王 帥,吳書奇,陳根元,胡建軍,張 玲,馬春暉
(新疆生產(chǎn)建設(shè)兵團(tuán)塔里木畜牧科技重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/塔里木大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院,阿拉爾 843300)
苦馬豆素(swainsonine,SW)是小花棘豆等瘋草的主要有毒成分,嚴(yán)重影響了新疆畜牧業(yè)的發(fā)展[1-2]。SW有調(diào)節(jié)動(dòng)物免疫功能的作用,該作用與SW的濃度密切相關(guān)。目前,SW的免疫學(xué)研究已成為熱點(diǎn),因此,動(dòng)物血清中SW含量的測定顯得極為重要。目前,國內(nèi)采用的苦馬豆素含量測定方法有薄層色譜掃描法[3]、α-甘露糖苷酶法[4-5]、氣相色譜法[6]和高效液相色譜法[7]。薄層色譜掃描法重現(xiàn)性和精確性都較差;氣相色譜法前處理繁瑣,檢測樣品易受蒸氣壓、溫度等的限制,而且苦馬豆素不易氣化,需進(jìn)行衍生化處理,其應(yīng)用也受到限制;高效液相色譜法需要的儀器特殊,溶劑系統(tǒng)選擇也不成熟,需要進(jìn)一步研究[5-7]。目前,關(guān)于α-甘露糖苷酶法測定家兔血清中SW含量的文獻(xiàn)報(bào)道較少。α-甘露糖苷酶活性抑制分析屬于酶分析法(enzymatic assay)。α-甘露糖苷酶可降解甘露糖苷,而SW與α-甘露糖苷酶的結(jié)構(gòu)相似,能競爭性抑制α-甘露糖苷酶的活性,且隨著SW濃度的變化,這種抑制作用的強(qiáng)弱也發(fā)生相應(yīng)變化,可以通過測定甘露糖苷或其分解產(chǎn)物的量間接測定SW的含量。當(dāng)SW的濃度達(dá)到0.5μg/mL以上時(shí)就對α-甘露糖苷酶表現(xiàn)出抑制作用,且該抑制作用與溶液pH密切相關(guān)[4-5]。本試驗(yàn)旨在建立快速、準(zhǔn)確、靈敏的SW含量測定方法,為測定試驗(yàn)動(dòng)物血清、組織、排泄物、胃腸內(nèi)容物等中SW的含量提供參考。
1.1 材料、試劑與儀器 小花棘豆樣品于2010年8月采自新疆克州阿合奇縣色帕巴依鄉(xiāng)(40°59′2′′N,78°42′28′′E),采集時(shí)正值結(jié)實(shí)期,標(biāo)本由塔里木大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院草業(yè)科學(xué)學(xué)科組鑒定。
試驗(yàn)動(dòng)物:家兔8只,雌雄各半(雌兔的編號為1、3、5、7,雄兔的編號為 2、4、6、8)。體重(2.0±0.1)kg/只,購于塔里木大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院試驗(yàn)基地。每只家兔以10 g/(d·kg)飼喂小花棘豆。試驗(yàn)開始后每隔7 d采集血液一次,并分離血清,-20℃保存。共采血5次。
試劑:苦馬豆素(SW)標(biāo)準(zhǔn)品,SIGMA;α-甘露糖苷酶、對硝基苯基-α-D-甘露糖苷,美國SUPELCO;其它試劑如氫氧化鈉、檸檬酸等均為國產(chǎn)分析純。
儀器:PowerWave XS型全波長酶標(biāo)儀,美國;MR231型高速冷凍離心機(jī),法國Jouan;Direct-Q3型超純水系統(tǒng),美國Millipore;BCD-223GB型冰箱,廣東科龍電器;FA/4A型電子天平,上海精密電子儀器有限公司。
1.2 方法
1.2.1 技術(shù)路線 試驗(yàn)反應(yīng)器皿為96孔酶標(biāo)板。向酶標(biāo)板每孔中依次加入反應(yīng)緩沖溶液50 μL、0.025 u/mL α-甘露糖苷酶溶液 50 μL、待測樣品液 50 μL,混勻后37℃孵育15 min;然后加入底物(20 mmol/L對硝基苯基-α-D-甘露糖苷溶液)50 μL,混勻后 37℃孵育 90 min;孵育結(jié)束后加入反應(yīng)終止液(pH 9.8的硼酸鈉緩沖溶液)100μL,立即使用酶標(biāo)儀測吸光度值。測定波長405 nm[5]。
1.2.2 試驗(yàn)條件的選擇 于酶標(biāo)板第1行的各孔中加入pH 2.5的反應(yīng)緩沖溶液50 μL,第2行的其余各孔中加入 pH 3.0 的反應(yīng)緩沖溶液 50 μL;第 3、4、5、6、7、8 行各加入 pH 值為 3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0 的反應(yīng)緩沖溶液50 μL;然后第1列和第2列不添加SW標(biāo)準(zhǔn)品溶液,第3列和第4列加入濃度為10-5mol/L的SW標(biāo)準(zhǔn)品溶液50 μL,第5列和第6列加入濃度為10-6mol/L的SW標(biāo)準(zhǔn)品溶液50 μL,依此類推,最后向第11列和12列加入濃度為10-9mol/L的SW標(biāo)準(zhǔn)品溶液50 μL[5];最后各孔中加入0.025 u/mL α-甘露糖苷酶溶液50 μL,混勻后立即37℃孵育15 min;然后加入底物(20 mmol/L對硝基苯基-α-D-甘露糖苷溶液)50 μL,混勻后37℃孵育90 min;孵育結(jié)束后加入反應(yīng)終止液(pH 9.8的硼酸鈉緩沖溶液)100 μL,立即使用酶標(biāo)儀測吸光度值。測定波長405 nm。以第1列和第2列的平均值作為100%α-甘露糖苷酶活性,計(jì)算不同SW濃度下α-甘露糖苷酶活性變化。篩選吸光度值變化呈線性相關(guān)的條件為樣品測定方法。
1.2.3 苦馬豆素標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 準(zhǔn)確配制1.73(10-6mol/L)、0.865(5×10-7mol/L)、0.433(2.5×10-7mol/L)、0.217(1.25×10-7mol/L)、0.109 mg/mL(6.25×10-8mol/L)5 個(gè)質(zhì)量濃度梯度的SW標(biāo)準(zhǔn)溶液。每個(gè)濃度梯度做8孔。以SW濃度Y對其吸光度X進(jìn)行回歸分析。
1.2.4 加標(biāo)回收試驗(yàn) 精密量取0.865 mg/mL SW標(biāo)準(zhǔn)溶液50 μL于96孔酶標(biāo)板中,然后加入50 μL 1.73 mg/mL SW標(biāo)準(zhǔn)溶液,測定吸光度值,共做8孔。
1.2.5 血清樣品的測定 每個(gè)血清樣品做8孔,以未采食小花棘豆的正常兔血清作為陰性對照,計(jì)算血清中SW含量。
1.3 數(shù)據(jù)分析 數(shù)據(jù)采用EXCEL 2007進(jìn)行處理,用SPSS 11.5中One-Way ANOVA進(jìn)行單因素方差分析。
2.1 試驗(yàn)條件的確定 當(dāng)反應(yīng)緩沖液的pH值為4.5時(shí)不同濃度SW溶液反應(yīng)光度值變化線性相關(guān)度最好。根據(jù)圖1所示,隨著SW濃度的升高,α-甘露糖苷酶的活性逐漸降低。當(dāng)SW的濃度在10-9~10-5mol/L范圍內(nèi)時(shí),α-甘露糖苷酶的活性呈“S”形;當(dāng)SW濃度不低于10-8mol/L時(shí),對α-甘露糖苷酶的抑制作用明顯增強(qiáng);當(dāng)SW濃度高于10-6mol/L時(shí),α-甘露糖苷酶的活性全部被抑制。根據(jù)SW濃度與與其抑制的AMA活性百分比做線性回歸,結(jié)果SW濃度在10-8~10-6mol/L時(shí)SW濃度與其抑制的α-甘露糖苷酶活性呈線性關(guān)系。
2.2 苦馬豆素標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作 以SW濃度Y對其吸光度X(見表1)進(jìn)行回歸分析,得回歸方程:Y=-0.012X+0.034,R2=0.999(圖 2),表明 SW 濃度在 0.109~1.73 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。根據(jù)8次重復(fù)測定的RSD值,α-甘露糖苷酶法測定苦馬豆素含量的精密度較好。
2.3 加標(biāo)回收試驗(yàn)結(jié)果 待測樣中SW質(zhì)量0.140 7 mg,理論值0.139 8 mg,平均回收率100.64%,RSD=2.743%。結(jié)果見表2。
圖1 SW抑制α-甘露糖苷酶劑量范圍的測定結(jié)果
表1 苦馬豆素標(biāo)準(zhǔn)曲線測定結(jié)果
圖2 苦馬豆素標(biāo)準(zhǔn)曲線
表2 加標(biāo)回收試驗(yàn)結(jié)果
2.4 樣品中SW的含量 試驗(yàn)家兔血清中SW的含量結(jié)果見表3。7 d時(shí)試驗(yàn)兔的血清SW含量差異明顯。這可能與兔子的個(gè)體差異有關(guān);而且在飼喂小花棘豆的初期,部分試驗(yàn)兔采食情況不佳,也可能導(dǎo)致血清樣品中SW含量的差異。隨著試驗(yàn)的進(jìn)行,同種性別的試驗(yàn)兔血清SW含量差異趨于不顯著,且雄性試驗(yàn)兔的數(shù)據(jù)更為整齊。家兔血清中SW的含量隨著飼喂時(shí)間的延長呈現(xiàn)由低到高的趨勢,由此說明α-甘露糖苷酶法測定家兔血清中SW含量的方法能夠滿足試驗(yàn)研究。另外,雌性試驗(yàn)兔血清SW含量一直顯著高于雄性試驗(yàn)兔,說明雌性家兔較雄性家兔易發(fā)生小花棘豆中毒。這與沈明華等[8]報(bào)道的雌性家兔甘肅棘豆中毒癥狀的出現(xiàn)時(shí)間早于雄性家兔的研究結(jié)果一致。
表3 樣品中苦馬豆素含量 mg/L
3.1 不同方法測定血清SW含量的比較 目前國內(nèi)外所采用的方法主要有薄層掃描法、氣相色譜法、高效液相色譜分析法和酶法測定等。薄層掃描法簡單快捷,易于操作,但用于定量分析時(shí)誤差較大[3]。高效液相色譜分析的檢測器檢測的是樣品中的發(fā)色基團(tuán),需要將苦馬豆素衍生化,而且高效液相色譜分析所需儀器較復(fù)雜,成本較高,不利于推廣[5,7]。目前SW定量測定應(yīng)用最多的是氣相色譜法,該方法具有檢出率高,檢測速度快,可實(shí)時(shí)監(jiān)測SW合成過程,適用于精確分析樣品中苦馬豆素含量;但SW不易氣化,高溫下易發(fā)生脫水從而導(dǎo)致結(jié)構(gòu)改變,故檢測時(shí)需制備易升華且穩(wěn)定的SW衍生物,而且對血清樣品的前處理極為繁瑣[6],所以目前SW的氣相色譜分析更多的應(yīng)用于植物樣品分析中。α-甘露糖苷酶活性抑制分析法多用于血清中SW的定性定量分析[9-10],由于血液中各種有機(jī)物質(zhì)和無機(jī)離子較多,采用色譜法很難分離完全,定量分析就更為困難;而酶分析法不需要對樣品進(jìn)行分離,也不需要復(fù)雜的儀器,簡單而適用,同時(shí)可跟蹤分析血清中SW的含量。而且酶分析法靈敏度高,適用于血清、乳制品等樣品中SW含量的微量分析。
3.2 α-甘露糖苷酶法測定SW含量的影響因素 Dorling等[11]研究發(fā)現(xiàn)SW在pH 4.0左右時(shí)對刀豆屬α-甘露糖苷酶表現(xiàn)出抑制作用。Kim等[12]利用酶分析法繪制出了刀豆屬α-甘露糖苷酶活性與SW濃度變化的標(biāo)準(zhǔn)曲線圖。Scaman等[13]報(bào)道了一種簡單且通用的分光光度分析法測定α-甘露糖苷酶的活性,可用于天然底物或人工合成底物。這些為α-甘露糖苷酶活性抑制分析法測定SW含量提供了基礎(chǔ)。Taylor等[4]以此發(fā)展了一種定性定量分析血清、乳中SW含量的方法。將樣品置于微孔板中并加入檸檬酸鹽緩沖液和α-甘露糖苷酶于37℃下孵育,以對硝基苯基-α-D-甘露糖苷作為底物,反應(yīng)完全后,采用分光光度法測定產(chǎn)物的光密度以間接評價(jià)樣品中的SW含量。α-甘露糖苷酶活性抑制分析法的靈敏度直接依賴于SW對α-甘露糖苷酶活性抑制程度,如果SW濃度過低,對α-甘露糖苷酶活性抑制作用就不明顯,使用酶分析法就無從談起。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)當(dāng)苦馬豆素濃度在10-9~10-6mol/L范圍內(nèi),反應(yīng)pH值為4.5時(shí),α-甘露糖苷酶分析法具有較好的準(zhǔn)確性,與孔祥雅等[5]的研究結(jié)果較為一致。
本試驗(yàn)采用α-甘露糖苷酶法測定血清中SW的含量。數(shù)據(jù)表明,α-甘露糖苷酶法具有回收率和準(zhǔn)確度高、精密度好、靈敏可靠、操作簡便快速、特異性好等優(yōu)點(diǎn),可作為血清SW的微量定量檢測方法。
[1]王帥.新疆小花棘豆中苦馬豆素的提取方法研究[D].阿拉爾:塔里木大學(xué)碩士學(xué)位論文,2010.
[2]高木木.新疆棘豆屬植物研究[D].石河子:石河子大學(xué)碩士學(xué)位論文,2008.
[3]童德文,曹光榮,耿果霞,等.薄層掃描測定5種瘋草中苦馬豆素含量[J].中國獸醫(yī)學(xué)報(bào),2003,23(2):183-185.
[4]Taylor J B,Strickland J R.Appearance and disappearance of swainsonine in serum and milk of lactating ruminants with nursing young following a single dose exposure to swainsonine(locoweed;Oxytropis sericea)[J].American Society of Animal Science,2002,80:2476-2484.
[5]孔祥雅,荊心堂,張麗慧,等.苦馬豆素抑制α-甘露糖苷酶的劑量效應(yīng)關(guān)系[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2011,32(1):43-46.
[6]宋毓民,王建華,王愛華,等.家兔血清中苦馬豆素的氣相色譜測定方法[J].中國獸醫(yī)學(xué)報(bào),2010,30(3):402-405.
[7]段秋燕,黃新異,柳軍璽,等.HPLC法測定小鼠血漿中苦馬豆素濃度及藥動(dòng)學(xué)研究[J].藥物分析雜志,2010(4):25-28.
[8]沈明華,莫重輝,趙寶玉,等.家兔實(shí)驗(yàn)性甘肅棘豆中毒的臨床癥狀和病理形態(tài)學(xué)觀察[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2010,31(1):44-49.
[9]Stegelmeier B L,James L F,Panter K E,et al.Tissue swainsonine clearance in sheep chronically poisoned with locoweed(Oxytropis sericea)[J].Animal Science,1998,76(4):1140-1144.
[10]Panter K E,James L F,Stegelmeier B L,et al.Locoweeds:effects on reproduction in livestock[J].Nat Toxins,1999,8(1):53-62.
[11]Dorling P R,Huxtable C R,Colegate S M.Inhibition of lysosomalαmannosidase by swainsonine,an indolizidine alkaloid isolated from Swainsona canescens[J].Biochem J,1980,191:649-651.
[12]Kim Lan Sim,Perry D.Swainsonine production by Metarhizium anisopliae determined by means of an enzymatic assay[J].Mycological research,1995,99(9):1078-1082.
[13]Scaman C H,Lipari F,Herscovics A,et al.A spectrophotometric assay for α-mannosidase activity[J].Glycobiology,1996,6(3):265-270.