李彥 牛忠英 湯楚華 包博 師天鵬 司少艷
(1.解放軍總醫(yī)院 軍醫(yī)進修學(xué)院,北京 100853;
2.解放軍第306醫(yī)院 全軍口腔疾病診治中心;3.病理實驗科,北京 100101)
三維培養(yǎng)模型中胰島素樣生長因子-Ⅰ對人牙周膜細胞增殖及堿性磷酸酶活性的影響
李彥1,2牛忠英2湯楚華2包博2師天鵬2司少艷3
(1.解放軍總醫(yī)院 軍醫(yī)進修學(xué)院,北京 100853;
2.解放軍第306醫(yī)院 全軍口腔疾病診治中心;3.病理實驗科,北京 100101)
目的 了解胰島素樣生長因子-Ⅰ(IGF-Ⅰ)在三維培養(yǎng)條件下對人牙周膜細胞(hPDLCs)增殖及堿性磷酸酶(ALP)活性的影響。方法 通過組織塊法分離培養(yǎng)hPDLCs。采用旋轉(zhuǎn)細胞培養(yǎng)系統(tǒng)(RCCS)建立三維培養(yǎng)環(huán)境。將細胞分為4組,分別為陰性對照組、陽性對照組(三維培養(yǎng)組、IGF-Ⅰ組)、實驗組(三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組)。各組細胞分別培養(yǎng)1、3、5、7 d。采用甲基噻唑基四唑(MTT)法檢測各組各時間點細胞增殖情況,分光光度計法檢測ALP活性。結(jié)果 與陰性對照組相比,三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組細胞增殖自3 d時顯著增加(P<0.05),且高于三維培養(yǎng)組(P<0.05)。在培養(yǎng)3、5、7 d時,三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組ALP活性顯著高于陰性對照組(P<0.05);與三維培養(yǎng)組相比,三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組ALP活性在3、5、7 d均顯著增高(P<0.05)。結(jié)論 IGF-Ⅰ在三維培養(yǎng)條件下仍可顯著促進hPDLCs增殖及其ALP活性。
人牙周膜細胞; 胰島素樣生長因子-Ⅰ; 增殖; 堿性磷酸酶; 三維培養(yǎng)
牙周炎是導(dǎo)致成年人失牙的主要原因,缺損牙周組織的修復(fù)催生了牙周組織工程的發(fā)展。而體外構(gòu)建具有生理結(jié)構(gòu)和功能的牙周組織需建立能夠使細胞三維生長的培養(yǎng)環(huán)境,細胞三維培養(yǎng)體系應(yīng)運而生。已有學(xué)者成功利用三維培養(yǎng)體系構(gòu)建了與體內(nèi)組織形態(tài)及功能相似的軟骨組織塊,并在唾液腺上皮細胞、成骨細胞、肝細胞、心肌細胞等多種細胞的三維培養(yǎng)上取得了進展[1-2]。筆者在前期研究中也成功地建立了人牙周膜細胞(human periodontal ligament cells,hPDLCs)的三維培養(yǎng)模型,并觀察到三維培養(yǎng)環(huán)境可促進細胞增殖及成骨向分化[3]。
胰島素樣生長因子-Ⅰ(insulin-like growth factor-Ⅰ,IGF-Ⅰ)是一種重要的調(diào)控因子。研究表明:IGF-Ⅰ在牙周膜細胞外基質(zhì)及血管周圍有表達,并可通過自分泌及旁分泌等方式作用于靶細胞,是調(diào)節(jié)細胞增殖和分化的關(guān)鍵因子。本研究中分離培養(yǎng)了hPDLCs,通過比較各組細胞增殖及堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)活性,探討IGF-Ⅰ在三維培養(yǎng)環(huán)境中對hPDLCs增殖及成骨向分化的調(diào)控作用,并且為進一步研究體外構(gòu)建牙周組織提供實驗依據(jù)。
雙抗PBS液、胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、DMEM培養(yǎng)基、谷氨酰胺、0.25%胰蛋白酶、抗壞血酸、甲基噻唑基四唑(methylthiazolyl tetrazolium,MTT)試劑(Gibco公司,美國),IGF-Ⅰ、ALP檢測試劑盒、Triton X-100、考馬斯亮蘭(Sigma公司,美國),二甲基亞砜(dimethylsulfoxide,DMSO)、青霉素、鏈霉素(Amresco公司,美國),抗波形絲蛋白抗體、抗角蛋白抗體(Dako公司,美國),流式細胞分析儀(Coulter公司,美國),紫外線分光光度儀(Eppendorf公司,德國),55mL旋轉(zhuǎn)細胞培養(yǎng)體系(rotary cell culture system,RCCS)(Synthecon公司,美國),軟骨細胞微載體(Cytodex-3,GE Healthcare公司,美國)。
1.2.1 細胞的培養(yǎng)和鑒定 經(jīng)受試者知情同意后,收集因正畸拔除、牙周組織健康、無齲的新鮮前磨牙或第三磨牙共8顆,經(jīng)雙抗PBS液及DMEM液反復(fù)清洗后刮取根中1/3牙周膜組織,剪成1mm3的小塊,以5mm間隔將所得組織塊均勻接種于25 cm2培養(yǎng)瓶瓶底,翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶,向內(nèi)加入4mL DMEM培養(yǎng)基(含10%胎牛血清、100μmol·L-1抗壞血酸、2mmol·L-1谷氨酰胺、1×105U·L-1青霉素、1×105U·L-1鏈霉素)。在37℃、5%CO2和飽和濕度條件下孵育2 h,使組織塊貼壁,再翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶,3 d后更換培養(yǎng)液,2~3 d換液1次,細胞匯合至培養(yǎng)瓶80%時用胰酶消化傳代,取生長良好的第1代細胞制備細胞爬片,用免疫組化SP法進行波形絲蛋白和角蛋白染色,檢測細胞來源并于光鏡下觀察。
1.2.2 實驗分組 為研究IGF-Ⅰ在三維培養(yǎng)環(huán)境中對hPDLCs增殖及ALP活性的影響,將細胞分為4組,分別為陰性對照組(即常規(guī)平皿培養(yǎng))、陽性對照組(三維培養(yǎng)組和IGF-Ⅰ組)和實驗組(三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組)。預(yù)實驗在三維模型中培養(yǎng)hPDLCs 72 h,經(jīng)MTT法檢測加入不同濃度IGF-Ⅰ(0.1、1、10、100μg·L-1)的各實驗組細胞增殖活性與對照組(三維培養(yǎng)但無IGF-Ⅰ加入)的差異。分光光度計法檢測各組ALP活性。結(jié)果顯示各實驗組增殖活性均顯著高于對照組(P<0.05),0.1μg·L-1組與100μg·L-1組間細胞增殖活性差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=26.741,P<0.05)。各實驗組的ALP活性均顯著高于對照組(P<0.05),100μg·L-1組的ALP活性顯著高于其他濃度組(F= 194.362,P<0.05)。根據(jù)預(yù)實驗結(jié)果選擇IGF-Ⅰ實驗濃度為100μg·L-1。
1.2.3 hPDLCs的三維培養(yǎng) 在生物反應(yīng)器中加入150 mg Cytodex-3及含10%FBS的DMEM培養(yǎng)基,37℃孵育2 h。將hPDLCs單細胞懸液緩慢均勻加入生物反應(yīng)器中并補充新鮮DMEM培養(yǎng)基至半量容積。反應(yīng)器重新放入37℃孵箱中孵育。12 h后從孵箱中取出反應(yīng)器,補充預(yù)熱的含10%FBS的α-MEM培養(yǎng)基,排凈氣泡,調(diào)整反應(yīng)器旋轉(zhuǎn)速度使微載體懸浮于培養(yǎng)液中,再將其放入37℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。
1.2.4 MTT法檢測細胞增殖 上述各組分別于培養(yǎng)1、3、5、7 d后,將細胞置于六孔板中,加2mL培養(yǎng)基及MTT液(5 g·L-1)20μL混勻,細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)4 h。小心吸棄孔內(nèi)培養(yǎng)液,每孔加入DMSO 0.2mL,室溫下放置并振蕩20min,充分溶解結(jié)晶物并混勻。酶標儀在波長490 nm下測定各孔光密度值(A值)。將每組A值的均值作為實驗結(jié)果,代表細胞增殖情況。
1.2.5 分光光度計法檢測ALP活性 檢測時間點同MTT實驗,方法如下:用0.01mol·L-1的PBS洗滌細胞3次,吸干,每孔加入50μL 0.2%的TritonX-100裂解液,37℃裂解30min,倒置顯微鏡下觀察到細胞形態(tài)完全消失后,使用ALP檢測試劑盒檢測各組細胞的ALP活性。采用國際臨床化學(xué)和實驗室醫(yī)學(xué)聯(lián)盟(IFCC)推薦法測定hPDLCs的ALP活性,考馬斯亮蘭微板法定量測定樣本中蛋白量,計算每毫克凍融蛋白中所含的ALP比活性。
采用SPSS 17.0軟件對實驗數(shù)據(jù)進行分析,計量資料應(yīng)用2組獨立樣本t檢驗比較均數(shù)差異,單因素方差分析(ANOVA)法分析組間是否存在差別,存在組間差別時采用Tukey法進行組間兩兩比較,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
培養(yǎng)細胞的鑒定結(jié)果為波形絲蛋白染色陽性(圖1),角蛋白染色陰性(圖2),證實為hPDLCs。
圖1 波形絲蛋白染色陽性 SP ×100Fig 1 Staining of crinkle fibroin was positive SP ×100
圖2 角蛋白染色陰性 SP ×100Fig 2 Staining of keratin was negative SP ×100
MTT法檢測不同培養(yǎng)條件下hPDLCs增殖活性的結(jié)果見表1。由表1可見,在培養(yǎng)1、3 d時,陰性對照組與三維培養(yǎng)組細胞增殖差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);培養(yǎng)5、7 d時,三維培養(yǎng)組細胞增殖顯著高于陰性對照組(P<0.05)。培養(yǎng)3、5、7 d時,三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組細胞增殖均顯著高于陰性對照組(P<0.05)。在培養(yǎng)3、5、7 d時,三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組細胞增殖活性較三維培養(yǎng)組顯著增強(P<0.05)。三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組與IGF-Ⅰ組相比,細胞增殖差異無統(tǒng)計學(xué)意義。
表1 不同培養(yǎng)條件下IGF-Ⅰ對hPDLCs細胞增殖的影響Tab 1 The effect of IGF-Ⅰon hPDLCs proliferation in different culture conditions ±s
表1 不同培養(yǎng)條件下IGF-Ⅰ對hPDLCs細胞增殖的影響Tab 1 The effect of IGF-Ⅰon hPDLCs proliferation in different culture conditions ±s
注:*為與陰性對照組相比,P<0.05;a為與三維培養(yǎng)組相比,P<0.05。
時間/d細胞增殖陰性對照組 三維培養(yǎng)組 IGF-Ⅰ組 三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組1 0.292±0.017 0.314±0.023 0.387±0.032 0.371±0.041 3 0.331±0.051 0.350±0.047 0.490±0.050* 0.507±0.054*a 5 0.376±0.032 0.446±0.019* 0.573±0.061* 0.581±0.056*a 7 0.412±0.030 0.533±0.051* 0.729±0.054* 0.768±0.062*a
與陰性對照組相比,三維培養(yǎng)組、IGF-Ⅰ組及三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組ALP活性在培養(yǎng)3、5、7d時均顯著增強(P<0.05)。與三維培養(yǎng)組相比,三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組ALP活性在培養(yǎng)3、5、7 d顯著增強(P<0.05)(圖3)。
圖3 不同培養(yǎng)條件下IGF-Ⅰ對hPDLCs ALP活性的影響Fig 3 ALP activity of hPDLCs in different culture conditions
hPDLCs是牙周膜的主體細胞,具有多種分化潛能[4],在維持牙周組織代謝更新的動態(tài)平衡中扮演了重要角色。牙周組織工程正是利用hPDLCs的多向分化特性,通過體外培養(yǎng)獲得具有生理結(jié)構(gòu)及功能的牙周組織。
牙周組織工程的關(guān)鍵在于構(gòu)建三維組織形態(tài)以及調(diào)控細胞分化。RCCS可使細胞隨所附著的載體旋轉(zhuǎn)并懸浮于培養(yǎng)液中,形成培養(yǎng)細胞的三維環(huán)境。有研究表明:RCCS建立的三維細胞培養(yǎng)體系有利于細胞聚集成組織樣結(jié)構(gòu),并可使細胞間橋連增多[5-6]。這一技術(shù)使體外構(gòu)建三維組織結(jié)構(gòu)成為可能,并已在軟骨細胞、成骨細胞、心肌細胞、唾液腺上皮細胞、卵泡瘤細胞以及肝細胞等多種細胞的三維培養(yǎng)中取得進展[7-12]。
生理狀態(tài)下,hPDLCs的各向分化受多種生長因子的共同調(diào)控。在體外三維培養(yǎng)條件下,模擬體內(nèi)環(huán)境加入相應(yīng)生長因子,將有助于誘導(dǎo)hPDLCs的多向分化,從而構(gòu)建具有生理結(jié)構(gòu)及功能的牙周組織。IGFs廣泛存在于機體組織,其中IGF-Ⅰ在hPDLCs外基質(zhì)及血管周圍含量較高,并通過旁分泌等方式作用于周圍細胞[13]。研究表明:IGF-Ⅰ在間充質(zhì)細胞、成骨細胞及軟骨細胞等細胞類型中扮演著重要的調(diào)控增殖、分化的角色[14-15]。研究結(jié)果顯示,IGF-Ⅰ能夠抑制牙周膜成纖維細胞的DNA裂解,并通過調(diào)控抗凋亡及前凋亡分子的表達而呈現(xiàn)出顯著的抗凋亡作用,此外還觀察到IGF-Ⅰ具有促進骨形成、抑制膠原降解以及介導(dǎo)其他生長因子調(diào)控等作用。然而上述研究均是在平皿培養(yǎng)環(huán)境下得出的,在三維培養(yǎng)模型中IGF-Ⅰ對hPDLCs的作用尚未見報道。
本實驗通過建立三維細胞培養(yǎng)模型,比較IGF-Ⅰ在常規(guī)平皿培養(yǎng)與三維培養(yǎng)的不同條件下對hPDLCs增殖及其ALP活性的影響。通過對MTT檢測結(jié)果的分析可知,與單純的三維培養(yǎng)相比,加入100μg·L-1的IGF-Ⅰ可進一步促進細胞增殖。說明IGF-Ⅰ在三維培養(yǎng)條件下仍具有顯著的促增殖作用。IGF-Ⅰ受體由四聚體糖蛋白組成,其中2個α亞基位于細胞外部,2個β亞基為跨膜蛋白。上述結(jié)果提示三維培養(yǎng)造成的懸浮狀態(tài)并未影響IGF-Ⅰ受體與IGF-Ⅰ的結(jié)合。
ALP作為一種膜結(jié)合蛋白,是牙周膜細胞中成骨細胞亞群的標志性蛋白[16],其活性可以反映牙周組織改建的活躍程度,ALP活性檢測也是評價hPDLCs功能的重要指標。本研究結(jié)果顯示,無論是常規(guī)培養(yǎng)條件還是三維培養(yǎng)條件,加入IGF-Ⅰ后ALP的活性都表現(xiàn)為顯著增強的趨勢,提示IGF-Ⅰ在常規(guī)培養(yǎng)和三維培養(yǎng)條件下均可以促進hPDLCs的成骨向分化。
綜合分析上述實驗結(jié)果可知,三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組在細胞增殖及ALP活性兩方面都顯著高于陰性對照組及陽性對照中的三維培養(yǎng)組,說明IGF-Ⅰ在三維培養(yǎng)下對hPDLCs具有促增殖和提高ALP活性的作用,并且IGF-Ⅰ與三維培養(yǎng)系統(tǒng)具有協(xié)同作用。但三維培養(yǎng)加IGF-Ⅰ組的細胞增殖及ALP活性與陽性對照中的IGF-Ⅰ組并無顯著差異(僅在5 d時ALP活性高于IGF-Ⅰ組),這一結(jié)果提示IGF-Ⅰ與三維培養(yǎng)系統(tǒng)間的協(xié)同作用并非簡單的相加關(guān)系,具體機制尚待深入研究。陽性對照的三維培養(yǎng)組在細胞增殖及ALP活性等方面均顯著高于陰性對照組,這一結(jié)果與之前研究結(jié)果一致,表明三維培養(yǎng)對細胞增殖及成骨向分化具有一定的促進作用。
本研究結(jié)果提示,通過RCCS構(gòu)建的三維培養(yǎng)模型可用于體外培養(yǎng)hPDLCs,且IGF-Ⅰ在此培養(yǎng)體系可顯著促進細胞增殖及成骨向分化。但成功構(gòu)建具有生理結(jié)構(gòu)及功能的牙周組織需多種生長因子的共同調(diào)控,掌握其作用規(guī)律尚待深入研究。
[1] Freed LE,Martin I,Vunjak-Novakovic G.Frontiers in tissue engineering.In vitro modulation of chondrogenesis[J].Clin Orthop Relat Res,1999,(367 Suppl):S46-S58.
[2] Gorti GK,Lo J,Falsafi S,et al.Cartilage tissue engineering using cryogenic chondrocytes[J].Arch Otolaryngol Head Neck Surg,2003, 129(8):889-893.
[3] Li S,Ma Z,Niu Z,et al.NASA-approved rotary bioreactor enhances proliferation and osteogenesis of human periodontal ligament stem cells[J].Stem Cells Dev,2009,18(9):1273-1282.
[4] Seo BM,Miura M,Gronthos S,et al.Investigation of multipotent postnatal stem cells from human periodontal ligament[J].Lancet, 2004,364(9429):149-155.
[5] Boehrs J,Zaharias RS,Laffoon J,et al.Three-dimensional culture environments enhance osteoblast differentiation[J].J Prosthodont, 2008,17(7):517-521.
[6] Facer SR,Zaharias RS,Andracki ME,et al.Rotary culture enhances pre-osteoblast aggregation and mineralization[J].J Dent Res, 2005,84(6):542-547.
[7] Meyers VE,Zayzafoon M,Douglas JT,et al.RhoA and cytoskeletal disruption mediate reduced osteoblastogenesis and enhanced adipogenesis of human mesenchymal stem cells in modeled microgravity[J].J Bone Miner Res,2005,20(10):1858-1866.
[8] Hasegawa M,Yamato M,Kikuchi A,et al.Human periodontal ligament cell sheets can regenerate periodontal ligament tissue in an athymic rat model[J].Tissue Eng,2005,11(3/4):469-478.
[9] Rutzky LP,Bilinski S,Kloc M,et al.Microgravity culture condition reduces immunogenicity and improves function of pancreatic islets1[J].Transplantation,2002,74(1):13-21.
[10] Song C,Duan XQ,Li X,et al.Experimental study of rat beta islet cells cultured under simulated microgravity conditions[J].Acta Biochim Biophys Sin(Shanghai),2004,36(1):47-50.
[11] Dabos KJ,Nelson LJ,Bradnock TJ,et al.The simulated microgravity environment maintains key metabolic functions and promotes aggregation of primary porcine hepatocytes[J].Biochim Biophys Acta,2001,1526(2):119-130.
[12] Khaoustov VI,Darlington GJ,Soriano HE,et al.Induction of threedimensional assembly of human liver cells by simulated microgravity[J].In Vitro Cell Dev Biol Anim,1999,35(9):501-509.
[13] Suda T,Takahashi N,Udagawa N,et al.Modulation of osteoclast differentiation and function by the new members of the tumor necrosis factor receptor and ligand families[J].Endocr Rev,1999, 20(3):345-357.
[14] Yasuda H,Shima N,Nakagawa N,et al.Identity of osteoclastogenesis inhibitory factor(OCIF)and osteoprotegerin(OPG):A mechanism by which OPG/OCIF inhibits osteoclastogenesis in vitro [J].Endocrinology,1998,139(3):1329-1337.
[15] Simonet WS,Lacey DL,Dunstan CR,et al.Osteoprotegerin:A novel secreted protein involved in the regulation of bone density [J].Cell,1997,89(2):309-319.
[16] Ivanovski S,Haase HR,Bartold PM.Expression of bone matrix protein mRNAs by primary and cloned cultures of the regenerative phenotype of human periodontal fibroblasts[J].J Dent Res, 2001,80(7):1665-1671.
(本文編輯 胡興戎)
The effect of insulin-like grow th factor-I on the proliferation and alkaline phosphatase activity of human periodontal ligament cells under three-dimensional culture system
LI Yan1,2,NIU Zhong-ying2,TANG Chu-hua2,BAO Bo2,SHI Tian-peng2,SI Shao-yan3.(1.Military Postgraduate Medical College,General Hospital of PLA,Beijing100853,China;2.Oral Disease Treatment Center of PLA,306Hospital of PLA,Beijing100101,China;3.Dept.of Pathology and Laboratory,306Hospital of PLA,Beijing100101,China)
ObjectiveTo investigate the effect of insulin-like growth factor-Ⅰ(IGF-Ⅰ)on the proliferation and alkaline phosphatase(ALP)activity of human periodontal ligament cells(hPDLCs)under three-dimensional(3D)culture system.MethodsThe hPDLCs were cultured from periodontium of human teeth by the outgrowth method.Rotary cell culture system(RCCS)was enrolled to set 3D culture system.Samples were set to four groups:Negative control group,positive control group(3D group,IGF-Ⅰgroup),and experimental group(3D with IGF-Ⅰgroup).Proliferation was tested with methylthiazolyl tetrazolium(MTT),and ALP activity was assayed by spectrophotometer at 1,3,5,7 d respectively.Results Compared with that of negative control group,cell proliferation increased significantly in 3D with IGF-Ⅰgroup since 3 d(P<0.05).Besides,the cell proliferation of 3D with IGF-Ⅰgroup was significantly higher than that of 3D group(P<0.05).ALP activity of 3D with IGF-Ⅰgroup was significantly higher than that of negative control group,and 3D group at 3,5,7 d(P<0.05).ConclusionIGF-Ⅰsignificantly promotes the proliferation and ALP activity of hPDLCs under 3D culture system.
human periodontal ligament cells; insulin-like growth factor-Ⅰ; proliferation; alkaline phosphatase;three-dimensional culture
R 780.2
A
10.3969/j.issn.1000-1182.2011.03.002
1000-1182(2011)03-0229-04
2010-12-28;
2011-04-05
國家自然科學(xué)基金資助項目(30870598)
李彥(1979—),女,天津人,主治醫(yī)師,碩士
牛忠英,Tel:010-66355041