取劑pH>2時(shí),提取原花青素的效果急劇下降,浸提液在pH在5~9內(nèi)原花青素提取液吸光度間的差異不顯著。結(jié)果表明酸性條件有利于海南蒲桃果核中原花青素的提取,弱酸、中性與強(qiáng)堿條件下對(duì)原花青素的提取效果均不佳,結(jié)果與原花青素提取相關(guān)文獻(xiàn)的報(bào)道基本吻合[7]。
不同溫度浸提2 h提取液吸光度測(cè)定結(jié)果見圖5。
圖5 提取溫度對(duì)原花青素提取的影響
結(jié)果表明,在50℃下提取對(duì)原花青素的提取效果最佳,提取液的吸光度為0.654,與40℃的提取液的吸光度差異極顯著,且與60℃下提取的提取液的吸光度差異顯著。提取溫度若較低,與蛋白質(zhì)、纖維素等結(jié)合的原花青素分離較慢,一定時(shí)間內(nèi)原花青素溶出少,提取效率不高;溫度升高,溶解速度加快,原花青素的提取率升高,而溫度過高可能影響原花青素的穩(wěn)定性差,聚合度降低、易氧化,得率低。植物活性物質(zhì)的提取多為50℃左右為宜[13],也有少量以室溫浸提或沸水提取的報(bào)道[16]。
以溶劑濃度、料液比、提取溫度及pH值進(jìn)行的L9(34)正交結(jié)果見表1。由表1可知各種因素對(duì)提取效果影響的主次順序依次為料液比>pH值>提取溫度>溶劑濃度。在提取時(shí)間為2 h條件下,提取海南蒲桃果實(shí)原花青素效果最佳的組合是A2B2C3D1,即提取的最佳參數(shù)為丙酮濃度60%、料液比1∶9、提取溶劑pH=3及提取溫度60℃,此提取參數(shù)使用的溶劑濃度與溶液的酸度較低,提取時(shí)間亦較短,但需要60℃的較高溫度。正交試驗(yàn)方差分析與顯著性檢驗(yàn)見表2。由表2可知,料液比對(duì)原花青素提取與丙酮濃度、pH值及提取溫度3因子相比的差異在顯著水,而后3者間的差異不顯著。
表1 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果
表2 正交實(shí)驗(yàn)方差分析表
海南蒲桃果實(shí)粉末以正交優(yōu)化參數(shù)進(jìn)行5次原花青素提取,結(jié)果見表3。從表3可以看出,以正交優(yōu)化的參數(shù)進(jìn)行原花青素提取,經(jīng)1次提取的提取率為80.42%,2、3次提取的累計(jì)提取率分別為91.52%與95.29%,即經(jīng)3次浸提后殘?jiān)斜A舻脑ㄇ嗨厣跷ⅰQ芯勘砻鹘岽螖?shù),以2~3次即可。
表3 不同提取次數(shù)原花青素的提取率
八成熟與充分成熟的海南蒲桃果實(shí)以正交優(yōu)化參數(shù)分別進(jìn)行5次的原花青素提取后,測(cè)定其花青素含量(表4)。結(jié)果表明,八成熟的海南蒲桃果實(shí)的原花青素含量高,八成熟與充分成熟果實(shí)原花青素的含量分別為5.70%和4.48%。而且為充分成熟果實(shí)原花青素含量的127.23%,遠(yuǎn)高于充分成熟果實(shí)內(nèi)的原花青素含量。
表4 海南蒲桃果實(shí)原花青素含量%
研究表明從八成熟的海南蒲桃果實(shí)提取原花青素宜以體積分?jǐn)?shù)的60%的丙酮水溶液為提取溶劑、pH=3、料液比 1∶9、溫度 60℃、提取時(shí)間 2h,經(jīng) 2 次浸提原花青素提取率91.52%。丙酮溶液提取海南蒲桃原花青素的效果優(yōu)于乙醇及甲醇溶液,丙酮的酮基易于與原花青素中的羥基以氫鍵形式締合,在水溶液中兩者的氫鍵締合作用較強(qiáng)。文獻(xiàn)報(bào)道丙酮為溶劑提取原花青素的最佳濃度多為70% ~80%[17],而本實(shí)驗(yàn)結(jié)果是60%,溶劑消耗更少。
海南蒲桃果實(shí)原花青素開發(fā)宜以八成熟果實(shí)為原料。八成熟海南蒲桃果實(shí)原花青素的含量高,而且硬度大,采摘、干燥等中的損耗低。充分成熟果實(shí)中的部分原花青素轉(zhuǎn)化為花青素,并與糖結(jié)合形成花色苷[12],但果實(shí)采摘、干燥時(shí)的損耗大,原料的利用率低。
海南蒲桃是開發(fā)活性產(chǎn)物的重要資源。八成熟海南蒲桃果實(shí)原花青素的含量達(dá)5.7%,而多數(shù)植物材料中原花青素含量不足1%。海南蒲桃是可鮮食的野生水果,果實(shí)中原花青素的安全性高。我國(guó)華南沿海省區(qū)海南蒲桃大量用于城市綠化與水源涵養(yǎng)林,開發(fā)海南蒲桃果實(shí)原花青素不僅可使資源變廢為寶,而且不影響其園林綠化與水源涵養(yǎng)功能。
[1] 林啟壽編.中草藥成分化學(xué)[M].北京:科學(xué)出版社,1997:139-150.
[2] Kazumi M,Tatsuya H,Kai T,et al.Proanthocyanidin promotes free radical scavenging activity in muscle tissues and plasma[J].Appl Physiol Nutr Metab,2007,32:1 097-1 104.
[3] Jess R.Cranberry flavonoids,Atherosclerosis and cardiovascular health[J].Critical Reviews in Food Science and Nutrition,2002,42(Suppl):301-316.
[4] Mark A W,Barbara S H,Wilhelmina K,et al.Blueberry polyphenols increase lifespan and thermotolerance in Caenorhabditis elegans[J].Aging Cell,2006,5:59 - 68.
[5] Marta R,Eva N,Maria P,et al.Proanthocyanidins and the risk of colorectal cancer in Italy[J].Cancer Causes Control,2010,21:243 - 250.
[6] Shin M O,Sik Y,Moon J O.The Proanthocyanidins inhibit dimethylnitrosamine-induced liver damage in rats[J].Arch Pharm Res,2010,33(1):167-173.
[7] Dylan W P,Roshni C G,F(xiàn)rancesca S,et al.Cinnamon extract inhibits tau aggregation associated with alzheimer’s disease in vitro[J].Journal of Alzheimer’s Disease,2009(17):585-597.
[8] Francoise M,Laura J,Riitta J T,et al.Phenolic composition and antioxidant capacity of bilberry(Vaccinium myrtillus)leaves in northern europe following foliar development and along environmental gradients[J]:J Chem Ecol,2010(36):1 017-1 028.
[9] Liza E L,Beatriz D R,Andres M,et al.Extraction of antioxidants from several berries pressing wastes using conventional and supercritical solvents[J].Eur Food Res Technol,2010,231:669 -677.
[10] 何和明.南方優(yōu)良輔助蜜粉源一海南蒲桃[J].蜜蜂雜志,2006(9):39-40.
[11] 張亮亮,楊志偉,林鵬,等.海南蒲桃色素性質(zhì)研究[J].食品科技,2007(12):158-161.
[12] Veigas J M,Narayan M S,Laxman Padmere M,et al.Chemical nature,stability and bioefficacies of anthocyanins from fruit peel of syzygium cumini Skeels[J].Food Chemistry,2007,105(2):619-627.
[13] Prince P S,Menon V P,Pari L.Hypoglycaemic activity of Syzygium cumini seeds:EffSRt on lipid peroxidation in alloxan diabetic rats[J].Journal of Ethnopharmacology,1998,61:1-7.
[14] 黃思梅,張鏡.海南蒲桃原花青素DPPH自由基清除活性及穩(wěn)定性的初步研究[J].食品科技,2010,35(3):204-207.
[15] 陳健,孫愛東,高雪娟,等.響應(yīng)面分析法優(yōu)化超聲波提取檳榔原花青素工藝[J].食品科學(xué),2011,32(4):82-86.
[16] 馬龍,向陽.葡萄籽中原花青素提取工藝的研究[J].新疆醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2005,28(3):215-217.
[17] 李春陽,許時(shí)嬰,王璋.從葡萄廢棄物中提取分離多酚類生物活性物質(zhì)[J].食品科技,2004(6):88-93.