常 凱, 王 紅 英, 孫 井 輝, 錢(qián) 斯 日 古 楞
( 大連工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院, 遼寧 大連 116034 )
脂肪酶是目前用途最廣泛的酶催化劑之一[1]。現(xiàn)在很多學(xué)者正在研究利用脂肪酶,把人類(lèi)生活和工業(yè)生產(chǎn)產(chǎn)生的劣質(zhì)油催化生成生物柴油[2]。這種新技術(shù)為解決能源危機(jī)、環(huán)境保護(hù)等世界性難題提供了新的途徑。但由于游離的脂肪酶對(duì)溫度和酸堿強(qiáng)度都有著嚴(yán)格的要求,儲(chǔ)存困難,而且價(jià)格偏高、不易回收利用等特點(diǎn),很大程度上限制了脂肪酶在人類(lèi)環(huán)保產(chǎn)業(yè)等中的應(yīng)用。殼聚糖是一種生物相容性好、易生物降解、無(wú)毒無(wú)副作用的天然高分子材料,其分子表面存在著豐富的羥基和氨基等官能團(tuán)。近年來(lái)磁性高分子載體固定脲酶、糖化酶等的研究已有報(bào)道[3-4],而采用磁性殼聚糖微球固定脂肪酶,還未見(jiàn)報(bào)道。用具有磁性的殼聚糖微球固定化脂肪酶,不僅能保持脂肪酶催化高效性和專(zhuān)一性,而且能提高脂肪酶的熱穩(wěn)定性和酸堿穩(wěn)定性[5-7],易于分離,有利于脂肪酶的重復(fù)性使用及產(chǎn)品的純化,從而降低脂肪酶的使用成本。本文通過(guò)戊二醛與殼聚糖的氨基基團(tuán)交聯(lián),對(duì)殼聚糖進(jìn)行改性以增強(qiáng)了脂肪酶的結(jié)合力,從而提高脂肪酶的操作穩(wěn)定性;同時(shí)對(duì)固定化條件和固定化酶性質(zhì)等進(jìn)行系統(tǒng)的研究。
脂肪酶,活力為6 733.58 U/g,Sigma公司;殼聚糖,分析純,上海緣聚生物科技有限公司;聚乙烯醇,分析純,天津市天河化學(xué)試劑廠;橄欖油,分析純,上?;瘜W(xué)試劑采購(gòu)供應(yīng)站;其他試劑均為分析純。
1.2.1 固定化脂肪酶載體的制備
1.2.1.1 改性納米級(jí)磁流體的制備
用共沉淀法[8]制備納米級(jí)磁流體。將5 g FeCl2·4H2O和3.4 g FeCl3·6H2O分別溶解于40 mL蒸餾水中,配制成Fe2+濃度為0.2 mol/L,F(xiàn)e3+濃度為0.125 mol/L的溶液。然后將Fe2+和Fe3+溶液混合置入250 mL三口燒瓶中,加入150 mL去離子水,在10 000 r/min條件下高速攪拌。同時(shí)緩慢滴加3 mol/L的NaOH,當(dāng)溶液變得黑亮?xí)r停止加入NaOH,繼續(xù)攪拌30 min。然后向三口燒瓶中加入0.5 mL油酸,攪拌1 h。用無(wú)水乙醇和去離子水反復(fù)清洗至上清液無(wú)色透明,得到改性磁流體,50 ℃下干燥,密閉常溫保存。
1.2.1.2 納米級(jí)磁性殼聚糖微球的制備
將1 g改性的磁流體和40 mL用乙酸(體積分?jǐn)?shù)2%)溶解的殼聚糖溶液加入燒杯中,在功率1 000 W、間隙時(shí)間1 s、超聲時(shí)間1 s條件下,超聲波冰浴分散10 min。將分散好的溶液置入250 mL三口燒瓶?jī)?nèi),加入100 mL去離子水,37 ℃恒溫水浴加熱并1 000 r/min攪拌。緩慢滴加100 μL 戊二醛(體積分?jǐn)?shù)為50%),攪拌1 h,加入適量Span-80和吐溫80。繼續(xù)以1 000 r/min速度攪拌30 min,開(kāi)始滴加1 mol/L的NaOH。在pH達(dá)到7之前的速度較快,每4 s一滴。然后再以每8 s一滴的速度滴加到pH 9,停止滴加。緩慢加入100 μL乙二胺,800 r/min攪拌3 h。停止攪拌,用無(wú)水乙醇和超純水反復(fù)清洗,在4 ℃的冰箱中保藏。
1.2.2 脂肪酶的磁性固定化
稱(chēng)取100 mg磁性微球,用3%的戊二醛溶液活化2 h。用無(wú)水乙醇和超純水反復(fù)清洗干凈,然后加入100 mL錐形瓶中,用緩沖液充分溶脹,取出。將溶脹的磁性殼聚糖微球加入體積分?jǐn)?shù)2%的脂肪酶磷酸溶液(用pH 8.0,0.2 mol/L緩沖液配制),15 ℃恒溫?fù)u床振蕩一定時(shí)間,用磁鐵將磁性殼聚糖微球沉淀,過(guò)濾,并用pH 8.0,0.1 mol/L緩沖液洗滌,然后用無(wú)水乙醇和超純水反復(fù)清洗多次,最后獲得固定化酶,在4 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3 固定化脂肪酶活力的測(cè)定
固定化脂肪酶活力測(cè)定采用聚乙烯醇乳化橄欖油法[9]。脂肪酶的活力單位表述為,在pH 8、37 ℃條件下,脂肪酶水解橄欖油每分鐘生成1 μmol脂肪酸所需的酶量,即為一個(gè)酶活單位。由酸堿平衡方程可以計(jì)算得出催化生成的脂肪酸的量。首先,要取一定量的聚乙烯醇(PVA),配制成體積分?jǐn)?shù)2%的水溶液(隔夜溶脹)。量取一定量的橄欖油,與聚乙烯醇按3∶1體積比混合,立即置入冰水中。10 ℃時(shí)迅速用勻漿機(jī)高速攪拌20 min,白色的混合物即為反應(yīng)底物。然后取2.0 mL 0.1 mol/L pH 7.0的磷酸緩沖溶液和2.5 mL 底物置入同一三角瓶里,用磁力攪拌器攪拌3 min,并用水浴加熱到37 ℃,在此溫度下恒定10 min,最后加入0.5 mL脂肪酶液,低速攪拌并計(jì)時(shí),恒溫反應(yīng)30 min后,再加入5.0 mL丙酮-乙醇混合液(體積比為1∶1)終止脂肪酶的水解反應(yīng),然后加入5.0 mL 0.05 mol/L的NaOH標(biāo)準(zhǔn)溶液和2滴1%的酚酞指示劑,最后用0.05 mol/L的鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液滴定,直至溶液變成透明無(wú)色。采用聚乙烯醇乳化橄欖油法測(cè)定對(duì)照樣的酶活力,在加酶之前先加入5.0 mL丙酮-乙醇混合液(體積比為1∶1)以終止脂肪酶的水解反應(yīng)。采用聚乙烯醇乳化橄欖油法測(cè)定固定化酶的酶活力,加入固定化酶的酶量是0.1 g。
2.1.1 固定化最佳給酶量的確定
取6組經(jīng)活化處理的磁性殼聚糖微球,每組100 mg,分別加入酶量6、8、10、12、14、16 mg。15 ℃恒溫振蕩7 h,用磁鐵將磁性殼聚糖微球沉淀、過(guò)濾,并用pH 8.0,0.1 mol/L磷酸緩沖液洗滌,然后用無(wú)水乙醇和超純水反復(fù)清洗多次,用“1.2.3”方法測(cè)定酶活力。
由圖1可知,酶活性隨給酶量的增加先上升后下降。這是因?yàn)闅ぞ厶俏⑶虻谋砻嬗幸欢〝?shù)量的活性基團(tuán),這些活性基團(tuán)能夠和酶相結(jié)合。如果活性基團(tuán)和酶的結(jié)合沒(méi)有飽和,固定化酶的總活力就會(huì)隨著吸附酶量的增多而增大。當(dāng)給酶量為10 mg時(shí),微球表面活性基團(tuán)已經(jīng)和酶的結(jié)合飽和。這時(shí)再增加給酶量,酶不但不和活性基團(tuán)結(jié)合,反而使酶都聚集在一起,酶的活性中心相互掩映,所以酶活性下降。綜合考慮,每100 mg磁性殼聚糖微球的最佳加酶量為10 mg。
2.1.2 固定化最佳時(shí)間的確定
取6組100 mg活化后的磁性殼聚糖微球,分別在15 ℃下恒溫振蕩5、6、7、8、9、10 h。用磁鐵將磁性殼聚糖微球沉淀后過(guò)濾,并用pH 8.0,0.1 mol/L磷酸緩沖液洗滌,然后用無(wú)水乙醇和超純水反復(fù)清洗多次,用“1.2.3”方法測(cè)定酶活力。
圖1 脂肪酶加量對(duì)固定化脂肪酶活力的影響
Fig.1 Effect of lipase amount on the activity of immobilized lipase
由圖2可見(jiàn),隨著固定化時(shí)間的延長(zhǎng),固定化脂肪酶活性呈現(xiàn)先增加后降低。固定化時(shí)間過(guò)短,有部分脂肪酶和載體沒(méi)有結(jié)合,因而固定化酶活性較低;當(dāng)固定化的時(shí)間過(guò)長(zhǎng),會(huì)使固定化酶活性降低,因此最佳固定化時(shí)間為7 h。
圖2 固定化時(shí)間對(duì)固定化脂肪酶活力的影響
Fig.2 Effect of immobilizing time on the activity of immobilized lipase
2.1.3 固定化最佳pH條件的確定
取100 mg磁性殼聚糖微球7份置入三角瓶中,然后各加入1 mL 配置好的脂肪酶溶液,最后依次分別加入2 mL pH分別為6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0、9.5的磷酸緩沖液,固定化后測(cè)定脂肪酶酶的活力,結(jié)果見(jiàn)圖3。由圖3可見(jiàn),脂肪酶在pH 為8.0條件下固定化,相對(duì)酶活力最高。
取兩個(gè)裝有2.5 mL底物的錐形瓶和2.0 mL 0.2 mol/L pH 8.0的磷酸緩沖液,分別加入100 mg固定化脂肪酶和0.2 mL體積分?jǐn)?shù)2%的脂肪酶溶液,在35、40、45、50、55 ℃振蕩反應(yīng)5 min后,用“1.2.3” 方法測(cè)定活力,結(jié)果見(jiàn)圖4。圖4表明,自由酶和固定化酶的最適溫度分別為40和50 ℃,經(jīng)固定化的酶最適溫度提高了10 ℃,在30~60 ℃它仍保持較高活性。這是因?yàn)樽杂擅负臀⑶虮砻婊钚曰鶊F(tuán)結(jié)合后,形成一種穩(wěn)定結(jié)構(gòu),這種結(jié)構(gòu)能夠?qū)χ久傅幕钚灾行挠幸欢ǖ谋Wo(hù),所以提高了固定化脂肪酶的臨界變性溫度。固定化脂肪酶最適反應(yīng)溫度得到了提高,使脂肪酶能夠在較高溫度下進(jìn)行酶促反應(yīng),提高了其適用范圍。
圖3 pH對(duì)固定化脂肪酶活力的影響
圖4 溫度對(duì)自由脂肪酶和固定化脂肪活力的影響
Fig.4 Effect of temperature on the activity of free lipase and immobilized lipase
取兩個(gè)裝有不同pH的磷酸緩沖液和2.5 mL底物的錐形瓶,分別加入100 mg固定化脂肪酶和0.2 mL體積分?jǐn)?shù)2%的脂肪酶溶液,在50 ℃水浴中振蕩反應(yīng)5 min后測(cè)其活力,結(jié)果見(jiàn)圖5。由圖5可見(jiàn),固定化酶比自由酶最適pH提高了0.5,達(dá)到了8.0。固定化酶在pH 6.5~9.0仍然保持較高的活力,抗堿性的能力明顯增加。這可能是固定化后脂肪酶的構(gòu)象發(fā)生了改變,穩(wěn)定性得到很大提高。
連續(xù)使用磁性固定化酶測(cè)定酶活力5次,結(jié)果如圖6所示,固定化酶的活力均有緩慢下降。這是因?yàn)橐恍┟概c微球表面的活性基團(tuán)結(jié)合的不牢固,一部分酶從微球的表面脫落下來(lái),在回收的過(guò)程中也有酶損失。但是固定化的脂肪酶經(jīng)過(guò)重復(fù)測(cè)定酶活5次后,其相對(duì)活力仍然可以保持在82.6%,表明磁性固定化酶具有很高的操作穩(wěn)定性。
圖5 pH對(duì)自由脂肪酶和固定化脂肪酶活力的影響
圖6 固定化脂肪酶的操作穩(wěn)定性
固定化酶和自由酶在0.2 mol/L 磷酸緩沖液(pH 8)中于4 ℃保存6 d后,測(cè)其活力,結(jié)果見(jiàn)圖7。由圖7可見(jiàn),脂肪酶經(jīng)過(guò)磁性殼聚糖微球固定化后,其儲(chǔ)存穩(wěn)定性和自由酶相比有了顯著提高,在低溫儲(chǔ)存6 d后仍然保持較高酶活力。這是因?yàn)橹久负臀⑶虮砻娴幕钚曰鶊F(tuán)結(jié)合后,形成了穩(wěn)定結(jié)構(gòu),這種穩(wěn)定的結(jié)構(gòu)對(duì)酶的活性中心有一定的保護(hù)作用,使其經(jīng)過(guò)長(zhǎng)時(shí)間低溫儲(chǔ)存后,仍然可以保持較高酶活力。經(jīng)磁性殼聚糖微球固定化的脂肪酶,和自由酶相比,儲(chǔ)存穩(wěn)定性得到了提高。
圖7 脂肪酶和固定化脂肪酶的儲(chǔ)存穩(wěn)定性
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,脂肪酶的最佳固定化條件為:100 mg磁性殼聚糖微球加入10 mg脂肪酶,在pH 8下反應(yīng)7 h。脂肪酶經(jīng)固定化后,其酸堿穩(wěn)定性和溫度穩(wěn)定性比其自由酶明顯提高。磁性固定化脂肪酶的反應(yīng)最適pH為8,最適溫度為50 ℃,重復(fù)使用5次,其活力仍保持82.6%,表現(xiàn)良好的操作穩(wěn)定性。固定化酶在4 ℃保存6 d后,其相對(duì)活力仍可達(dá)到82%以上。脂肪酶被磁性固定化,仍保持較高催化活力,與其自由酶表現(xiàn)相似的酶學(xué)性質(zhì),說(shuō)明脂肪酶通過(guò)此方法固定化時(shí),載體不是完全與酶的活性中心作用。根據(jù)實(shí)驗(yàn),可以認(rèn)為磁性固定化技術(shù)能夠擴(kuò)大脂肪酶的應(yīng)用范圍,磁性固定化脂肪酶在工業(yè)上具有應(yīng)用潛力。
[1] AL-DURI B, ROBINSON E, MCNERLAN S, et al. Hydrolysis of edible oils by lipase immobilized on hydrophobic supports: Effects of internal support structure[J]. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 1995, 72:1351-1359.
[2] CAO Shugui, YANG Hua, MA Lin. Enhancing enzymatic properties by the immobilization method [J]. Applied Biochemistry and Biotechnology, 1996, 59:7-14.
[3] 任廣智,李振華. 磁性殼聚糖微球用于酶的固定化研究[J]. 離子交換與吸附, 2001, 17(2):152-158.
[4] BAHAR T, CELEBIC S S. Characterization of glucoamylase immobilized on magnetic poly(styrene) particles[J]. Enzyme and Microbial Technology, 1998, 23(5):301-304.
[5] 錢(qián)軍民,張興,呂飛,等. 酶固定化載體材料研究新進(jìn)展[J]. 化工新型材料, 2002, 30(10):21-24.
[6] 袁履冰,高占先,陳宏博,等. 有機(jī)化學(xué)[M]. 北京:高等教育出版社, 1999:459.
[7] 肖正華,張惠靜,張夢(mèng)軍,等. 殼聚糖在酶固定化中的應(yīng)用[J]. 西南國(guó)防醫(yī)藥, 2005, 15(3):339-341.
[8] MASSART R, DUBOIS E, CABUIL V, et al. Preparation and properties of monodisperse magnetic fluids[J]. Journal of Magnetism and Magnetic Materials, 1995, 149:1-5.
[9] YAMADA K, MACHIDA H. Studies on the production of lipase by microorganisms[J]. Nippon Nogeikagaku Kaisi, 1962, 36:858-860.