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    無(wú)抗性選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)基因技術(shù)在蔬菜作物上的應(yīng)用

    2011-08-15 00:50:21顧興芳
    中國(guó)蔬菜 2011年12期
    關(guān)鍵詞:木糖抗性轉(zhuǎn)基因

    王 燁 顧興芳

    (中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜花卉研究所,北京 100081)

    隨著人們生活水平的提高,蔬菜、花卉類園藝作物在日常消費(fèi)中的比重越來(lái)越大,人們對(duì)于園藝產(chǎn)品的要求也越來(lái)越高,但在短期內(nèi)傳統(tǒng)的育種手段很難有新的突破,研究人員期望通過(guò)更先進(jìn)的技術(shù)如轉(zhuǎn)基因技術(shù)對(duì)育種材料進(jìn)行創(chuàng)新和改良。但目前絕大多數(shù)蔬菜作物的轉(zhuǎn)基因研究尚停留在實(shí)驗(yàn)室水平,還未真正走向市場(chǎng)。這不僅與轉(zhuǎn)化效率較低有關(guān),更與轉(zhuǎn)基因作物的安全性相關(guān)。

    1 采用無(wú)抗性選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)基因技術(shù)的意義

    從 1983年獲得第一株轉(zhuǎn)基因煙草以來(lái),植物轉(zhuǎn)基因技術(shù)已經(jīng)有了很大發(fā)展,所涉及的作物種類也越來(lái)越多。截止到2009年,有23個(gè)國(guó)家已經(jīng)批準(zhǔn)基因改造作物的商業(yè)化種植,并且有29個(gè)國(guó)家允許基因改造作物進(jìn)口或?qū)⑵溽尫诺阶匀画h(huán)境中去(Koreen et al.,2009)。隨著轉(zhuǎn)基因作物新品種的問(wèn)世及其商品化的不斷擴(kuò)大,人們對(duì)于轉(zhuǎn)基因技術(shù)在食品安全和生態(tài)環(huán)境安全的關(guān)注也日漸增多,并影響到其應(yīng)用和商業(yè)化進(jìn)程。目前所采用的轉(zhuǎn)基因技術(shù)一般采用抗性選擇標(biāo)記(如抗生素類或除草劑類抗性基因等)對(duì)轉(zhuǎn)化植株進(jìn)行篩選。篩選結(jié)束后選擇基因同目的基因一并整合到植物基因組中,其繼續(xù)表達(dá)的產(chǎn)物可能會(huì)對(duì)作物生長(zhǎng)、生態(tài)環(huán)境甚至人類帶來(lái)一系列不安全因素。主要表現(xiàn)在對(duì)食品、藥品的安全影響。當(dāng)抗性選擇標(biāo)記基因是編碼一些動(dòng)物腸道抗生素類的抗性物時(shí),這些基因可能被轉(zhuǎn)移到微生物中去,這樣就增強(qiáng)了病原微生物的抗藥性,引發(fā)藥物的減效或失效。另一方面轉(zhuǎn)基因作物可能會(huì)影響到生態(tài)環(huán)境安全,如對(duì)抗除草劑基因的使用。如果發(fā)生以花粉為媒介的基因漂流,可能使某些雜草獲得對(duì)除草劑的抗性而成為無(wú)法殺死的“超級(jí)雜草”(Pavletich & Pabo,1991),然而目前還沒(méi)有關(guān)于標(biāo)記基因漂移帶來(lái)危害的報(bào)道(Puchta,2003)。為了規(guī)避具有潛在危險(xiǎn)的抗性標(biāo)記基因可能引發(fā)的安全問(wèn)題,研究者力圖避免使用抗性基因,最早是在馬鈴薯的轉(zhuǎn)化中采用致病性強(qiáng)的農(nóng)桿菌進(jìn)行侵染,不采用標(biāo)記基因而是對(duì)再生植株進(jìn)行篩選,PCR檢測(cè)轉(zhuǎn)化率僅1 %~5 %。該方法的缺點(diǎn)是工作量大且陽(yáng)性率低(de Vetten et al.,2003;Ahmand et al.,2008),優(yōu)點(diǎn)是轉(zhuǎn)化植株無(wú)需進(jìn)行抗性標(biāo)記基因的剔除(Goldbrough et al.,1993;張余洋 等,2004)。現(xiàn)在更多研究者致力于采用安全選擇標(biāo)記基因或者標(biāo)記基因刪除法來(lái)改進(jìn)轉(zhuǎn)基因技術(shù)。總之,培育無(wú)抗性選擇標(biāo)記基因的轉(zhuǎn)基因植物是當(dāng)前植物基因工程研究迫切需要解決的課題。

    2 無(wú)抗性選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)基因技術(shù)

    2.1 安全選擇標(biāo)記基因的應(yīng)用

    在轉(zhuǎn)基因過(guò)程中利用安全選擇標(biāo)記基因,利用這些基因編碼的蛋白使轉(zhuǎn)化細(xì)胞可以繼續(xù)生長(zhǎng),從而在代謝和生長(zhǎng)過(guò)程中處于優(yōu)勢(shì),非轉(zhuǎn)化細(xì)胞則會(huì)衰亡;或者是借助某個(gè)基因編碼蛋白的表達(dá)來(lái)改變植株原有的狀態(tài),使轉(zhuǎn)化植株較容易被識(shí)別出來(lái)。

    2.1.1 與糖代謝相關(guān)的基因 磷酸甘露糖異構(gòu)酶基因(phospho mannoseisomerase gene,pmi)編碼的甘露糖磷酸異構(gòu)酶可以催化 6-磷酸甘露糖轉(zhuǎn)化為 6-磷酸果糖。培養(yǎng)基中的甘露糖被植物吸收后,經(jīng)細(xì)胞內(nèi)的己糖激酶催化為 6-磷酸甘露糖,轉(zhuǎn)化有 pmi的細(xì)胞可以將 6-磷酸甘露糖轉(zhuǎn)化為6-磷酸果糖,繼而為植物利用,在轉(zhuǎn)化過(guò)程中累計(jì)的ATP也可以為細(xì)胞生長(zhǎng)提供能量(Weisser et al.,1996)。pmi是個(gè)源于植物自身的基因,且甘露糖更是作為甜味劑在食品加工業(yè)中廣為應(yīng)用,是目前發(fā)展較完善的一個(gè)安全標(biāo)記。Joersbo等(1998)早在甜菜上嘗試以甘露糖為選擇壓,效率比以Kam為選擇標(biāo)記高1倍。

    在紅色鏈霉菌(Haldrup et al.,1998a)和高溫厭氧芽孢桿菌(Haldrup et al.,1998b)中都有一個(gè)木糖異構(gòu)酶基因(xylose isomerase gene,xylA),編碼木糖異構(gòu)酶,催化D-木糖和D-木酮糖之間發(fā)生互變異構(gòu)。很多植物無(wú)法利用D-木糖,因此在含有D-木糖的選擇培養(yǎng)基上,轉(zhuǎn)化xylA的細(xì)胞可以將D-木糖轉(zhuǎn)化為可利用的D-木酮糖,而那些非轉(zhuǎn)化細(xì)胞則會(huì)因?yàn)槿狈μ荚炊L(zhǎng)受到抑制。該選擇基因較早被應(yīng)用到馬鈴薯上,用xylA作為選擇標(biāo)記基因的轉(zhuǎn)化頻率是用Kam選擇的10倍(Haldrup et al.,1998a),且木糖是人類食品加工業(yè)中常用的添加劑,因此用木糖作為轉(zhuǎn)化選擇標(biāo)記是安全的(Jaiwal et al.,2002)。

    一般的植物細(xì)胞不能利用核糖醇為碳源,但大腸桿菌 C菌株可以在兩個(gè)緊密串聯(lián)的操縱子atl/rtl的協(xié)助下在以核糖醇為碳源的培養(yǎng)基上生長(zhǎng),因?yàn)樗鼈兙幋a的蛋白酶分解代謝核糖醇,以其為選擇標(biāo)記在培養(yǎng)基中添加核糖醇就可以篩選出轉(zhuǎn)化植株(Lafayette et al.,2001)。Reiner等(1975)把a(bǔ)tl/rtl從C菌株分別轉(zhuǎn)化到K-12菌株和B菌株中后,兩個(gè)菌株都可以在以核糖醇為碳源的培養(yǎng)基上繼續(xù)正常生長(zhǎng)(Reiner et al.,1975)。但目前未見(jiàn)在植物上成功利用的報(bào)道。此外,2-脫氧葡萄糖-6-磷酸鹽磷酸酯酶基因(DOGR1)(Kunze et al.,2001)和阿拉伯脫氫酶基因(atlD)(Lafayette et al.,2005)也屬于糖類相關(guān)選擇基因,但對(duì)其應(yīng)用不多。

    2.1.2 與激素相關(guān)的基因 植物基因組內(nèi)有很多調(diào)節(jié)激素代謝的相關(guān)基因,這些來(lái)源于植物自身的基因同樣可以作為轉(zhuǎn)基因的選擇標(biāo)記基因,而且非常安全。GUS基因來(lái)源于大腸桿菌,編碼β-葡萄糖苷酸酶(β-glucuronidase,GUS)。GUS常作為報(bào)告基因,但Joersbo和Okkels(1996)利用GUS為選擇標(biāo)記基因?qū)χ参锛?xì)胞進(jìn)行篩選,效率是用Kam選擇的2.9倍。Okkels等(1997)發(fā)現(xiàn)其原理是轉(zhuǎn)化細(xì)胞中的GUS基因可以作用于選擇培養(yǎng)基中添加的葡萄糖苷酸,從而釋放出有活性的細(xì)胞分裂素來(lái)促進(jìn)細(xì)胞的分化、生長(zhǎng),而未轉(zhuǎn)化細(xì)胞則會(huì)分化受阻。

    ipt主要源于農(nóng)桿菌 T-DNA,其編碼的異戊稀基轉(zhuǎn)移酶可以催化細(xì)胞分裂素合成的第一步,而細(xì)胞分裂素可以促進(jìn)芽點(diǎn)分化。利用這個(gè)標(biāo)記獲得的轉(zhuǎn)化植株由于激素代謝相關(guān)酶的超量表達(dá)使細(xì)胞分裂素的水平提高,植株的生長(zhǎng)點(diǎn)失去頂端優(yōu)勢(shì),表現(xiàn)出葉片卷曲、節(jié)間縮短,以此來(lái)鑒別轉(zhuǎn)化植株,但最后必須再利用轉(zhuǎn)座子元件(Ebinuma et al.,1997)或重組酶(Sugita et al.,1999)來(lái)刪除ipt。這一方法已經(jīng)在煙草(Ebinuma et al.,1997;Kunkel et al.,1999;Sugita et al.,2000)上獲得驗(yàn)證。此外,源于根癌農(nóng)桿菌NIAES1724的rolA、rolB和rolC也可通過(guò)提高生長(zhǎng)素活性來(lái)誘導(dǎo)“發(fā)狀根”,以此作為選擇標(biāo)記(薛健 等,2008)。

    吲哚-3-乙酰胺水解酶基因IaaH可以編碼調(diào)節(jié)植物吲哚乙酸代謝過(guò)程中的關(guān)鍵酶,使轉(zhuǎn)化細(xì)胞和非轉(zhuǎn)化細(xì)胞在激素代謝上造成差異(Ebinuma & Komanine,2001),從而達(dá)到選擇的目的,但對(duì)其在植物遺傳轉(zhuǎn)化中的應(yīng)用卻較少報(bào)道。

    2.1.3 與氨基酸代謝相關(guān)的基因 高等植物中賴氨酸是通過(guò)天冬氨酸途徑合成的,同時(shí)伴隨異亮氨酸、甲硫氨酸和蘇氨酸的合成。此合成途徑的關(guān)鍵酶是天冬氨酸激酶(AK)和二氫吡啶羧酸合成酶(DHDPS),AK受賴氨酸和蘇氨酸的抑制,而DHDPS則嚴(yán)格受賴氨酸的反饋調(diào)控(Mills et al.,1980)。但在細(xì)菌的賴氨酸合成途徑中,AK和 DHDPS對(duì)賴氨酸的反饋調(diào)節(jié)不敏感。因此在賴氨酸和蘇氨酸的選擇培養(yǎng)基上轉(zhuǎn)化了ak的再生植株可以保持較高水平的AK活性,保證了生長(zhǎng)需要的氨基酸,而非轉(zhuǎn)化細(xì)胞則因?yàn)榘被岷铣赏緩绞茏瓒劳觯↗aiwal et al.,2002)。Perl等(1993)克隆了大腸桿菌中對(duì)賴氨酸反饋抑制不敏感的lysC,將其轉(zhuǎn)化馬鈴薯。Brinch-Pedersen等(1999)也用賴氨酸和蘇氨酸為選擇壓,研究轉(zhuǎn)化大麥,但出現(xiàn)較多白化苗。與氨基酸代謝相關(guān)的基因作為標(biāo)記的還有鄰氨基苯甲酸合成酶基因ASAL(Makiko et al.,2005)和乙酰乳酸合成酶基因mALS(Tougou et al.,2009),但都沒(méi)有應(yīng)用到蔬菜作物上。

    2.1.4 其他安全選擇標(biāo)記基因 從維多利亞水母體內(nèi)發(fā)現(xiàn)并分離出的綠色熒光蛋白基因(GFP)不僅可以在原核生物細(xì)胞中表達(dá),還可以在真核生物細(xì)胞中表達(dá),而且不會(huì)影響轉(zhuǎn)化細(xì)胞的正常生長(zhǎng)和功能,其優(yōu)勢(shì)還在于不需要添加任何輔助因子而只需對(duì)其外觀進(jìn)行熒光檢測(cè)就可以加以辨別(Stuber et al.,1998)。GFP在植物遺傳轉(zhuǎn)化中常作為報(bào)告基因,但目前越來(lái)越多的研究將其作為選擇標(biāo)記基因,并已經(jīng)應(yīng)用在煙草(朱生偉 等,2003)、水稻(Chung et al.,2000)、甜菜(Zhang et al.,2001)和甘薯(Lawton et al.,2000)等作物的遺傳轉(zhuǎn)化上。

    甜菜堿脫氫酶基因BADH也常作為一個(gè)安全選擇標(biāo)記應(yīng)用到植物遺傳轉(zhuǎn)化中。BADH源于藜科高等植物,其編碼的蛋白可以催化有毒的甜菜堿醛轉(zhuǎn)化為無(wú)毒的甜菜堿,即在選擇培養(yǎng)基中添加甜菜堿醛作為選擇壓就能篩選出轉(zhuǎn)化植株。Danielle等(2001)以BADH作為選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)化煙草葉綠體基因組,轉(zhuǎn)化效率是用壯觀霉素選擇的25倍。

    甜椒類鐵氧還蛋白基因PFLP曾用于蘭花的遺傳轉(zhuǎn)化。You等(2003)將PFLP的cDNA構(gòu)建在CaMV35S啟動(dòng)子下,對(duì)蘭花進(jìn)行基因槍和農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化,以對(duì)胡蘿卜軟腐歐文氏菌的抗性為標(biāo)記,最終獲得了轉(zhuǎn)基因蘭花植株。

    谷氨酸-1-半醛-轉(zhuǎn)氨酶基因hemL編碼谷氨酸-1-半醛轉(zhuǎn)氨酶,其活性會(huì)影響葉綠素的合成。在選擇培養(yǎng)基中添加3-氨基-2,3-二氫苯甲酸就能抑制谷氨酸-1-半醛轉(zhuǎn)氨酶的活性,就無(wú)法正常形成葉綠素(Allison et al.,1997)。從Synechococcus PCC6301中分離得到抗3-氨基-2,3-二氫苯甲酸突變體GR6,其編碼基因hemL 在第5、6、7位發(fā)生絲氨酸、脯氨酸和苯丙氨酸的刪除,248位蛋氨酸取代異亮氨酸。將此基因轉(zhuǎn)化植物可以提高細(xì)胞對(duì)3-氨基-2,3-二氫苯甲酸的抗性。整合有hemL的轉(zhuǎn)化植株可以在含3-氨基-2,3-二氫苯甲酸的培養(yǎng)基上保持綠色,非轉(zhuǎn)化植株則會(huì)白化(Gough et al.,2001)。

    OsDREB2A和SOS1是分別從水稻和擬南芥中發(fā)現(xiàn)的兩個(gè)抗鹽基因。Zhu和Wu(2008)分別以這兩個(gè)基因作為選擇標(biāo)記,構(gòu)建載體 pZWOsDREB2A-cyc和 pZWAtSOS1-cyc,在含 200 mmol·L-1NaCl的培養(yǎng)基上對(duì)水稻進(jìn)行轉(zhuǎn)化并篩選。通過(guò)鹽篩選系統(tǒng)的選擇很安全,不僅能獲得轉(zhuǎn)基因植株,還可以獲得耐鹽脅迫的新材料。

    2.2 標(biāo)記基因刪除法

    該方法主要是利用常規(guī)的抗性選擇標(biāo)記篩選出轉(zhuǎn)基因植株,然后通過(guò)轉(zhuǎn)基因后代遺傳重組使選擇標(biāo)記和目的基因分離,或者是利用位點(diǎn)特異性酶將選擇基因剔除而獲得無(wú)抗性選擇標(biāo)記的轉(zhuǎn)基因植株。常見(jiàn)有共轉(zhuǎn)化、轉(zhuǎn)座子、同源重組和位點(diǎn)特異性重組。該方法尚處于開(kāi)發(fā)階段,試驗(yàn)對(duì)象也僅是煙草、擬南芥等模式植物。

    2.2.1 共轉(zhuǎn)化 共轉(zhuǎn)化是將標(biāo)記基因和目的基因分別構(gòu)建在不同的載體上或者同一載體的不同T-DNA區(qū)域內(nèi),共同轉(zhuǎn)化受體細(xì)胞后通過(guò)分子鑒定獲得共整合植株,后代經(jīng)遺傳重組使標(biāo)記基因和目的基因分離,并選擇只含有目的基因的轉(zhuǎn)化植株。共轉(zhuǎn)化需要后代遺傳分離來(lái)剔除標(biāo)記基因,因而適合有性繁殖的植物,但DNA直接轉(zhuǎn)移獲得T-DNA容易緊密連鎖(Ebinuma et al.,2001b),后代分離也較難獲得標(biāo)記基因分離的植株。具體有 3種途徑:① 用雙菌株轉(zhuǎn)化,每個(gè)菌株含有一個(gè)不同的質(zhì)粒。de Neve等(1997)將分別含有NPTⅡ和hpt的兩個(gè)根癌農(nóng)桿菌菌株混合后侵染擬南芥,其中southern-blot驗(yàn)證有44.4 %的轉(zhuǎn)化植株有T-DNA連鎖,證明了這一途徑的可行性。Mc Knight等(1987)在煙草的轉(zhuǎn)化中也采用了兩個(gè)分別帶有不同基因的農(nóng)桿菌菌株。② 用單菌株轉(zhuǎn)化,菌株含有2個(gè)不同的質(zhì)粒。這種方法較容易分離獲得只含目的基因的轉(zhuǎn)化植株,但因?yàn)?個(gè)菌株內(nèi)含有不同質(zhì)粒容易引發(fā)質(zhì)粒的不相容性,因此要注意質(zhì)粒的選擇問(wèn)題(Daley et al.,1998)。③ 雙 T-DNA法,即將2個(gè)基因整合到同一個(gè)質(zhì)粒上,這一方法較混合菌株的方法轉(zhuǎn)化效率高。Komari等(1996)將標(biāo)記基因NPTⅡ或hpt分別和目的基因GUS構(gòu)建在雙元質(zhì)粒載體的2個(gè)相鄰T-DNA區(qū)域上,對(duì)水稻進(jìn)行侵染,共轉(zhuǎn)化率為47 %。分離后代中有65 %含有GUS,說(shuō)明至少一半以上的共轉(zhuǎn)化植株中雙T-DNA的整合位點(diǎn)不連鎖。Lu等(2001)改進(jìn)了質(zhì)粒的構(gòu)建方法,把2個(gè)獨(dú)立的T-DNA序列改建為含雙右邊界的T-DNA和一個(gè)左邊界的T-DNA序列,用來(lái)轉(zhuǎn)化水稻。

    2.2.2 轉(zhuǎn)座子 在玉米中首先發(fā)現(xiàn)的轉(zhuǎn)座子也可以實(shí)現(xiàn)基因重組,如玉米的Ac/Ds轉(zhuǎn)座原件,Ac主要是編碼轉(zhuǎn)座酶用于Ac和Ds基因的轉(zhuǎn)座,Ds兩端各有一個(gè)長(zhǎng)度為數(shù)百個(gè)核苷酸的序列,中間可以插入較大的基因片段,且插入其他基因片段后的 Ds仍然可以同 Ac一起被轉(zhuǎn)座酶轉(zhuǎn)移(Fedoroff,1989)?;谶@些特性,可以把目的基因置于轉(zhuǎn)座子的外部同時(shí)將標(biāo)記基因插入 Ds內(nèi)部,轉(zhuǎn)化植物后選擇標(biāo)記可以通過(guò)轉(zhuǎn)座作用被轉(zhuǎn)走,而轉(zhuǎn)化后代經(jīng)過(guò)遺傳分離可以獲得無(wú)標(biāo)記的轉(zhuǎn)化植株;也可以將目的基因插入 Ds內(nèi)部,轉(zhuǎn)座酶把目的基因轉(zhuǎn)到染色體組的新位置上后再通過(guò)遺傳分離獲得無(wú)標(biāo)記的轉(zhuǎn)化植株。轉(zhuǎn)座子法已經(jīng)應(yīng)用到了煙草、番茄和水稻上,并獲得了無(wú)標(biāo)記的轉(zhuǎn)基因植株(Goldbrough et al.,1993;Sugita et al.,1999;Cotsaftis et al.,2002;金維正 等,2003)。其缺點(diǎn)是轉(zhuǎn)座后基因還會(huì)重新插入,后代經(jīng)過(guò)有性分離才能獲得無(wú)標(biāo)記植株,因此效率低,且工作量大、周期長(zhǎng),較適宜有性繁殖且生長(zhǎng)周期短的植物。

    2.2.3 同源重組 同源重組發(fā)生在DNA同源序列之間,指同源序列通過(guò)鏈置換和單鏈侵入形成異源雙鏈,通過(guò)一些重組酶修復(fù)可使兩條異源雙鏈發(fā)生交換。將其引入遺傳轉(zhuǎn)化,即在用農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化獲得選擇標(biāo)記的轉(zhuǎn)基因植株后再設(shè)計(jì)一段同源序列,將標(biāo)記基因置于2個(gè)同源序列之間,通過(guò)DNA重組將含有標(biāo)記基因的DNA序列剔除。Fischer等(1996)曾用此方法轉(zhuǎn)化煙草的葉綠體染色體組,最終獲得了無(wú)標(biāo)記基因轉(zhuǎn)化植株。同源重組轉(zhuǎn)化法不需要輔助因子參與,也無(wú)需后代的遺傳分離過(guò)程,但在植物的真核基因組中的重組效率較低,報(bào)道甚少。

    2.2.4 位點(diǎn)特異性重組 位點(diǎn)特異性重組是指通過(guò)重組酶在DNA特異位點(diǎn)間實(shí)現(xiàn)交換,需要重組酶和其識(shí)別位點(diǎn)。應(yīng)用在轉(zhuǎn)基因技術(shù)中,是在標(biāo)記基因的兩端分別插入重組酶的識(shí)別序列,在重組酶的作用下將標(biāo)記基因刪除。常見(jiàn)的重組系統(tǒng)有Cre/LoxP、FLP/FRT、R/Rs、Gin/gix和attP。

    2.2.4.1 Cre/LoxP系統(tǒng) Cre/LoxP系統(tǒng)是Sterberg在大腸桿菌噬菌體P1中發(fā)現(xiàn)的,由重組酶Cre和識(shí)別位點(diǎn)LoxP組成。Cre可以識(shí)別34 bp的部分回文的LoxP序列,無(wú)需能量和其他蛋白便可以在體內(nèi)外對(duì)線性和環(huán)狀甚至超螺旋結(jié)構(gòu)的DNA分子進(jìn)行重組(Ow & Medberry,1995)。重組酶可以通過(guò)二次基因轉(zhuǎn)化將重組酶導(dǎo)入轉(zhuǎn)基因植株,也可以通過(guò)與含有重組酶基因的植株雜交導(dǎo)入,在切除標(biāo)記基因后,通過(guò)轉(zhuǎn)化植株后代的分離將重組酶基因剔除,從而獲得無(wú)標(biāo)記基因的轉(zhuǎn)基因植株。比較理想的是誘導(dǎo)表達(dá)系統(tǒng)與位點(diǎn)特異性重組系統(tǒng)相結(jié)合,將目的基因、標(biāo)記基因和重組酶基因及其識(shí)別序列構(gòu)建在一個(gè)載體上,誘導(dǎo)型啟動(dòng)子在目的基因引入后瞬間表達(dá)重組酶基因,刪除標(biāo)記基因和重組酶基因(Zuo et al.,2001)。Zuo等(2000,2001)構(gòu)建了一個(gè)化學(xué)誘導(dǎo)表達(dá)的位點(diǎn)轉(zhuǎn)移DNA刪除系統(tǒng)PX6-GFP,培養(yǎng)基中的β-雌二醇誘導(dǎo)XVE表達(dá),啟動(dòng)Cre重組酶基因表達(dá)將識(shí)別序列間的選擇標(biāo)記基因刪除。Hoff利用Cre/LoxP構(gòu)建了pCrox載體,利用熱激啟動(dòng)子HSP81-1啟動(dòng)Cre,以GUS為報(bào)告基因(Hoff et al.,2001)。高尚等(2007)構(gòu)建了NPTⅡ基因可被刪除的和可插入目的基因的通用植物表達(dá)載體pBI121-lox-MCS。這些表達(dá)載體可廣泛用于培育無(wú)選擇標(biāo)記的轉(zhuǎn)基因植物。

    2.2.4.2 FLP/FRT系統(tǒng) 釀酒酵母2μ的環(huán)狀質(zhì)粒中發(fā)現(xiàn)的 FLP特異性位點(diǎn)重組酶是首先被用于切除轉(zhuǎn)基因植物中的標(biāo)記基因的,因此 FLP/FRT是最早創(chuàng)建的位點(diǎn)特異性重組系統(tǒng)。Cregg和Madden(1989)克隆了酵母的FRTs之間的Arg,將FRTs-ARG+-FRTs結(jié)構(gòu)導(dǎo)入Arg-酵母中,篩選得到了Arg+轉(zhuǎn)化植株。而后二次導(dǎo)入FLP重組酶,又獲得了Arg-的轉(zhuǎn)化子,證明發(fā)生了重組。后來(lái)Lyznik等(1993)又將該系統(tǒng)應(yīng)用于玉米和水稻的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化。單曉昳等(2006)利用多步重組,構(gòu)建了可在植物中廣泛應(yīng)用的FLP/FTR位點(diǎn)特異性重組系統(tǒng),經(jīng)過(guò)熱激處理后41 %的二次轉(zhuǎn)化植株發(fā)生了標(biāo)記基因的刪除。目前所報(bào)道的植物轉(zhuǎn)基因研究中對(duì)該系統(tǒng)利用時(shí)均采用了二次轉(zhuǎn)化。

    2.2.4.3 R/Rs系統(tǒng) 在結(jié)合酵母的環(huán)形質(zhì)粒pSR1中發(fā)現(xiàn)了這一系統(tǒng)(Sugita et al.,1999),包括重組酶R和2個(gè)重組酶識(shí)別位點(diǎn)Rs,在重組酶R的作用下識(shí)別位點(diǎn)Rs間發(fā)生同源重組(Reiner,1975)。Onouchi等(1995)利用含有R重組酶基因的轉(zhuǎn)化植株與位于Rs位點(diǎn)間的插入標(biāo)記基因的植株進(jìn)行雜交,獲得了無(wú)選擇標(biāo)記的擬南芥。Sugita等(2000)把誘導(dǎo)表達(dá)系統(tǒng)和MAT載體結(jié)合,將R基因構(gòu)建在除草劑“safener”誘導(dǎo)表達(dá)的啟動(dòng)子之后,兩側(cè)有重復(fù)序列Rs,獲得了14 %含有GUS的無(wú)選擇標(biāo)記植株,其中多數(shù)為單拷貝整合。

    2.2.4.4 Gin/gix系統(tǒng)和attP系統(tǒng) Gin/gix系統(tǒng)是在Mu噬菌體中被發(fā)現(xiàn)的,在重組酶Gin的作用下,兩個(gè)特異性識(shí)別位點(diǎn)gix間的DNA片段發(fā)生剔除(Maeser & Kahmann,1991)。attP系統(tǒng)則是利用了噬菌體能通過(guò)噬菌體附著位點(diǎn)(attP)整合到大腸桿菌基因組的細(xì)菌附著位點(diǎn)(attP)上的原理。Zubko等(2000)發(fā)現(xiàn)在噬菌體的2個(gè)attP位點(diǎn)之間發(fā)生了染色體內(nèi)同源重組而將標(biāo)記基因剔除,且不含INT和IHF蛋白的轉(zhuǎn)化體系。這兩個(gè)系統(tǒng)尚處于待開(kāi)發(fā)和利用的階段,雖然在噬菌體上得以證實(shí)但在高等植物的遺傳轉(zhuǎn)化中缺少應(yīng)用。

    3 無(wú)抗性選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)基因技術(shù)在蔬菜作物上的應(yīng)用

    無(wú)抗性選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)基因技術(shù)是目前轉(zhuǎn)基因技術(shù)的前沿,在糧食作物和經(jīng)濟(jì)作物上已經(jīng)展開(kāi)較深入的研究,但在轉(zhuǎn)基因技術(shù)相對(duì)薄弱的園藝作物上應(yīng)用卻非常有限。

    與糖類相關(guān)的選擇基因中利用pmi作為選擇標(biāo)記的研究較多。彭世清和陳守才(2005)在番茄的遺傳轉(zhuǎn)化中嘗試建立甘露糖陽(yáng)性選擇系統(tǒng),構(gòu)建了pmi為選擇標(biāo)記的植物表達(dá)質(zhì)粒載體pPMI并導(dǎo)入農(nóng)桿菌EHA105中,研究甘露糖對(duì)番茄生長(zhǎng)和生根的影響及葉盤對(duì)甘露糖的敏感性。通過(guò)農(nóng)桿菌介導(dǎo)番茄,獲得了轉(zhuǎn)化的再生植株,表明以甘露糖為陽(yáng)性選擇系統(tǒng)在番茄遺傳轉(zhuǎn)化中的應(yīng)用是可行的。王達(dá)新(2007)以黃燈籠椒為材料,建立高效的離體再生體系,利用 pBI121和pNOV2819及CMVcp基因構(gòu)建了以pmi為選擇標(biāo)記的pNOVcp植物表達(dá)載體,并通過(guò)其對(duì)甘露糖的抗性選擇試驗(yàn)建立起甘露糖陽(yáng)性篩選遺傳轉(zhuǎn)化體系。同年,Min等(2007)將pmi作為選擇標(biāo)記基因,試圖將GLO和JMT兩基因轉(zhuǎn)入大白菜,通過(guò)在培養(yǎng)基中添加7 g·L-1的甘露糖和2 %的蔗糖對(duì)再生植株進(jìn)行篩選,初步建立了甘露糖陽(yáng)性選擇系統(tǒng),兩基因的轉(zhuǎn)化率分別為 1.4 %和3.0 %,從而為大白菜轉(zhuǎn)基因研究提供了一條新的途徑。王洪偉(2009)曾通過(guò)攜帶含有pmi質(zhì)粒的農(nóng)桿菌LBA4404侵染番茄子葉外植體,利用甘露糖篩選系統(tǒng)進(jìn)行篩選,共獲得了54株再生植株,PCR初步證明獲得了陽(yáng)性轉(zhuǎn)scFv植株。張海(2009)通過(guò)建立含pmi選擇標(biāo)記的pCAOxOPMI表達(dá)載體導(dǎo)入甘藍(lán)型油菜,共獲得甘露糖抗性植株14株,PCR檢測(cè)其中11株為陽(yáng)性。對(duì)木糖異構(gòu)酶基因的利用,Haldrup等(1998b)曾將xylA作為選擇標(biāo)記的木糖篩選體系應(yīng)用到番茄的遺傳轉(zhuǎn)化中,較理想的篩選濃度是15 g·L-1的D-木糖,并獲得了初步成功,轉(zhuǎn)化率可以達(dá)到9%,而用Kam選擇的轉(zhuǎn)化率僅有7 %。崔麗?。?010)以大腸桿菌xylA作為選擇標(biāo)記基因,利用木糖作為選擇劑獲得能夠表達(dá)帶有GUS報(bào)告基因的轉(zhuǎn)基因黃瓜。同時(shí)構(gòu)建了pX390-scFv載體,以木糖作為篩選劑進(jìn)行黃瓜遺傳轉(zhuǎn)化研究,初步建立了農(nóng)桿菌介導(dǎo)的基于木糖選擇系統(tǒng)的黃瓜轉(zhuǎn)化體系。

    以植物激素相關(guān)基因 ipt為選擇標(biāo)記在園藝作物的遺傳轉(zhuǎn)化上也有成功的報(bào)道。Kunkel等(1999)利用地塞米松(dexamethasone)誘導(dǎo)的啟動(dòng)子使 ipt表達(dá),在誘導(dǎo)條件下獲得了萵苣的轉(zhuǎn)化植株。Thirukkumaran等(2009)也將該法用于長(zhǎng)壽花的遺傳轉(zhuǎn)化,通過(guò)PCR驗(yàn)證超過(guò)90 %的正常芽為ipt和GUS陰性,這些結(jié)果表明ipt引起的叢生芽現(xiàn)象可以將非轉(zhuǎn)化苗明確區(qū)分。

    在刪除選擇標(biāo)記策略中,共轉(zhuǎn)化法在園藝作物上的研究較多。Goldbrough等(1993)利用轉(zhuǎn)座子法把標(biāo)記基因GUS作為報(bào)告基因插入Ds內(nèi)部,通過(guò)轉(zhuǎn)化后代的遺傳分離最終獲得了無(wú)標(biāo)記基因的轉(zhuǎn)基因番茄植株。張余洋(2006)將位點(diǎn)特異性重組Cre/LoxP化學(xué)誘導(dǎo)系統(tǒng)應(yīng)用到番茄的遺傳轉(zhuǎn)化研究中,p35G植物載體轉(zhuǎn)化番茄后共得到19個(gè)抗性芽,經(jīng)過(guò)β-雌二醇誘導(dǎo)后有2個(gè)無(wú)抗性標(biāo)記的再生芽可以觀測(cè)到綠色熒光蛋白的表達(dá),證明該誘導(dǎo)自主剔除系統(tǒng)適用于番茄。

    4 小結(jié)與展望

    目前,研究人員致力于各種安全標(biāo)記開(kāi)發(fā)和無(wú)選擇標(biāo)記的轉(zhuǎn)基因技術(shù)的研究,主要是為了降低或克服轉(zhuǎn)基因植物的安全性問(wèn)題,避免轉(zhuǎn)基因植物可能給自然環(huán)境帶來(lái)的負(fù)面影響,同時(shí)減少社會(huì)對(duì)于轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品的顧慮,為其商業(yè)化鋪平道路。盡管這些新方法有著各種各樣的優(yōu)勢(shì)和缺陷,但都證明轉(zhuǎn)基因技術(shù)在日益完善。新技術(shù)已經(jīng)在很大程度上解決了傳統(tǒng)方法利用抗性選擇標(biāo)記對(duì)生態(tài)環(huán)境和食品、藥物安全方面影響的問(wèn)題,更省去了對(duì)抗性標(biāo)記的安全性評(píng)估的過(guò)程。上述無(wú)抗性標(biāo)記轉(zhuǎn)基因技術(shù)中,pmi、xylA和gpf等安全標(biāo)記已經(jīng)廣為應(yīng)用到植物的遺傳轉(zhuǎn)化研究中;共轉(zhuǎn)化法則是目前研究較深入且適用面較廣的無(wú)抗性標(biāo)記轉(zhuǎn)基因方法;位點(diǎn)特異性重組法雖然現(xiàn)在尚處于研發(fā)階段,但將來(lái)應(yīng)該是轉(zhuǎn)基因技術(shù)的重要發(fā)展方向之一。盡管這些新方法的研究已取得了一些成果,但只是在擬南芥、煙草和馬鈴薯上獲得了較大的進(jìn)展,其他植物尤其是轉(zhuǎn)化效率較低的作物首先需要提高轉(zhuǎn)化效率。

    轉(zhuǎn)基因技術(shù)的研發(fā)及其商業(yè)化在糧食作物和經(jīng)濟(jì)作物上已經(jīng)取得了一些成果和進(jìn)展,例如水稻、玉米、大豆和煙草。但在蔬菜作物上受到的阻力較大,科研方面取得的研究進(jìn)展就更少。為了發(fā)揮轉(zhuǎn)基因技術(shù)的優(yōu)勢(shì),規(guī)避缺陷,發(fā)展出效率更高、更安全、更易操作的轉(zhuǎn)化方法,培育無(wú)抗性選擇標(biāo)記的轉(zhuǎn)基因植物將是轉(zhuǎn)基因領(lǐng)域發(fā)展的必然趨勢(shì)。

    崔麗巍.2010.木糖篩選系統(tǒng)在黃瓜轉(zhuǎn)化中的應(yīng)用〔碩士論文〕.長(zhǎng)春:東北師范大學(xué).

    高尚,蘇鸓,賈洪革,郭洪年,田穎川,方榮祥,陳曉英.2007.選擇標(biāo)記可去除的植物高效表達(dá)載體的構(gòu)建.生物工程學(xué)報(bào), 23(1):157-160.

    金維正,段瑞君,張帆,陳雙燕,吳運(yùn)榮,吳平.2003.利用Ac/Ds轉(zhuǎn)座子系統(tǒng)在水稻中獲得無(wú)選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)基因植株的方法.生物工程學(xué)報(bào),19(6):669-673.

    彭世清,陳守才.2005.甘露糖陽(yáng)性選擇系統(tǒng)的建立在番茄轉(zhuǎn)化中的應(yīng)用.農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),13(2):141-144.

    單曉昳,李蓓,張舉仁.2006.利用FLP/frt重組系統(tǒng)產(chǎn)生無(wú)選擇標(biāo)記的轉(zhuǎn)基因煙草植株.生物工程學(xué)報(bào),22(5):744-750.

    王達(dá)新.2007.黃燈籠辣椒陽(yáng)性篩選再生體系建立及pNOVcp表達(dá)載體的構(gòu)建〔碩士論文〕.儋州:華南熱帶農(nóng)業(yè)大學(xué).

    王洪偉.2009.甘露糖篩選系統(tǒng)在番茄轉(zhuǎn)化中的應(yīng)用〔碩士論文〕.長(zhǎng)春:東北師范大學(xué).

    薛健,郭東全,趙桂蘭,楊向東,王立軍.2008.安全選擇標(biāo)記和無(wú)選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)基因技術(shù)研究進(jìn)展.華北農(nóng)學(xué)報(bào),23(s):96-102.

    張海.2009.pCAOxO-PMI表達(dá)載體的構(gòu)建及導(dǎo)入甘藍(lán)型油菜的研究〔碩士論文〕.雅安:四川農(nóng)業(yè)大學(xué).

    張余洋,歐陽(yáng)波,葉志彪.2004.無(wú)抗性標(biāo)記基因轉(zhuǎn)基因植物研究進(jìn)展.農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),12(5):589-596.

    張余洋.2006.轉(zhuǎn)基因番茄標(biāo)記基因刪除及翻譯起始因子4E基因順化植物的病毒抗性〔博士論文〕.武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué).

    朱生偉,秦紅敏,孫敬三,田穎川.2003.綠色熒光蛋白基因(GFP)在抗蟲(chóng)轉(zhuǎn)基因植物研究中的應(yīng)用.植物學(xué)報(bào),45(6):654-658.

    Ahmand R,Kim Y H,Kim M D,Phung M N,Chung W I,Lee H S,Kwak S S,Kwon S Y.2008.Development of selection marker-free transgenic potato plants with enhanced tolerance to oxindative stress,Journal of Plant Biology,51(6):401-407.

    Allison G,Gough K,Rogers L,Smith A.1997.A suicide vector for allelic recombination involving the gene for glutamate 1-semialdehyde aminotransferase in the cyanobacterium Synechococcus PCC 7942.Mol Gen Genet,255(4):392-399.

    Brinch-Pedersen H,Olsen O,Knudsen S,Holm P B.1999.An evaluation of feed-back insensitive aspartate kinase as a selectable marker for barley(Hordeum vulgare L.)transformation.Hereditas,131(3):239-245.

    Chung B C,Kin J K,Nahm B H,Lee C H.2000.In plants visual monitoring of green fluorescent protein in transgenic rice plants.Molecules and Cells,10:411-414.

    Cotsaftis O,Sallaud C,Breitler J C,Meynard D,Greco R,Pereira A,Guiderdoni E.2002.Transposon-mediated generation of T-DNA- and marker-free rice plants expressing a Bt endotoxin gene.Mol Breed,10(3):165-180.

    Cregg J M,Madden K R.1989.Use of site-specific recombination to regenerate selectable markers.Mol Gen Genet,219:320-323.

    Daley M,Knauf V C,Summerfelt K R,Turner J C.1998.Co-transformation with the one Agrobacterium tumefaciens strain containing two binary plasmids as a method for producing marker-free transgenic plants.Plant Cell Rep,17:489-496.

    Danielle H,Muthukumar B,Lee B S.2001.Marker free transgenic plants:engineering the chloroplast genome without the use of antibiotic selection.Current Genet,39:109-116.

    de Neve M,De Buck S,Jacobs A,Montagu M V,Depicker A.1997.T-DNA integration patterns in co-transformation plant cells suggest that T-DNA repeats originate from co-integration of separate T-DNAs.Plant Journal,11(1):15-29.

    de Vetten N,Wolters A M,Raemakers K,van der Meer I,ter Stege R,Heeres,Heeres P,Visser R.2003.A transformation method for obtaining marker-free plants of a cross-pollinating and vegetatively propagated crop.Nature Biotechnology,21:439-442.

    Ebinuma H,Sugita K,Matsunaga E,Yamakado M.1997.Selection of marker-free transgenic plants using theisopentenyl transferase gene.Proc Natl Acad Sciences USA,94:2117-2121.

    Ebinuma H,Komanine A.2001a.MAT(Multi-Auto-Transformation)vector system,the oncogenes of Agrobacterium as positive markers for regeneration and selection of mark-free transgenic plants.In Vitro Cell Dev-PI,37:103-113.

    Ebinuma H,Sugita K,Matsunaga E,Endo S,Yamada K,Komamine A.2001b.Systems for the removal of a selection marker and their recombination with a positive marker.Plant Cell Report,20:383-392.

    Fedoroff N.1989.Maize transposable elements.Washington D C:American Society for Microbiology:375-411.

    Fischer N,Stampacchia O,Redding K,Rochaix J D.1996.Selectable marker recycling in the chloroplast.Mol Gen Genet,251(3):373-380.

    Goldbrough A P,Lastrella C N,Yoder J I.1993.Transposition mediated re-positioning and subsequent elimination of marker genes from transgenic tomato.Biotechnology,11:1286-1292.

    Gough K C,Hawes W S,Kilpatdck J,Whitelam G C.2001.Cyanobacterial GR6 glutamate-1-semialdehyde aminotransferase:a novel enzyme based selectable marker for plan transformation.Plant Cell Reports,20:296-300.

    Haldrup A,Petersen S G,Okkels F T.1998a.Positive selection:a plant selection principle based on xylose isomerase,an enzyme used in the food industy.Plant Cell Reports,18:76-81.

    Haldrup A,Petersen S G,Okkels F T.1998b.The xylose isomerase gene from Thermoanaerobacterium thermosulfurogenes allows effective selection of transgenic plant cells using D-xylose as the selection agent.Plant Molecular Biology,37(2):287-296.

    Hoff T,Sehnorr K M,Mundy J.2001.A recombinase-mediated transcriptional induction system in transgenic plants.Plant Molecular Biology,45(1):41-49.

    Jaiwal P K,Sahoo L,Singh N D,Singh R P.2002.Strategies to deal with the concern about marker genes in transgenic plants:some environment-friendly approaches.Current Science,83(2):128-136.

    Joersbo M,Okkels F T.1996.A novel principle for selection of transgenic plant cells:positive selection.Plant Cell Report,16:219-221.

    Joersbo M,Donaldson L,Kreilerg J,Petersen S G,Brunstedt J,Okkels F T.1998.Analysis of mannose selection used for transformation of sugar beet.Mol Breed,4:111-117.

    Komari T,Hiei Y,Saito Y,Murai N,Kumashiro T.1996.Vectors carrying two separate T-DNAs for co-transformation of higher plants mediated by Agrobacterium tumefaciens and segregation of transformation free from selection marker.Plant Journal,10(1):165-174.

    Koreen R,Teresa C,Richard M.T,Hector Q,Paul C.2009.Calling the tunes on transgenic crops:the case for regulatory harmony.Molecular Breeding,23(1):99-112.

    Kunkel T,Niu Q W,Chan Y S,Chua N H.1999.Inducible isopentenyl transferase as a high efficiency marker for plant transformation.Nature Biotech,17:916-919.

    Kunz I,Ebneth M,Heim U,Geiger M,Sonnewald U,Herbers K.2001.2-Deoxyglucose resistance:a novel selection marker for plant transformation.Molecular Breeding,7:221-227.

    Lafayette P R,Parrott W A.2001.A non-antibiotic marker for amplification of plant transformation vectors in E.coli.Plant Cell Report,20:338-342.

    Lafayette P R,Kane P M,Phan B H,Parrott W A.2005.Arabitoldehydrogenase as a selectable marker for rice.Plant Cell Reports,24:596-602.

    Lawton R,Winfield S,Daniell H,Bhagsari A S,Dhir S K.2000.Expression of green fluorescent protein gene in sweet potato tissues.Plant Molecular Biology Reporter,18:139a-139i.

    Lu H J,Zhou X R,Gong Z X,Upadhyaya Narayaya M.2001.Generation of selectable marker-free transgenic rice using double right-border(DRB) binary vectors.Australian Journal of Plant Physiology,28(3):241-248.

    Lyznik L A,Mitchell J C,Hirayama L,Hodges T K.1993.Activity of yeast FLP recombinase in maise and rice protoplasts.Nucleic Acids Research,21(4):969-975.

    Maeser S,Kahmann R.1991.The Gin recombinase of phage Mu can catalyse site-specific recombination in plant protoplasts.Mol Gen Genet,230:170-176.

    Makiko K K,Yabe N,Tsuchiya M,Harada S,Kobayashi T,Komeda Y,Wakasa K.2005.Rice OASA1D,a mutant anthranilate synthase α subunitgene,is an effective selectable marker for transformation of Arabidopsis thaliana.Plant Biotechnology,22:271-276.

    McKnight T D,Lillis M T,Simpson R B.1987.Segregation of genes transferred to one plant cell from two separate Agrobacterium strains.Plant Mol Biol,8(6):439-445.

    Mills W R,Lea P J,Miflin B J.1980.Photosynthetic formation of the aspartate family of amino acids in isolated chlorplasts.Plant Physiology,65:1166-1172.

    Min B W,Cho Y N,Song M J,Noh T K,Kim B K,Chae W K,Park Y S,Choi Y D,Harn C H.2007.Successful genetic transformation of Chinese cabbage using phosphomannose isomerase as a selection marker.Plant Cell Reports,26(3):337-344.

    Okkels F T,Ward J L,Joersbo M.1997.Synthesis of cytokinin glucuronides for the selection of transgenic plant cells.Phytochemistry,46(5):801-804.

    Onouchi H,Nishihama R,Kudo M,Machida Y,Machida C.1995.Visualization of site-specific recombination catalyzed by a recombinase from Zygosaccharomyces rouxii in Arabidopsis thaliana.Molecular and General Genetics,247(6):653-660.

    Ow D W,Medberry S L.1995.Genome manipulation through site-specific recombination.Plant Sci,14:239-261.

    Pavletich N P,Pabo C O.1991.Zinc finger-DNA recognition:crystal structure of a Zif268-DNA complex at 2.1A.Science,252:809-817.

    Perl A,Galili S,Shaul O,Ben-Tzvi I,Galili G.1993.Bacterial dihydrodipicolinate synthase and desernsitized aspartate kinase:two novel selectable markers for plant transformation.Nature Biotechnology,11:715-718.

    Puchta H.2003.Marker-free transgenic plants.Plant Cell Tissue Organ Culture,74:123-134.

    Reiner A M.1975.Genes for ribitol and D-arabitol catabolism in Escherichia coli:their loci in strains and absence in K-12 and B strains.Journal of Bacteriology,123:530-536.

    Stuber R H,Horie K,Camey P,Hudson E A,Tarasova N I,Gaitanaris G A,Pavlakis G N.1998.Development and applications of enhanced green fluorescent protein mutants.Bio Techniques,24(3):462-471.

    Sugita K,Matsunaga E,Ebinuma H.1999.Effective selection system for generation marker-free transgenic plants independent of sexual crossing.Plant Cell Rep,18:941-947.

    Sugita K,Kasahara T,Matsunaga E,Ebinuma H.2000.A transformation vetor for the production of marker-free transgenic plants containing a single copy transgene at high frequency.The Plant Journal,22(5):461-469.

    Thirukkumaran G,Khan R S,Chin D P,Nakamura L,Mii M.2009.Isopentenyl transferase gene expression offers the positive selection of marker-free transgenic plant of Kalanchoe blossfeldiana.Plant Cell Tissue and Organ Culture,97(3):237-242.

    Tougou M,Yamagishi N,F(xiàn)urutani N,Kaku K,Shimizu T,TAkahata Y,Sakai J,Kanematsu S,Hidaka S.2009.The application of the mutated acetolactate synthase gene from rice as the selectable marker gene in the production of transgenic soybeans.Plant Cell Reports,28(5):769-776.

    Weisser P,Kramer R,Sprenger G A.1996.Expression of the Escherichia coli pmi gene,encoding phosphomannoseisomerase in Zymomonas mobilis,leads to utilization of mannose as a novel growth substrate,which can be used as a selective marker.Appl Environ Microbiol,62(11):4155-4161.

    You S J,Liau C H,Huang H E,F(xiàn)eng T Y,Prasad V,Hsiao H-h,Lu J C,Chan M T.2003.Sweet pepper ferredoxin-like protein gen as novel selection marker for orchid transformation.Planta,217:60-65.

    Zhang C L,Chen D F,Mcorma A C,Scott N W,Elliott M C,Slater A.2001.Use of the GFP reporter as a vital marker for Agrobacterium-mediated transformation of sugar beet(Beta vulgaris L.).Molecular Biotechnology,17(2):109-117.

    Zhu Z G,Wu R.2008.Regeneration of transgenic rice plants using high salt for selection without the need for antibiotics or herbicides.Plant Science,174(5):519-523.

    Zubko E,Scutt C,Meyer P.2000.Intrachromosomal recombination between attP regions as a tool to remove selectable marker genes from tobacco transgenes.Nature Biotechnology,18:442-445.

    Zuo J,Niu Q W,Chua N H.2000.Technical advance:an estrogen receptor-based transactivator XVE mediates highly inducible gene expression in transgenic plants.Plant Journal,24(2):265-273.

    Zuo J,Niu Q W,M?ller S G,Chua N H.2001.Chemical-regulated,site-specific DNA excision in transgenic plants.Nature Biotechnology,19:157-161.

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