中國醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院急診科(110001) 葛百平 趙寶寶 馮 芳 王 鋼
作者:葛百平,中國醫(yī)科大學(xué)急診科研究生在讀,現(xiàn)工作單位沈陽急救中心。
導(dǎo)致系統(tǒng)性炎癥反應(yīng)綜合征(SIRS)和多器官功能衰竭(MODS)發(fā)生的主要誘因幾乎能誘發(fā)所有類型細胞的凋亡[1-2],免疫炎癥細胞凋亡紊亂及靶器官細胞大量凋亡的結(jié)果也可能是SIRS/MODS發(fā)生發(fā)展的因素之一[3-7]。SIRS的發(fā)生發(fā)展過程中有多種因素可以啟動細胞凋亡。目前的研究認(rèn)為,免疫細胞的大量凋亡是SIRS狀態(tài)下免疫功能低下的重要原因。高壓氧(HBO)治療應(yīng)用于SIRS狀態(tài)下的研究目前主要集中于炎癥、缺血/再灌注損傷等方面。而HBO對SIRS狀態(tài)免疫功能影響方面的研究比較少見。HBO治療指的是在2~3ATA(1ATA=101.325kPa)下給 100%的 O2,使動脈血氧分壓(PaO2)達2000mmHg(1mmHg=0.133kPa),組織血氧分壓達400mmHg。HBO是一氧化碳中毒、減壓病和動脈氣體栓塞首選治療方法,在放射性骨病、梭狀芽孢桿菌性肌壞死、難治性骨髓炎等疾病和皮膚移植中的療效也被充分肯定[8],目前關(guān)于其在嚴(yán)重創(chuàng)傷或感染導(dǎo)致的SIRS狀態(tài)下的應(yīng)用也逐步探索。脾臟作為機體最大的免疫器官,占全身淋巴組織總量的25%,含有大量的淋巴細胞和巨噬細胞,是機體細胞免疫和體液免疫的中心,在對臨床患者的研究中表明,SIRS患者存在明顯的脾臟淋巴細胞凋亡的增加[9]。本實驗就正常及SIRS狀態(tài)下的大鼠脾細胞凋亡為對象,研究HBO治療對于正常及SIRS狀態(tài)下機體的免疫功能的影響。
1.1 實驗動物與分組 健康雄性SD大鼠50只,購自中國醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心,體重約140~180g,隨機分為5組,每組10只。A組:腹腔注射等量生理鹽水;B組:腹腔注射等量生理鹽水,做3次HBO;C組:腹腔注射酵母多糖-石蠟懸液(500mg/kg);D組:腹腔注射酵母多糖-石蠟懸液(500mg/kg),做1次HBO;E組:腹腔注射酵母多糖-石蠟懸液(500mg/kg),做3次HBO。
1.2 主要試劑、儀器 酵母多糖-A(Sigma公司);AnnexinV-FITC凋亡檢測試劑/試劑盒(Biovison公司);流式細胞儀,DWC400A/02-1型動物HBO艙。
1.3 大鼠SIRS模型建立 將酵母多糖粉劑和無菌液體石蠟混合,高頻振蕩15分鐘,100℃水浴80分鐘滅菌,制成濃度為100mg/mL的酵母多糖A-石蠟混懸液,存放于4℃?zhèn)溆?。臨用前40℃ 水浴復(fù)溫,高頻振蕩15分鐘后供注射。大鼠實驗前18小時開始禁食,不禁水。C、D、E組以500mg/kg體重予大鼠腹腔注射酵母多糖A-石蠟懸液,A、B組注射等量生理鹽水。
1.4 HBO治療方案 1次HBO的時間為腹腔注射后4小時,3次HBO的時間分別為腹腔注射后4小時、10小時、18小時。每次 HBO都遵循以下方案:100%純氧洗艙5分鐘,以清除艙內(nèi)原有空氣。勻速加壓至2ATA(15分鐘),用已校對的測氧儀測艙內(nèi)氧濃度達90%以上,期間以4L/min的速度持續(xù)通O2避免CO2蓄積,并將壓力維持在2ATA。1小時后以同樣速度勻速減至常壓,出艙。
1.5 標(biāo)本采集及檢測 腹腔注射24小時后,標(biāo)記大鼠順序殺鼠取脾、標(biāo)號,脾臟剪至糊狀,100目篩濾過(加PBS),離心1000rpm10分鐘,棄上清,低滲休克法溶解紅細胞,RPMI1640調(diào)整細胞濃度1×106/mL,取上述液體0.1mL進行如下步驟:4℃離心10分鐘,棄上清,加入冷PBS1mL,輕輕震蕩,于4℃下1000rpm離心10分鐘,棄上清,重復(fù)2次,加200μL Buffer,加 10μLAnnexinV-FITC,加 PI10μL,置于25℃,15 分鐘,加300μLBuffer,30 分鐘內(nèi)上機檢測,以上按照AnnexinV-FITC凋亡檢測試劑/試劑盒說明書操作。
1.6 統(tǒng)計方法 用SPSS18.0forWindows軟件分析數(shù)據(jù)。各組數(shù)值用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用One-WayANOVA方法,P<0.05為差異有顯著性。
2.1 大鼠SIRS模型建立效果 腹腔注射酵母多糖-石蠟溶液組大鼠呼吸急促,伴有明顯喘鳴,皮膚黏膜發(fā)紺,出汗,毛色灰暗,部分大鼠有鼻出血,腹脹,腹瀉。大鼠進食明顯減少,活動差,對外界刺激無反抗。殺鼠后,見SIRS組大鼠腹腔滲出增多,腸管擴張,程度不一。肝臟呈暗紅色或暗紫色。肺臟可見不同程度腫脹,部分可見充血出血點。心臟、腎臟、脾臟、胰腺無明顯大體改變。
2.2 HBO治療的影響
2.2.1 HBO對正常脾細胞凋亡的影響 在本次實驗中,經(jīng)過HBO治療的大鼠脾細胞凋亡有增加,但與正常組相比較,差異無顯著性(P>0.05)。
2.2.2 SIRS狀態(tài)對大鼠脾細胞凋亡的影響 在本實驗中,SIRS狀態(tài)下大鼠脾細胞的凋亡率比對照組有明顯升高(P <0.05)。
2.2.3 HBO對 SIRS大鼠脾細胞凋亡的影響 在SIRS組中,HBO顯示了明顯的作用,無論是1次HBO組,還是3次HBO組,凋亡率均明顯減少(P<0.05),但此實驗中,1次 HBO組和3次HBO組并未發(fā)現(xiàn)有明顯差異(P>0.05)。各組脾細胞凋亡比例分別是A組(13.30±8.94)%;B組為(16.25±11.24)%;C 組為(25.40 ±4.17)%;D 組為(12.91 ±3.67);E 組為(15.97 ±4.27)%。各組間比較,B組與A組比較,P >0.05;C組與A、B組比較,P<0.05;D組、E組與C組比較,P<0.05;D組與E組比較,P >0.05。
各組脾細胞凋亡比例的比較,見圖1。
圖1 各組脾細胞凋亡比例的比較
SIRS概念是上世紀(jì)90年代提出,經(jīng)10余年的研究探索,發(fā)現(xiàn)從感染、創(chuàng)傷等病因發(fā)展到MODS的過程中,都存在著一條共同通路,即SIRS。SIRS具有以下特征:1)體溫>38℃或<36℃。2)心率>90次/分。3)呼吸 >20次/分或 PaCO2<32.33mmHg。4)血白細胞 >12×109/L或<4 109/L,或未成熟粒細胞>103。具備上述表現(xiàn)2種或以上可確認(rèn)為SIRS,上述標(biāo)準(zhǔn)后于2001年增加了炎癥指標(biāo)及高排低阻的血液動力學(xué)指標(biāo),白細胞介素-6(IL-6)達 279 ~ 5979pg/L 被 認(rèn)為 存 在 SIRS[10]。Bone將典型的SIRS分成5個時期:第1期為局部炎癥反應(yīng)期,炎癥反應(yīng)局限于感染或損傷局部;第2期為全身炎癥反應(yīng)始動期,早期的促炎及隨后的抗炎介質(zhì)進入體循環(huán);第3期為全身炎癥反應(yīng)期,機體出現(xiàn)失去控制的,自我持續(xù)放大和自我破壞的炎癥,表現(xiàn)為播散性炎細胞活化、炎癥介質(zhì)泛濫形成瀑布效應(yīng),并由此引起遠隔部位的炎癥反應(yīng),引起組織損傷。第4期為代償性抗炎反應(yīng)綜合征(CARS)期,抗炎反應(yīng)過度,導(dǎo)致免疫功能抑制及對感染的控制和抵抗能力下降;第5期為免疫不協(xié)調(diào)期,表現(xiàn)為多臟器功能失調(diào),病死率高,即MODS[11-12]。失控的炎癥反應(yīng)導(dǎo)致的免疫功能失調(diào)是SIRS狀態(tài)的特點。
細胞凋亡又被稱為程序性細胞死亡(PCD),是一種重要的生命現(xiàn)象,不僅出現(xiàn)在生理情況下,更與腫瘤、自身免疫性疾病及退行性神經(jīng)病變等多種疾病密切相關(guān)。在近年來的研究中,細胞凋亡在SIRS到MODS的發(fā)生發(fā)展的過程中備受關(guān)注[13]。
SIRS狀態(tài)下,機體處于強烈應(yīng)激狀態(tài),全身血流重新分布,胃腸、肝膽系統(tǒng)、腎臟甚至肺臟血管強烈收縮,內(nèi)臟缺血缺氧。持續(xù)的缺氧,長時間的高濃度兒茶酚胺刺激,內(nèi)源性阿片肰對腎上腺能受體(AR)的抑制等原因,使全身的AR敏感性降低甚至失敏,此時內(nèi)臟血管重新開放,造成內(nèi)臟組織的缺血再灌注損傷(IR),自由基、炎癥介質(zhì)及細胞因子并大量釋放,內(nèi)臟瘀血缺氧,微循環(huán)障礙,細胞能量代謝障礙[14]。眾所周知,這些因素都可以導(dǎo)致免疫細胞和實質(zhì)細胞凋亡,免疫細胞大量凋亡的結(jié)果會導(dǎo)致免疫功能低下[7,15],實質(zhì)細胞的凋亡則產(chǎn)生器官功能障礙[16]。
有研究證實,線粒體是缺血、缺氧損害的核心靶細胞器,線粒體損害是全身性缺血、缺氧損害的最關(guān)鍵環(huán)節(jié)。近年來的研究表明,細胞凋亡過程中,線粒體起到了至關(guān)重要的作用。線粒體是細胞生命活動控制中心,它不僅是細胞呼吸鏈和氧化磷酸化的中心,而且是細胞凋亡調(diào)控中心,與凋亡相關(guān)的很多關(guān)鍵事件都發(fā)生于線粒體,在凋亡的線粒體途徑中,線粒體上的線粒體通透性轉(zhuǎn)變孔道(PT孔道)被認(rèn)為是細胞的生死開關(guān),PT孔開放會引起線粒體跨膜電位ΔΨm下降和細胞色素C釋放,一旦線粒體跨膜電位因能量代謝障礙而耗散,細胞將進入不可逆的凋亡[17-18]。
HBO對機體SIRS狀態(tài)的治療作用是系統(tǒng)而不是局部的增加氧張力,提高氧分壓,可以改變血流攜氧方式,以物理溶解的方式向缺血組織供氧,增加氧的彌散距離,甚至能夠到達因微循環(huán)阻塞而紅細胞不能到達的組織,從而改善微循環(huán),改善缺血、缺氧組織血供,甚至可以使組織達到無血存活。研究顯示,HBO治療可以減少致炎介質(zhì)的數(shù)量,有明顯的抗炎作用。HBO治療酵母多糖誘導(dǎo)休克的大鼠實驗研究證實,HBO治療減少SIRS狀態(tài)下TNF-alpha分泌[19]。創(chuàng)傷失血性休克復(fù)蘇后大鼠腸道組織TNF-alpha水平明顯升高,HBO治療顯著降低TNF-alpha水平,抑制過度炎癥反應(yīng)[20]。Kaelin等在鼠游離皮瓣移植應(yīng)用HBO處理的研究中發(fā)現(xiàn),SOD活性明顯升高,從而減少氧自由基。HBO治療能夠改善缺血、缺氧組織的供氧,阻斷細胞能量代謝障礙,穩(wěn)定線粒體跨膜電位 ΔΨm[21]。
本實驗結(jié)果顯示,SIRS狀態(tài)下脾細胞凋亡明顯增加(P <0.05),而HBO治療顯著降低了SIRS狀態(tài)下大鼠脾細胞凋亡(P<0.05)。HBO治療1次與3次組并未有明顯差異(P >0.05),這說明HBO治療能減少SIRS狀態(tài)下的脾細胞凋亡,且這種作用不依賴于暴露的劑量和時間。HBO治療減少脾細胞凋亡可能的機制,首先是HBO治療能改善機體缺血缺氧,改善微循環(huán),保證能量代謝,維持 ATP水平,阻止線粒體損傷,防止細胞凋亡;其次HBO治療有抑制過度的炎癥反應(yīng)作用,減少TNF-alpha等炎癥介質(zhì),從而抑制脾細胞凋亡;再次,HBO治療可能通過減少自由基的產(chǎn)生,抑制生物膜的脂質(zhì)過氧化,從而阻斷細胞的凋亡過程。
研究結(jié)果[23-25],給予HBO治療,可以導(dǎo)致自由基產(chǎn)生,隨后SOD活性反應(yīng)性的升高,結(jié)果導(dǎo)致總體上自由基減少,但隨著治療劑量的增加,SOD的耗盡,自由基產(chǎn)生會再次增加。因此,HBO治療應(yīng)用于臨床,其治療時機、劑量,以及治療中抗氧化劑的應(yīng)用等都需要進一步研究。目前關(guān)于HBO治療能否阻斷SIRS狀態(tài)發(fā)展到MODS的研究已經(jīng)有所開展,本實驗表明HBO治療在這方面有廣闊的前景。
[22]
[1] 許永華,楊興易.危重病的細胞凋亡發(fā)生機制及其治療前景[J].急救醫(yī)學(xué)雜志,2003,23(6):407
[2] 許國根,王弋,繆群,等.全身炎癥反應(yīng)綜合征患者抗炎因子對T淋巴細胞凋亡的影響[J].中華急診醫(yī)學(xué)雜志,2002,11(4):249
[3] Cantaluppi V,Assenzio B,Pasero D,et al.Polymyxin-B hemoperfusion inactivates circulating proapoptotic factors[J].Intensive Care Med,2008,34(9):1638
[4] Mariano F,Cantaluppi V,Stella M,et al.Circulating plasma factors induce tubular and glomerular alterations in septic burns patients[J].Crit Care,2008,12(2):42
[5] Kucklebrug CJ,Tiwari R,Czuprynski CJ.Endothelial cell apoptosis induced by bacteria-activated platelets requires caspase-8 and-9 and generation of reactive oxygen species[J].Thromb Haemost,2008,99(2):363
[6] Gambim MH,Carmo Ade O,Marti L,et al.Platelet-derived exosomes induce endothelial cell apoptosis through peroxynitrite generation:experimental evidence for a novel mechanism of septic vascular dysfunction[J].Crit Care,2007,11(5):107
[7] Hotchkis RS,Chang KC,Gmyson MH,et al.Adoptive transfer of apoptotic splenocytes worsens survival,whereas adoptive transfer of necrotic splenoeytes improves survival in sepsis[J].Proc Natl Acad Sci USA,2003,100(11):6724
[8] Al-Waili NS,Butler GJ,Petrillo RL,et al.Hyperbaric oxygen and lymphoid system function:A review supporting possible intervention in tissue transplantation[J].Technol Health Care,2006,14(6):489
[9] Hotchkiss RS,Tinsley KW,Swanson PE,et al.Sepsis-induced apoptosis causes progressive profound depletion of B and CD4+T lymphocytes in humans[J].J Immunol,2001,166(11):6952
[10] Levy MM,F(xiàn)ink MP,Marshall JC,et al.2001 SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS international sepsis definitions conference[J].Crit Care Med,2003,31(4):1250
[11] Martignoni A,Tschep J,Goetzman HS,et al.CD4-expressing cells are early mediators of the innate immune system during sepsis[J].Shock,2008,29(5):591
[12] 黃志英.感染性休克研究進展[J].中國衛(wèi)生檢驗雜志,2009,19(3):709
[13] Hotchkiss RS,Swanson PE.Apoptotic cell death in patients with sepsis,shock and multiple organ dysfunction[J].Crit Care Med,1999,27(7):1230
[14] 龍曉弘,趙曉琴.多器官功能障礙綜合征發(fā)病機制研究進展[J].蛇志,2007,19(2):145
[15] Wesche DE,Lomas-Neira JL,Perl M,et al.Leukocyte apoptosis and its significance in sepsis and shock[J].J Leukoc Biol,2005,78(2):325
[16] Hori Y,Takeyama Y,Ueda T,et al.Macrophage-derived transforming growth factor-beta1 induces hepatocellular injury via apoptosis in rat severe acute pancreatitis[J].Surgery,2000,127(6):641
[17] 梁晚益,黃躍生,楊宗城.嚴(yán)重?zé)齻缙谛募【€粒體磷脂變化及其機制[J].中華創(chuàng)傷雜志,2001,17(7):416
[18] 謝燕,朱光旭,江海洪,等.缺氧-復(fù)氧對心肌細胞NRF1與mt2TFR表達的影響[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報,2001,23(12):1399
[19] Yamada T,Taguchi T,Hirata Y,et al.The protective effect of hyperbaric oxygenation on the small intestine in ischemia-reperfusion injury[J].J Pediatr Surg,1995,30(6):786
[20] 金立方,王為成,王鋼.HBO防止創(chuàng)傷/失血性休克復(fù)蘇后大鼠腸道缺血-再灌注損傷[J].中華急診醫(yī)學(xué)雜志,2009,18(11):1183
[21] Kaelin CM,Im MJ,Myers Ra,et al.The effects of hyperbaric oxygen on free flaps in rats[J].Arch Surg,1990,125(5):607
[22] Kudchodkar B,Jones H,Simecka J,et al.Hyperbaric oxygen treatment attenuates the pro-inflammatory and immune responses in apolipoprotein E knockout mice[J].Clin Immunol,2008,128(3):435
[23] Buras JA,Holt D,Orlow D,et al.Hyperbaric oxygen protects from sepsis mortality via an IL-10-dependent mechanism[J].Crit Care Med,2006,34(10):2624
[24] Chen MF,Chen HM,Ueng SWN,et al.Hyperbaric oxygen pretreatment attenuates hepatic reperfusion injury[J].Liver,1998,18(2):110
[25] G Thom S.Functional inhibition of leukocyte b2 integrins by hyperbaric oxygen in carbon monoxide-mediated brain injury in rats[J].Toxicol Appl Pharmacol,1993,123(2):248