張 潔
(山西農(nóng)業(yè)大學信息學院,山西太谷030801)
總RNA提取技術是一項分子生物學基本實驗技術,目前已建立了許多RNA提取方法[1-3]。實驗室小規(guī)模提取總RNA最常用的是Chomezynski等[4-5]提出的異硫氰酸胍-酚-氯仿一步法,對大多數(shù)的動植物材料都能得到質(zhì)量很好的RNA樣品。但對富含多糖、糖蛋白等次生物質(zhì)的材料如大部分的真菌卻不適用,因為利用該方法提取的真菌RNA富含RNA酶,其會造成RNA的化學降解,會使多糖以及糖蛋白形成難溶的膠狀物,與RNA共沉淀下來[6]。
本研究對提取多糖、多酚的棉花RNA取得良好結(jié)果的CTAB酸酚法進行了改進,以棉花黃萎病菌株VD8的菌絲為材料,通過適當增加變性劑的濃度,有效地抑制RNA酶活性,用LiCl選擇性沉淀RNA和醋酸鈉沉淀祛除多糖,旨在為分子生物學實驗的順利進行提供便利。
用保存在試管里的棉花黃萎病菌株VD8(由江西農(nóng)業(yè)大學遺傳與種質(zhì)資源實驗室惠贈)復壯于PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng)5 d,將PDA培養(yǎng)基的黃萎病病菌菌落接種到裝有已滅菌的100 mLCzapek’s液體培養(yǎng)基的250 mL平底燒杯中,25℃振蕩培養(yǎng)8~10 d。然后將黃萎病菌系培養(yǎng)物經(jīng)4層紗布過濾,用液氮速凍紗布上的菌絲,保存于-80℃冰箱中備用。
RNA 提取緩沖液:1.4 mol/L NaCl,0.1 mol/L Tris·HCl(pH 值為 8.0),20 mmol/L EDTA,2%CTAB,2%PVP,2% β- 巰基乙醇;8 mol/LLiCl;異丙醇;70%乙醇;0.4 mol/L NaOH;3 mol/L NaAc(pH值為5.2);Tris平衡酚;氯仿;氯仿∶異戊醇(體積比24∶1)溶液;DEPC處理過的水。
器材處理。實驗中所用的玻璃器皿與用具均需在240℃下烘烤4 h,塑料制品在37℃下0.1%DEPC(焦碳酸二乙酯)水中浸泡12 h,然后經(jīng)高溫滅菌后方能使用。
(1)取1 g棉花黃萎病菌絲于研缽中,加液氮充分研磨成粉末狀,然后轉(zhuǎn)移到10 mL離心管中;往離心管中加入5 mL的RNA提取緩沖液,振蕩混勻,65℃水浴約20 min,中途混合2~3次。(2)再加入0.6體積的氯仿,來回充分混勻,然后冰浴10 min;4℃,8 000 r/min離心20 min,將上清液轉(zhuǎn)移到另一10 mL的新離心管中,再加入1/3體積的8 mol/L LiCl溶液,混合均勻,然后冰浴 4 h。(3)4℃,8 000 r/min離心 20 min,棄去上部溶液,沉淀用70%乙醇洗滌,將洗滌液轉(zhuǎn)移到一2 mL離心管中,4 000 r/min離心5 min,吸去乙醇溶液,用真空泵將沉淀抽干,加2 mL的DEPC水溶解沉淀,加0.8體積的酸酚/氯仿溶液(體積比1∶1),充分混合均勻,然后室溫靜置5 min;4℃,12 000 r/min離心 20 min,將上清液轉(zhuǎn)移到另一2 mL的新離心管中,再重復用酸酚/氯仿溶液抽提1次;上清液加0.8體積氯仿抽提1次,吸取上清液并加入1/10體積3 mol/L NaAc(pH值5.2)溶液和1體積預冷的異丙醇,-20℃放置 2 h。(4)4 ℃,12 000 r/min 離心 20 min,收集RNA沉淀,用70%乙醇洗滌RNA沉淀2次,真空干燥后再加入100 μL的DEPC水,使之充分溶解,放于-80℃冰箱備用。
電泳槽用0.4 mo1/LNaOH浸泡4 h以上,采用DEPC水配制的pH值為8.0的Tris-醋酸-EDTA電泳緩沖液TAE,用1%的非變性瓊脂糖凝膠檢測。取黃萎病菌絲RNA1 μL進行電泳檢測。電壓120 V,電泳15 min。
提取的RNA樣品取1 μL用backman DU 640 核酸 - 蛋白分析儀測定 OD230,OD260,OD280的吸光度。
提取的棉花黃萎病菌絲RNA經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果表明,黃萎病菌絲RNA的28 S rRNA與18 S rRNA帶型整齊,基本不拖尾,而且28 S rRNA帶的亮度明顯高于18 S rRNA,說明RNA未發(fā)生降解,完整性較好(圖1)。有少量的DNA污染時,可以用不含RNA酶的DNA酶進行降解處理[7]。
提取的RNA樣品用backman DU640核酸-蛋白分析儀測定 OD230,OD260,OD280的吸光度,結(jié)果表明,OD280/OD260值界于 1.8~2.1之間,OD260/OD230值為2.54,說明RNA樣品中沒有蛋白質(zhì)和鹽的污染,質(zhì)量較好,完全可適合分子生物學進一步研究。
棉花黃萎病菌絲富含多糖和次生物質(zhì),難于提取到高質(zhì)量的RNA。本實驗發(fā)現(xiàn),菌絲在取樣過程中容易受到外源RNA酶降解,樣品放長時間后提取質(zhì)量會下降,這是由于菌絲培養(yǎng)過程中并沒有RNA酶抑制劑,外源RNA酶較多,不能被消除,因此,建議樣品保存時間不要過長,以免影響到RNA的提取質(zhì)量。
本研究針對真菌菌絲次生物質(zhì)含量高的特點,對CTAB提取RNA法進行改良。首先,將β-巰基乙醇的用量提高到2%,這樣在提取過程中可以有效地抑制內(nèi)源性RNA酶活性和防止酚類化合物的氧化。
研究者針對富含多糖植物組織的RNA提取,提出了利用LiCl選擇性沉淀RNA[8]和醋酸鈉沉淀多糖的改進方法。通過2次酸性條件下的酚/氯仿抽提,有效地去除DNA和蛋白質(zhì)污染。用LiCl選擇性地沉淀RNA,可以除去大部分的DNA;在有鈉鹽的條件下,用異丙醇選擇性沉淀RNA,可以除去高含量的多糖。用LiCl選擇性沉淀RNA時,建議時間不要太長,過長則大量的多糖很容易包裹RNA沉淀下來[9]。杜中軍等[10]用LiCl沉淀提取芒果果肉組織RNA時,也出現(xiàn)了類似的結(jié)果。研究者經(jīng)過幾次對比,4 h就能達到沉淀RNA的效果。此外,該方法對含有多酚的組織材料提取RNA也有很好的效果[11]。用改進的CTAB酸酚法提取真菌菌絲RNA的方法操作簡單、迅速,在10 h之內(nèi)就能提取出RNA,其適用于含次生物質(zhì)豐富的真菌RNA提取。
[1]李晶,王亦學,鄭德剛,等.一種簡單高效提取棉花不同組織總 RNA的方法[J].山西農(nóng)業(yè)科學,2009,37(5):17-19.
[2]劉芬,于秀梅,劉大群,等.一種植物總RNA的快速提取方法[J].華北農(nóng)學報,2010,25(2):140-144.
[3]杜道海,周志剛.缺刻緣綠藻總RNA提取方法的比較研究[J].華北農(nóng)學報,2008,23(增刊):103-106.
[4]Chomezynski P,Brar A K.Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction[J].Analytical Biochemistry,1987,162:156-159.
[5]趙雙宜,吳耀榮,夏光敏.介紹一種簡單高效的植物總RNA提取方法[J].遺傳,2002,24(3):337-338.
[6]Lewinsohn E.Simple isolation of functional RNA from woody stems ofgymnosperms[J].Plant BioReptr,1994,12:20-25.
[7]韓玉杰,賈煒瓏,王自霞,等.幾種提取植物DNA方法的比較[J].山西農(nóng)業(yè)科學,2008,36(7):17-19.
[8]De Vries S.Isolation of total and polysomal RNA from plant tissues[J].Plant Molecular BiologyManual,1993,36:1-13.
[9]方華舟.核糖核酸干擾(RNAi)研究進展及其在植物學中的應用[J].內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)科技,2007(5):70-74.
[10]杜中軍,徐兵強.一種改進的富含多糖的芒果組織中完整總RNA提取方法[J].植物生理學通訊,2005(2):202-204.
[11]蔣建雄,張?zhí)煺?利用CTAB酸酚法提取棉花組織總RNA[J].棉花學報,2003,15(3):166-168.