陳琛,吳三橋,李新生,張小鶯,閆茂倉(cāng)
1 陜西理工學(xué)院 陜西省資源生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,漢中 723000
2 西北農(nóng)林科技大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,楊凌 712100
3 浙江省海洋水產(chǎn)養(yǎng)殖研究所,溫州 325005
植物、動(dòng)物等生物體生長(zhǎng)在充滿各種微生物的環(huán)境中,隨時(shí)面臨環(huán)境中病原微生物的挑戰(zhàn),抗菌肽(Antibacterial peptide,ABP) 是生物機(jī)體在抵御病原性微生物時(shí)產(chǎn)生的一類防御性小肽,是生物免疫防御系統(tǒng)的重要組成部分[1-3]。自從Boman首次從昆蟲中發(fā)現(xiàn)第一個(gè)抗菌肽天蠶素 (Cecropin) 以來(lái),目前已經(jīng)從昆蟲、哺乳動(dòng)物、兩棲動(dòng)物、植物、細(xì)菌、海洋生物等中發(fā)現(xiàn)的抗菌肽大約有1 598種[4-6]。綿羊骨髓細(xì)胞抗菌肽SMAP-29 (Sheep myeloid antibacterial peptides with 29 amino acids),是由意大利Bagella和美國(guó) Mahoney兩個(gè)不同的研究小組于 1995年同時(shí)發(fā)現(xiàn)[7-8],是從綿羊Cathelicidins前體蛋白的C端截取的含29個(gè)氨基酸殘基的Cathelicidin類抗菌肽,分子量為3.2 kDa。Mahoney等[8]首先化學(xué)合成并且檢測(cè)了它的生物活性。SMAP-29具有很強(qiáng)的抗細(xì)菌,抗真菌,抗衣原體、螺旋體,抗病毒,抗內(nèi)毒素活性,是一種非常有開發(fā)應(yīng)用潛力的抗感染肽[9-10]。
研究者基于SMAP-29的氨基酸序列和結(jié)構(gòu)設(shè)計(jì)了許多新的類SMAP-29抗菌肽,如Ovispirin-1、Novispirin G-10、Novispirin T-7和Novicidin等,目前SMAP-29抗菌肽家族共有30個(gè)成員。近年來(lái)出現(xiàn)了大量SMAP-29及SMAP-29家族抗菌肽的研究報(bào)道,且呈上升趨勢(shì)。本文綜述了 SMAP-29抗菌肽家族的基因和蛋白結(jié)構(gòu)、作用機(jī)制、生物功能,重點(diǎn)闡述了 SMAP-29結(jié)構(gòu)功能及分子設(shè)計(jì)的必要性和基于 SMAP-29一級(jí)、二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行分子設(shè)計(jì)策略,為 SMAP-29藥物設(shè)計(jì)和研究開發(fā)奠定了基礎(chǔ)。
抗菌肽 SMAP-29基因結(jié)構(gòu):其前體是由567 bp組成的一條編碼 160個(gè)氨基酸殘基的Cathelicidins基因片段,具有4個(gè)外顯子和3個(gè)內(nèi)含子(圖 2A)[11]。第1個(gè)外顯子編碼信號(hào)肽的 29個(gè)氨基酸殘基和前導(dǎo)肽 (Pro) 的部分序列,外顯子2、3編碼Cathelin蛋白信息,外顯子4編碼Cathelin的剩余序列和SMAP-29的成熟肽。在信號(hào)肽和Pro之間有一個(gè)信號(hào)肽酶識(shí)別位點(diǎn),可以被信號(hào)肽酶識(shí)別從而切除信號(hào)肽。Pro和SMAP-29成熟肽之間還有一個(gè)胰蛋白酶識(shí)別位點(diǎn),在蛋白酶的作用下,Cathelicidins前體變?yōu)槌墒祀?,再釋放到?xì)胞外發(fā)揮生物學(xué)功能。另外,整個(gè)基因結(jié)構(gòu)中有 EcoRⅠ、PstⅠB等多個(gè)酶切位點(diǎn),顯示了多種限制性片段多態(tài)性。
SMAP-29蛋白結(jié)構(gòu):SMAP-29一級(jí)結(jié)構(gòu)包括29個(gè)氨基酸,分子量為3 256 Da,序列中富含精氨酸 (Arg)、甘氨酸 (Gly) 兩種氨基酸殘基,29個(gè)氨基酸中共有6個(gè)Arg和5個(gè)Gly。其余氨基酸殘基分別為:亮氨酸、異亮氨酸、賴氨酸、纈氨酸、丙氨酸、脯氨酸和絲氨酸。經(jīng)圓二光譜分析和X線晶體衍射實(shí)驗(yàn)證明,抗菌肽SMAP-29在水相中呈無(wú)規(guī)則卷曲狀態(tài),但在含有SDS的水溶液中以α-螺旋形式存在,α-螺旋的N端起抗菌作用。在類脂質(zhì)環(huán)境中 8~17位氨基酸形成一個(gè)兩親性 α-螺旋結(jié)構(gòu),18~19位的脯氨酸呈中心鉸鏈區(qū)、20~28位的氨基酸形成SMAP-29抗菌肽的疏水片段,起溶血作用[12]。SMAP-29凈電荷為+10。
目前已知的 SMAP-29家族成員的氨基酸序列見表1。Ovispirin-1是從SMAP-29的N端截取的含有 18個(gè)氨基酸的 α-螺旋結(jié)構(gòu)的抗菌肽。將Ovispirin-1中的第10 位的異亮氨酸 (Ile) 用甘氨酸替代后篩選了具有抗菌活性的 Novispirin G-10; Novispirin G-10的第7 位Ile被蘇氨酸 (Thr) 替代后的抗菌肽命名為 Novispirin T-7;Novicidin是在Novispirin G-10的C端的Gly18→Phe。Sawai等[13]通過(guò)圓二光譜分析 (CD) 和核磁共振 (NMR) 研究表明Ovispirin-1、Novispirin G-10和Novispirin T-7在三氟乙醇 (TFE) 溶液中呈兩親性螺旋結(jié)構(gòu)(見圖2C)。Novicidin也是一個(gè)線性陽(yáng)離子α-螺旋抗菌肽。
表1 SMAP-29家族抗菌肽的氨基酸序列Table 1 Amino acid sequences of SMAP-29 and variants
圖1 SMAP-29和同系物的結(jié)構(gòu)Fig. 1 Structure of SMAP-29 and variants. (A) Gene structrus of SMAP-29. (B) Structure of SMAP-29 in solution[12]. (C) Structures of the three peptides[13].
SMAP-29分子結(jié)構(gòu)與功能之間的關(guān)系已經(jīng)開展過(guò)很多研究,基于SMAP-29的基本結(jié)構(gòu),通過(guò)從末端去除氨基酸合成不同長(zhǎng)度的類似物,以研究SMAP-29序列中起主要抗菌活性的氨基酸。Shin等[14]人工合成了幾種SMAP-29類似物,并檢測(cè)了它們的抗菌活性。與天然的SMAP-29相比,SMAP-29 (1-17) 和 22位、25位、27位賴氨酸 (K22,25,27) 替換了的 SMAP-29具有相對(duì)有效的抗菌活性 (MIC: 1.0~8.0 μmol/L),并且這2種類似物完全失去了溶血活性,而發(fā)生在 19 位 Ala替代 Pro的變化使SMAP-29的抗菌活性大大降低。說(shuō)明 SMAP-29的N-端兩親性α-螺旋區(qū)與抗菌活性密切相關(guān),C-端疏水區(qū)與溶血性有關(guān),而位于中心的19位的Pro對(duì)增強(qiáng)抗菌活性有很重要的作用。特別是[K2,7,13]-SMAP-29(1-17) 在高鹽環(huán)境下表現(xiàn)很高的抗菌活性,同時(shí)也失去了溶血活性。因此,這種短肽被認(rèn)為是誘人的抗菌藥物的候選者之一。SMAP-29是一個(gè) α-螺旋彎曲或折疊延伸構(gòu)型,在水相緩沖液中以無(wú)序的結(jié)構(gòu)存在,而在類膜環(huán)境中高度螺旋。用全長(zhǎng)的和截短了的SMAP-29分子實(shí)驗(yàn)揭示:全肽包含2個(gè)LPS結(jié)合區(qū),N-端的LPS結(jié)合域 (RGLRRLGR)比 C-端的 LPS結(jié)合域的結(jié)合 LPS效力更高。LPS與截短了的混合肽的結(jié)合試驗(yàn)表明這種協(xié)同主要是發(fā)生于分子內(nèi) (如:含有N-和C-端LPS結(jié)合位點(diǎn)的同一種小肽分子)。推斷有協(xié)同功能的多識(shí)別位點(diǎn)的出現(xiàn)使得SMAP-29可以和LPS高親和性結(jié)合。
根據(jù)結(jié)構(gòu)研究證明 α-螺旋結(jié)構(gòu)對(duì) SMAP-29的抗菌活性起到至關(guān)重要的作用。但是,這不是唯一的決定因素,可能與以下因素也有關(guān):1) 抗菌活性與肽本身的凈電荷有關(guān);2) 抗菌活性與沿螺旋軸的疏水性程度有關(guān);3) 抗菌活性與序列中陽(yáng)離子氨基酸殘基的百分比有關(guān)。
抗菌肽都是陽(yáng)離子型的或兩親性的,這一特征決定了它們的抗菌作用模式,肽的陽(yáng)離子部分與微生物膜的陰離子相互作用,并最終導(dǎo)致微生物膜的透化??咕呐c膜的作用方式主要有以下幾種[15]:桶板模型 (Barrel-stave model)、環(huán)孔模型 (Toroidalpore model) 和地毯模型 (Carpet model) 等 (圖2)。
SMAP-29是以穿孔方式作用于細(xì)胞的,但是以何種穿孔方式通過(guò)細(xì)胞膜尚無(wú)定論。在掃描電鏡下SMAP-29可以迅速引起大腸桿菌和銅綠假單胞菌外膜表面發(fā)生結(jié)構(gòu)變化,形成大量的水泡樣物質(zhì)。免疫電鏡下 SMAP-29能在瞬間穿透大腸桿菌細(xì)胞膜進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)。Lee等[16]對(duì)其類似物的作用機(jī)制的研究也證明了這一點(diǎn)。Orlov等認(rèn)為SMAP-29可以穿透各種細(xì)胞膜,使細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)膜和外膜極化或去極化,迅速誘導(dǎo)革蘭氏陽(yáng)性和陰性菌中的大量鉀離子外流[17]。Alessandra等用掃描電鏡研究SMAP-29的殺菌機(jī)理,認(rèn)為其主要機(jī)理是破壞細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu),直接通過(guò)磷脂雙分子層,形成能量和鹽離子依賴性通道,致使離子和其他物質(zhì)外流,最終達(dá)到殺菌的目的[18]。
Nielsen利用CD、石英晶體微天平 (QCM-D)、雙偏振干涉測(cè)量 (DPI) 和熒光分析法研究了Novicidin的作用機(jī)制,結(jié)果表明 Novicidin是地毯模式整合到細(xì)胞膜上而起到殺死細(xì)菌的作用[19]。作用步驟是α-螺旋的Novicidin首先以“地毯”模式聚集在細(xì)胞膜上,聚集到一定數(shù)量后瞬間產(chǎn)生大的孔洞,然后更多抗菌肽分子的加入,環(huán)繞著菌體切斷胞膜,使細(xì)菌從中部斷開,使細(xì)胞胞內(nèi)物質(zhì)泄露而殺死細(xì)菌[20]。
圖2 抗菌肽的作用機(jī)制 (棒狀代表抗菌肽,灰色疏水區(qū),白色親水區(qū))[21]Fig. 2 Mechanism of action of antibacterial peptides[21]. The cylinders represent antimicrobial peptides, hydrophobic areas are gray, and hydrophilicareas are white. (A) Barrel-stave pore model. (B) Thoroidal pore model. (C) Carpet model.
SMAP-29是一個(gè)廣譜、具有潛在開發(fā)應(yīng)用價(jià)值的抗菌肽,對(duì)多種G+、G?細(xì)菌,如金黃色葡萄球菌Staphyloccocus aureus、大腸桿菌Escherichia coli、綠膿桿菌Pseudomonas aeruginosa、肺炎克雷伯氏菌Klebsiella pneumoniae、 脆 弱 類 桿 菌 群 細(xì) 菌Bacteroides fragilis group、梭菌綱 (Clostridia) 中的產(chǎn)氣莢膜梭菌 Clostridium perfringens、難辨梭菌Clostridium difficile等標(biāo)準(zhǔn)株和 100種臨床分離的G+何G?均有很好的抑菌效果,SMAP-29最小抑菌濃度 (Minimum inhibitory concentration,MIC) 可達(dá)到0.09 μmol/L。對(duì)一些口腔疾病性細(xì)菌、肺炎疾病臨床性分離菌都有較好的抗菌活性,各種細(xì)菌的抗菌譜具體見表2。
SMAP-29能快速殺死病原體,在 1~2 h內(nèi)SMAP-29能完全的殺死病原體,而不是僅僅抑制細(xì)菌的生長(zhǎng)。0.3~3 μmol/L濃度的SMAP-29在幾分鐘就能快速殺滅甲氧西林耐藥金黃色葡萄球菌。為了證明其殺菌活性及機(jī)制,用透射電子顯微鏡和原子力顯微鏡研究表明抗菌肽可誘導(dǎo) S. aureus細(xì)胞裂解,胞漿內(nèi)容物外泄,菌體破裂導(dǎo)致死亡,能快速導(dǎo)致大量的細(xì)菌細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)發(fā)生損傷。SMAP-28也能快速有效殺滅細(xì)菌,測(cè)定細(xì)菌生長(zhǎng)和存活率實(shí)驗(yàn)表明在4 mg/mL (1.2 mmol/L) 濃度下,在5 min內(nèi)就能殺滅60%細(xì)菌數(shù)量,其家族的Ovispirin-1、Novispirin G-10、Novispirin T-7和Novicidin都具有較好的抗菌活性[22]。
真菌是具有真核和細(xì)胞壁的異養(yǎng)生物,它可引起動(dòng)植物的多種病害,不僅影響農(nóng)作物產(chǎn)量、動(dòng)物生長(zhǎng),而且影響人體健康,威脅人類生命安全,抗真菌藥物開發(fā)是真菌研究方面的一個(gè)重要課題。Benincasa等[23]系統(tǒng)研究了 SMAP-29、BMAP-27、BMAP-28、Protegrin-1 (PG-1) 和Indolicidin 5種抗菌肽對(duì)70多種臨床分離株的抗真菌活性,均有一定的抗菌活性,MIC值在0.5~32 μmol/L之間。
表2 SMAP-29的抗菌活性Table 2 Antimicrobial activity of SMAP-29
續(xù)表2
Vittorio等發(fā)現(xiàn)SMAP-29對(duì)鉤端螺旋體Leptospira interrogan和密螺旋體 Treponemainterrogan抗菌效果較強(qiáng) (MIC分別為3.84 μmol/L和9.72 μmol/L),而對(duì)包柔螺旋體 Borrelia interrogan的 MIC為61.2 μmol/L[34]。Donati等比較了Bac7、SMAP-29、BMAP-27、BMAP-28、PG-1和 LL-37等 6種Cathelicidin家族抗菌肽的抗衣原體活性,結(jié)果顯示SMAP-29抗沙眼衣原體 Chlamydia trachomatis和肺炎衣原體Chlamydia pneumoniae活性最強(qiáng) (MIC僅為 3 μmol/L)[35],其余 5種抗菌肽 MIC濃度達(dá)25 μmol/L時(shí)也不表現(xiàn)抗衣原體活性。
內(nèi)毒素是G?細(xì)菌死亡時(shí)裂解出來(lái)的細(xì)胞壁脂多糖 (LPS) 成分。LPS的基本結(jié)構(gòu)由O抗原、核心多糖和類脂A (lipid A) 三部分組成,其中類脂A是內(nèi)毒素的生物學(xué)活性主要毒性成分??咕牡亩嗑坳?yáng)離子能與LPS上的陰性磷酸鹽離子結(jié)合,從而競(jìng)爭(zhēng)性地抑制脂多糖結(jié)合蛋白 (LBP) 與 LPS結(jié)合,導(dǎo)致游離LPS不能得以轉(zhuǎn)運(yùn),使其刺激信號(hào)不能得以傳遞??咕倪€能抑制內(nèi)毒素誘導(dǎo)的前炎癥基因表達(dá),阻止分泌型蛋白炎癥介質(zhì),如抑制腫瘤壞死因子-α (TNF-α) 和內(nèi)毒素誘導(dǎo)的核轉(zhuǎn)位的核因子-κB (NF-κB) 亞單位的分泌,卻產(chǎn)生和釋放出多種趨化因子來(lái)維持其他前炎癥應(yīng)答,以達(dá)到選擇性抑制前炎癥應(yīng)答作用,預(yù)防內(nèi)毒素血癥。
SAMP-29在多微生物引起的盲腸結(jié)扎敗血癥中,可減少炎性介質(zhì)的產(chǎn)生和降低體內(nèi)LPS的循環(huán)水平。Tack等研究表明SMAP-29具有2個(gè)LPS結(jié)合位點(diǎn)和 1 個(gè)鉸鏈區(qū)[12]。Bartlett等[36]報(bào)道SMAP-29、Ovispirins和Novispirins具有LPS結(jié)合能力,體外測(cè)定了SAMP-29中和內(nèi)毒素的能力,半數(shù)有效濃度 (Median effective concentration values,EC50) 為3.3 μmol/L。Giacometti等[37]以2種小鼠內(nèi)毒素休克模型和 CD14+的小鼠巨噬細(xì)胞系 RAW 264.7研究了SMAP-29抗內(nèi)毒機(jī)制,大鼠腹腔注射E. coli 0111:B4 LPS,然后分成實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組,給1 mg/kg 多粘菌素B (Polymyxin B)、0.9%氯化鈉、1 mg/kg SMAP-29和20 mg/kg亞胺培南,測(cè)定血漿中的內(nèi)毒素、TNF-α-濃度,結(jié)果顯示SMAP-29能顯著降低血漿中的內(nèi)毒素和TNF-α濃度,SMAP-29與Polymyxin B無(wú)顯著差異。由于SMAP-29具有雙倍的抗內(nèi)毒素的能力,所以有望開發(fā)為預(yù)防內(nèi)毒素血癥的藥物。
SMAP-28可與 P. aeruginosa、Burkholderia cepacia和K. pneumoniae細(xì)菌分泌莢膜多糖相互作用。盡管SMAP-28具有一定的LPS結(jié)合能力,但是在SMAP-28≤20 μmol/L時(shí)不能抑制LPS誘導(dǎo)表達(dá)的 3個(gè)前炎因子基因 (白細(xì)胞介素-1B基因、CCL-2/MCP-1和CCL-3/MIP-1a)。
Giacometti等[38]研究了濃度為 100、10 μg/mL的4種抗菌肽 (SMAP-29、BMAP-28、PG-1和Bac7)與隱孢子蟲 Cryptosporidium parvum孢子體和卵囊在37 ℃分別作用0、5、10、15、20、30、40、50、60、120和180 min,結(jié)果SMAP-29顯示了最高的抗隱孢子蟲孢子體活性,10 min后完全抑制了隱孢子蟲孢子體活力。3 h后觀察對(duì)卵囊的抑制,發(fā)現(xiàn)SMAP-29抑制率為40%,較其他3種抗菌肽的抑制率高。
囊性纖維化病 (Cystic fibrosis,CF) 是歐美高加索人種中最普遍的致死性遺傳病。CF是由于氯離子通道蛋白基因的突變?cè)斐傻?,造成分泌黏液厚度增加,容易引起呼吸道的二次感染,這種感染是由幾種細(xì)菌引起的,其中一種是銅綠假單胞菌,能夠感染全部的 CF患者。Saiman等[32]研究了 5種cathelicidin抗菌肽 (LL37、CAP18、mCRAMP、rCRAMP和SMAP29) 和3種α-螺旋抗菌肽OV-1、OV-2和OV-3對(duì)從CF患者臨床分離的39株多耐藥病原體抗菌活性,SMAP-29對(duì)CF患者多耐藥病原體的抗菌活性最好,MIC為0.06~8 μg/mL,而人源抗菌肽LL-37的MIC則是1.0~32 μg/mL。
許多抗菌肽具有一定的細(xì)胞毒性、溶血性、生理?xiàng)l件下穩(wěn)定性差和化學(xué)合成成本極高等缺點(diǎn),制約了其開發(fā)和臨床應(yīng)用,到目前僅有極個(gè)別抗菌肽藥物進(jìn)入 III期臨床試驗(yàn)。為此就要開展 SMAP-29結(jié)構(gòu)功能及分子設(shè)計(jì),這是SMAP-29走向臨床研究開發(fā)的必經(jīng)之路,也是未來(lái)SMAP-29類抗菌肽研究的發(fā)展方向。
4.1.1 SMAP-29的高毒性和溶血性
許多抗菌肽具有較高的細(xì)胞毒性和溶血性,Cathelicidins類抗菌肽也毫不例外。SMAP-29的 N端疏水性氨基酸與雙親性的真核細(xì)胞外膜可通過(guò)疏水相互作用而結(jié)合。推測(cè)SMAP-29對(duì)真核細(xì)胞的溶解作用與其抗菌機(jī)制相似,都是通過(guò)SMAP-29在細(xì)胞表面發(fā)生去垢劑樣作用而破壞細(xì)胞膜的完整性。SMAP-29對(duì)綿羊紅細(xì)胞的溶血性較高,50 μmol/L時(shí)為7.9%。Xiao等研究表明SMAP-29對(duì)狗腎細(xì)胞(MDCK)具有細(xì)胞毒性[39]。
SMAP-28對(duì)人紅細(xì)胞具有很高的溶血性,當(dāng)肽濃度為4、20、100 μmol/L時(shí)溶解率分別達(dá)到4%、20%和61%~100%,但是對(duì)綿羊紅細(xì)胞的溶解率相對(duì)較低,80 μmol/L時(shí)為3%??咕娜苎钚钥赡艹霈F(xiàn)在以下幾種情況中:高疏水性的環(huán)境、極性角度相對(duì)狹窄和存在高度輸水區(qū)。
4.1.2 協(xié)同效應(yīng)
協(xié)同效應(yīng)對(duì)臨床藥物開發(fā)非常重要。有極個(gè)別的研究證明幾個(gè)抗菌肽和其他的抗菌肽具有一定的協(xié)同效應(yīng),但是關(guān)于SMAP-29的協(xié)調(diào)效應(yīng)方面的研究較少,Saiman等[32]研究了 SMAP-29與傳統(tǒng)抗生素聯(lián)合使用沒有明顯的協(xié)同效應(yīng)。牛明福等[40]報(bào)道有4個(gè)融合蛋白 (包括SMAP-29) 當(dāng)在畢赤酵母中表達(dá)的時(shí)候表現(xiàn)出與鏈霉素和多粘菌素B有一定的協(xié)同效應(yīng)。也有報(bào)道 SMAP-28和溶菌酶和牛Lactoferrin聯(lián)合在抗大腸桿菌時(shí)具有協(xié)同效應(yīng),其他更多的關(guān)于 SMAP-29的協(xié)同效應(yīng)的知識(shí)目前知之甚少。
4.1.3 穩(wěn)定性
許多研究者[14,25,33,38]均發(fā)現(xiàn)抗菌肽在沒有鹽離子的情況下能快速殺滅病原微生物,但是在生理?xiàng)l件下或鹽離子濃度存在的溶液中抗菌活性大大下降,甚至有一些抗菌肽,如α、β-defensins和OaBac5,鹽離子濃度達(dá)到100 mmol/L時(shí)就會(huì)迅速失去作用效果。Shin等[14]研究表明SMAP-29在未加鹽的環(huán)境中抗B. subtilis的MIC為2.0,若在0.1 mol/L NaCl存在的溶液中抗B. subtilis的MIC變?yōu)槲醇欲}的 2倍??咕囊患?jí)結(jié)構(gòu)中由于含有多個(gè)堿性氨基酸殘基 (如Lys、Arg) 而容易被胰蛋白酶水解。
4.1.4 SMAP-29化學(xué)合成成本
與傳統(tǒng)抗生素相比多肽的化學(xué)成本昂貴,合成0.1 g SMAP-29純品需要12 000~17 000元,高成本限制了多肽藥物開發(fā)研究。氨基酸殘基的多少?zèng)Q定著合成的難度和成本,氨基酸殘基較少的短肽合成成本較低,經(jīng)過(guò)分子設(shè)計(jì)截短的抗菌肽勢(shì)必會(huì)降低生產(chǎn)成本。
抗菌肽分子設(shè)計(jì)是基于結(jié)構(gòu)與功能關(guān)系,通過(guò)一系列生物信息學(xué)方法,實(shí)現(xiàn)對(duì)天然抗菌肽的定向改造或全新設(shè)計(jì),獲得更加符合人類需要的非天然序列,并闡明抗菌肽的活性機(jī)制,供進(jìn)一步開發(fā)利用[41]。SMAP-29是α-螺旋結(jié)構(gòu)的陽(yáng)離子抗菌肽,在分子設(shè)計(jì)上要遵循以下幾個(gè)基本原則:
1) 陽(yáng)離子性。陽(yáng)離子性決定其能否選擇性地與帶負(fù)電性的細(xì)菌細(xì)胞膜外表面相互吸引,而不與呈中性的真核生物細(xì)胞膜外表面產(chǎn)生相互作用,這也就是它們對(duì)哺乳動(dòng)物細(xì)胞沒有毒副作用的主要原因。
2) 兩親性。兩親性決定其能否有效插入細(xì)菌細(xì)胞膜內(nèi),形成疏水通道。
3) 結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)化原則。在保證抗菌活性前提下,應(yīng)盡量簡(jiǎn)化抗菌肽的序列和結(jié)構(gòu),這樣易于進(jìn)行化學(xué)合成,也有助于闡明單一因素改變對(duì)活性的影響。
4.2.1 基于SMAP-29一級(jí)結(jié)構(gòu)功能及分子設(shè)計(jì)
殘基替換:就是替換天然序列中的一個(gè)或多個(gè)氨基酸殘基,是結(jié)構(gòu)功能研究最有效和常用的方法,在克服天然肽鏈的毒性問題上,往往起到理想的效果。對(duì)SMAP-29抗菌肽進(jìn)行殘基替換設(shè)計(jì)了一系列新的抗菌肽,如SMAP-29[A19]、SMAP-29[K22,25,27]、SMAP-29 [1?17,K2,7,13]和Novispirin G-10等。Shin等[14]將SMAP-29中的Pro19→Ala后發(fā)現(xiàn)活性降低,SMAP-29序列中Leu22,Ile25,Ile27→Lys(K) 替換,SMAP-29[1-17]中的3個(gè)氨基酸也被Lys替換,替換后產(chǎn)生的 SMAP-29[K22,25,27]和 SMAP-29[1?17,K2,7,13]對(duì)細(xì)胞的毒性降低,在100 μmol/L肽濃度條件下對(duì)人紅細(xì)胞溶血性為 0%。替換后新肽SMAP-29[K22,25,27]的抗 C. albicans菌活性沒有發(fā)生變化,但是抗M. luteus、S. aureus、S. epidermidis等的活性降低 2~4倍。Sawai等[13]在保留兩親螺旋結(jié)構(gòu)的前提下進(jìn)行單殘基突變,用 Gly取代Ovispirin-1序列中第10 位的Ile,得到一個(gè)新的抗菌肽 Novispirin G-10,結(jié)果克服了對(duì)紅細(xì)胞的溶血性,替換前35 μmol/L的Ovispirin-1對(duì)人和綿羊紅細(xì)胞高達(dá)70%,而同樣肽濃度的Novispirin G-10的溶血性為2.5%,降低了96.4%,并提高了抗菌活性。
截取天然抗菌肽的部分序列:將含29個(gè)氨基酸的SMAP-29截短,嘗試篩選到抗菌活性更高,溶血性較低的短肽方面的做了大量的研究。得到的截短的SMAP-29抗菌肽22個(gè) (表1),并對(duì)其性質(zhì)進(jìn)行了研究,這些截短肽中最有代表的是從SMAP-29的N 端截取的含有 18個(gè)氨基酸的 Ovispirin,但是Ovispirin的高溶血性決定其不能成為優(yōu)秀的藥物開發(fā)肽前體,所以產(chǎn)生了Ovispirin-1。
在基于 SMAP-29一級(jí)結(jié)構(gòu)設(shè)計(jì)中往往將截取天然抗菌肽的部分序列法、殘基替換和序列模板法等結(jié)合使用設(shè)計(jì)篩選新的抗菌肽,SMAP-29一級(jí)結(jié)構(gòu)設(shè)計(jì)路線總結(jié)見圖3。
圖3 SMAP-29一級(jí)結(jié)構(gòu)設(shè)計(jì)路線[13,27,41-42]Fig. 3 General design route for SMAP-29[13,27,41-42].
4.2.2 基于SMAP-29二級(jí)結(jié)構(gòu)功能及分子設(shè)計(jì)
SMAP-29二級(jí)結(jié)構(gòu)是兩親線性α-螺旋結(jié)構(gòu),結(jié)構(gòu)中任何改變都可能導(dǎo)致活性減弱或消失,但也可通過(guò)二級(jí)結(jié)構(gòu)分子設(shè)計(jì)實(shí)現(xiàn)降低毒性的目的,二級(jí)結(jié)構(gòu)設(shè)計(jì)考慮以下物理化學(xué)因素:大小、氨基酸序列、電荷、螺旋程度、疏水性、兩親性、親疏水面的夾角。
大小:即肽鏈長(zhǎng)度,肽鏈長(zhǎng)度的改變影響了抗菌肽的疏水性、二級(jí)結(jié)構(gòu)以及在水溶液和細(xì)胞膜上的狀態(tài),從而改變了抗菌肽對(duì)膜的結(jié)合能力。最早研究者認(rèn)為要形成橫跨膜的通道,最少應(yīng)含 20個(gè)氨基酸殘基,其后發(fā)現(xiàn)有些抗菌肽僅由 12個(gè)氨基酸殘基組成?!皻痔骸蹦P驼J(rèn)為抗菌肽通過(guò)和膜結(jié)合后改變其穩(wěn)定性從而引起細(xì)胞死亡,不必形成跨膜通道,這可以很好地解釋短肽的抗菌機(jī)制。短肽有廣譜抗菌性傾向,為了平衡電荷,長(zhǎng)度可以適當(dāng)加長(zhǎng),在10~30個(gè)氨基酸內(nèi)效果也較為理想。經(jīng)過(guò)分子設(shè)計(jì)后的 SMAP-29肽家族一般含十多個(gè)氨基酸。
氨基酸序列:天然抗菌肽具有不同的氨基酸序列,大約有50%的疏水性殘基,由Pro或Gly殘基形成“鉸鏈”或“扭”。設(shè)計(jì)上序列安排主要參考天然兩親α-螺旋抗菌肽來(lái)進(jìn)行,并考慮N端和C端殘基的選擇和修飾。Tossi研究團(tuán)隊(duì)[44]分析了許多天然兩親α-螺旋抗菌肽并得出一些共同的規(guī)律,前18個(gè)氨基酸序列模板見表3,Gly出現(xiàn)在序列第1位的肽序列大約占70%以上;Lys出現(xiàn)在第8位的肽序列大約占50%以上;SMAP-29通過(guò)肽模板序列分析了1~18位的氨基酸,得出其氨基酸模序位:第1位是Arg,2、13位Gly代替了疏水性殘基,11位疏水性Ala代替了親水性氨基酸。
電荷:陽(yáng)離子抗菌肽的電荷影響其活性與選擇性毒性,Weistroffer等[26]認(rèn)為電荷對(duì)抗菌活性方面的影響比肽鏈長(zhǎng)度和氨基酸序列更重要,增加陽(yáng)離子電荷,能增強(qiáng)對(duì)G?菌的抗菌活性 (少數(shù)報(bào)道可增強(qiáng)抗G+菌的活性)。一般認(rèn)為當(dāng)陽(yáng)離子抗菌肽的電荷小于+5時(shí),抗菌活性隨正電荷數(shù)增加而增加;當(dāng)電荷大于+7時(shí),增加正電荷對(duì)活性影響不大??紤]具有一定抗菌潛力和廣度的要求,電荷控制在+3~+9內(nèi)較為合適。
螺旋程度:穩(wěn)定的α-螺旋形式有助于SMAP-29保持較好的抗菌活性。研究表明減少 α-螺旋抗菌肽關(guān)鍵位置上 (7、8、12和14) 的Pro,有降低α-螺旋的傾向,而且降低了抗菌活性。許多研究證明 α-螺旋程度對(duì)肽的細(xì)胞毒性 (中性膜) 比對(duì)抗菌活性(帶負(fù)電荷的細(xì)胞膜) 的影響更大[45]。Zelezetsky等[44]通過(guò)測(cè)定在三氟乙醇水溶液中α-螺旋度,證明溶血性也與 α-螺旋的構(gòu)象相關(guān)。盡管許多研究推測(cè)α-螺旋度與抗菌活性、溶血性、細(xì)胞毒性有關(guān),但是目前尚未建立幾者之間的相關(guān)參數(shù)。
疏水性:抗菌肽的總體疏水性是肽鏈序列中所有親水基團(tuán)和疏水基團(tuán)共同作用的結(jié)果。疏水作用對(duì)其活性的影響可通過(guò)改變肽鏈中 Leu、Ile、Val數(shù)量進(jìn)行。研究發(fā)現(xiàn):增加分子的疏水性,抗菌肽的抗菌活性和細(xì)胞毒性 (包括溶血性) 同時(shí)增加[46]。這是由于疏水基團(tuán)在抗菌肽插入細(xì)胞膜的過(guò)程中起關(guān)鍵作用。另外,由于疏水基團(tuán)的存在,肽鏈在溶液中可以通過(guò)疏水作用形成多聚體,增加了對(duì)真核細(xì)胞膜的親和力;同時(shí)也增加了抗菌肽形成兩親α-螺旋的能力,而α-螺旋的增加也提高了抗菌肽的穩(wěn)定性。Boman[47]提出多肽側(cè)鏈氨基酸的自由能量可以從環(huán)己烷轉(zhuǎn)移到水中能預(yù)測(cè)多肽的副作用(細(xì)胞毒性),并建立了相關(guān)指數(shù) (Boman指數(shù)),但是檢測(cè) SMAP-29和同系物后發(fā)現(xiàn)并不能建立較好的參數(shù),相關(guān)度較差。
兩親性:兩親性決定其能否有效插入細(xì)菌細(xì)胞膜內(nèi),形成疏水通道,SMAP-29二級(jí)結(jié)構(gòu)為兩親α-螺旋,即沿螺旋軸平行的兩個(gè)側(cè)面,殘基排列呈“螺旋輪”(Helix wheel) 分布,一側(cè)親水殘基集中,顯親水性;另外一側(cè)疏水殘基,顯疏水性。這樣,兩親性在螺旋的兩個(gè)異極性側(cè)面上形成了疏水力矩(Hydorphobic moment),并與α-螺旋在N端和C端形成的電荷偶極一起,對(duì)抗菌肽活性起關(guān)鍵作用,多肽疏水力距可通過(guò)Eisenberg方程式獲得。通過(guò)大量研究發(fā)現(xiàn)抗菌肽的兩親性為 50%~60%時(shí)抗菌活性最好,但是Travis等[25]研究認(rèn)為抗菌活性與疏水力矩成正比例。
親疏水面的夾角:Tossi等[48]認(rèn)為一般α-螺旋結(jié)構(gòu)中親疏水面角度為140°~180°時(shí)抗菌活性最好。夾角是140°時(shí)疏水部分對(duì)應(yīng)SMAP-29序列中的8~17位氨基酸,包含大量疏水氨基酸。溶血性也與親疏水面角度相關(guān),理論上減小SMAP-29 α-螺旋上的親疏水面夾角可以促進(jìn)SMAP-29的治療指數(shù),實(shí)際中測(cè)定發(fā)現(xiàn) EC50與 MIC值不同,EC50的降低往往是通過(guò)增加夾角角度實(shí)現(xiàn)。
表3 天然來(lái)源的兩親性α-螺旋結(jié)構(gòu)抗菌肽1~18個(gè)氨基酸的序列模板Table 3 Sequence template for amino acids 1?18 of natural amphipathic α-Helical antimicrobial peptides
SMAP-29分子量小,直接從綿羊骨髓組織中提取純化天然抗菌肽存在一定的困難,而且產(chǎn)量有限,所以化學(xué)合成和基因工程表達(dá)法是獲得抗菌肽SMAP-29的主要手段。但化學(xué)合成抗菌肽成本高,而通過(guò)基因工程表達(dá)抗菌肽基因則由于抗菌肽分子小、易被蛋白酶降解、表達(dá)產(chǎn)物可能對(duì)宿主有害,從而影響了基因的高水平表達(dá)。Morassuttia等以內(nèi)含子介導(dǎo)的方式在大腸桿菌中融合表達(dá)了SMAP-29,產(chǎn)物用親和層析、高壓液相色譜純化,抗菌活性較化學(xué)合成的SMAP-29弱[49]。韓福郎選用大腸桿菌偏好密碼子,設(shè)計(jì)合成了SMAP-29基因,并在大腸桿菌中成功表達(dá)了抗菌肽SMAP-29[50]。
牛明福等[40]為了得到高活性的抗菌肽,將4種抗菌肽 PG-1、蟹防御素 (SD)、碧蝽抗菌肽Metalnikowin-2A) 和 SMAP-29串聯(lián)在畢赤酵母真核表達(dá)系統(tǒng)中成功分泌表達(dá),抑菌試驗(yàn)表明串聯(lián)的抗菌肽抑菌效果優(yōu)于SD。任耀軍等[51]也將SMAP-29在真核表達(dá)系統(tǒng)中進(jìn)行了表達(dá)。Morassutti等將SMAP-29基因轉(zhuǎn)到在煙草植物中[52]。
SMAP-29家族抗菌肽具有廣譜抗菌活性包括抗革蘭氏陽(yáng)/陰性菌、抗真菌、抗病毒、抗寄生蟲、抗螺旋體、抗衣原體和中和抗內(nèi)毒素活性,并且有作用機(jī)制獨(dú)特、快速殺滅細(xì)菌的特點(diǎn)??咕囊郧暗难芯繜狳c(diǎn)主要集中在從各種各樣的生物或同一種生物不同器官中提取、鑒定新的天然抗菌肽,經(jīng)過(guò)30多年的研究,天然中存在的抗菌肽已經(jīng)基本發(fā)掘,筆者認(rèn)為以后抗菌肽的研究熱點(diǎn)將主要在抗菌肽開發(fā)應(yīng)用方面,包括:從目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的天然抗菌肽庫(kù)中進(jìn)行結(jié)構(gòu)設(shè)計(jì)和改造,盡量提高抗菌活性而降低細(xì)胞毒性;抗菌機(jī)制的深入研究;基因工程重組、高效表達(dá)及多肽藥物的臨床前試驗(yàn)研究。所以降低細(xì)胞毒性提高活性、穩(wěn)定性仍然是SMAP-29家族抗菌肽研究中需要解決的重大問題。
[1] Zasloff M. Antimicrobial peptides of multicellular organisms. Nature, 2002, 415(6870): 389?395.
[2] Kindrachuk J, Napper S. Structure-activity relationships of multifunctional host defence peptides. Mini Rev Med Chem, 2010, 10(7): 596?614.
[3] Schlee M, harder J, k?ten B, et al. Antimicrobial peptides: ancient molecules as modern therapeutics? Expert Rev Dermatol, 2008, 3(1): 1?5.
[4] Guaní-Guerra E, Santos-Mendoza T, Lugo-Reyes SO, et al. Antimicrobial peptides:general overview and clinical implications in human health and disease. Clin Immunol, 2010, 135(1): 1?11.
[5] Boman HG, Nilsson I, Rasmuson B. Inducible antibacterial defence system in Drosophila. Nature, 1972, 237(5352): 232?235.
[6] Hultmark D, Steiner H, Rasmuson T, et al. Insect immunity. Purification and properties of three inducible bactericidal proteins from hemolymph of immunized pupae of Hyalophora cecropia. Eur J Biochem, 1980, 106(1): 7?16.
[7] Bagella L, Scocchi M, Zanetti M. cDNA sequences of three sheep myeloid cathelicidins. FEBS Lett, 1995, 376(3): 225?228.
[8] Mahoney MM, Lee AY, Brezinski-Caliguri DJ, et al. Molecular analysis of the sheep cathelin family reveals a novel antimicrobial peptide. FEBS Lett, 1995, 377(3): 519?522.
[9] Neville F, Ivankin A, Konovalov O, et al. A comparative study on the interactions of SMAP-29 with lipid monolayers. Biochim Biophys Acta, 2010, 1798(5): 851?860.
[10] Dawson RM, Liu CQ. Cathelicidin peptide SMAP-29: comprehensive review of its properties and potential as a novel class of antibiotics. Drug Dev Res, 2009, 70(7): 481?498.
[11] Huttner KM, Lambeth MR, Burkin HR, et al. Localization and genomic organization of sheep antimivrobial peptides genes. Gene, 1998, 206(1): 85?91.
[12] Tack BF, Sawai MV, Kearney WR, et al. SMAP-29 has two LPS-binding sites and a central hinge. Eur J Biochem, 2002, 269(4): 1181?1189.
[13] Sawai MV, Waring AJ, Kearney WR, et al. Impact of single-residue mutations on the structure and function of ovispirin/novispirin antimicrobial peptides. Protein Eng, 2002, 15(3): 225?232.
[14] Shin SY, Park EJ, Yang ST, et al. Structure-activity analysis of SMAP-29, a sheep leukocytes-derived antimicrobial peptide. Biochem Biophy Res Commun, 2001, 285(4): 1046?1051.
[15] Vad B, Thomsen LA, Bertelsen K, et al. Divorcing folding from function: how acylation affects the membraneperturbing properties of an antimicrobial peptide. Biochim Biophys Acta, 2010, 1804(4): 806?820.
[16] Lee DG, Pyoung IK, Park Y, et al. Antifungal mechanism of SMAP-29(1-18) isolated from sheep myeloid mRNA against Trichosporon beigelii. Biochem Biophys Res Commun, 2002, 295(3): 591?596.
[17] Orlov DS, Nguyen T, Lehrer RI, et al. Potassium release, a useful tool for studying antimicrobial peptides. J Microbiol Methods, 2002, 49(3): 325?328.
[18] Anderson RC, Hancock REW, Yu PL. Antimicrobial activity and bacterial-membrane interaction of ovinederived cathelicidins. Antimicrob Agents Chemother, 2004, 48(2): 673?676.
[19] Nielsen SB, Otzen DE. Impact of the antimicrobial peptide Novicidin on membrane structure and integrity. J Colloid Interface Sci, 2010, 345(2): 248?256.
[20] Khandelia H, Ipsen JH, Mouritsen OG. The impact of peptides on lipid membranes. Biochim Biophys Acta, 2008, 1778 (7/8): 1528?1536.
[21] Pálffy R, Gardlík R, Behuliak M, et al. On the physiology and pathophysiology of antimicrobial peptides. Mol Med, 2009, 15(1/2): 51?59.
[22] Kruse T, Christensen B, Raventós D,et al.Transcriptional profile of Escherichia coli in response to novispirin G10. Int J Pept Res Ther, 2009, 15(2): 97?105.
[23] Benincasa M, Scocchi M, Pacor S, et al. Fungicidal activity of five cathelicidin peptides against clinically isolated yeasts. J Antimicrob Chemother, 2006, 58(5): 950?959.
[24] Skerlavaj B, Benincasa M, Risso A, et al. SMAP-29: a potent antibacterial and antifungal peptide from sheep leukocytes. FEBS Lett, 1999, 463(1/2): 58?62.
[25] Travis SM, Anderson NN, Forsyth WR, et al. Bactericidal activity of mammalian cathelicidins-derived peptides. Infect Immun, 2000, 68(5): 2748?2755.
[26] Weistroffer PL, Joly S, Srikantha R, et al. SMAP29 congeners demonstrate activity against oral bacteria and reduced toxicity against oral keratinocytes. Oral Microbiol Immunol, 2008, 23(2): 89?95.
[27] Guthmiller JM, Vargas KG, Srikantha R, et al. Susceptibilities of oral bacteria and yeast to mammalian cathelicidins. Antimicrob Agents Chemother, 2001, 45(11): 3216?3219.
[28] Kalfa VC, Jia HP, Kunkle RA, et al. Congeners of SMAP29 kill ovine pathogens and induce ultrastructural damage in bacterial cells. Antimicrob Agents Chemother, 2001, 45(11): 3256?3261.
[29] Brogden KA, Kalfa VC, Ackerman MR, et al. The ovine cathelicidin SMAP29 kills ovine respiratory pathogens in vitro and in an ovine model of pulmonary infection. Antimicrob Agents Chemother, 2001, 45(1): 331?334.
[30] Arzese A, Skerlavaj B, Tomasinsig L, et al. Antimicrobial activity of SMAP-29 against the Bacteroides fragilis group and clostridia. J Antimicrob Chemother, 2003, 52(3): 375?381.
[31] Brogden KA, Nordholm G, Ackermann M. Antimicrobial activity of cathelicidins BMAP28, SMAP28, SMAP29, and PMAP23 against Pasteurella multocida is more broad-spectrum than host species specific. Vet Microbiol, 2007, 119(1): 76?81.
[32] Saiman L, Tabibi S, Starner TD, et al. Cathelicidin peptides inhibit multiply antibiotic-resistant pathogens from patients with cystic fibrosis. Antimicrob Agents Chemother, 2001, 45(10): 2838?2844.
[33] Guthmiller JM, Vargas KG, Srikantha R, et al. Susceptibilities of oral bacteria and yeast to mammalian cathelicidins. Antimicrob Agents Chemother, 2001, 45(11): 3216?3219.
[34] Sambri V, Marangoni A, Giacani L, et al. Comparative in vitro activity of five cathelicidin-derived synthetic peptides against Leptospira, Borrelia and Treponema pallidum. J Antimicrob Chemother, 2002, 50(6): 895?890.
[35] Donati M, Di Francesco A, Gennaro R, et al. Sensitivity of Chlamydia suis to cathelicidin peptides. Vet Microbiol, 2007, 123(1/3): 269?273.
[36] Bartlett KH, McCray PB Jr, Thorne PS. Reduction in the bactericidal activity of selected cathelicidin peptides by bovine calf serum or exogenous endotoxin. Int J Antimicrob Agents, 2004, 23(6): 606?612.
[37] Giacometti A, Cirioni O, Ghiselli R, et al. Cathelicidin peptide sheep myeloid antimicrobial peptide-29 prevents endotoxin-induced mortality in rat models of septic shock. Am J Respir Crit Care Med, 2004, 169(2): 187?194.
[38] Giacometti A, Cirioni O, Del Prete MS, et al. In vitro effect on Cryptosporidium parvum of short-term exposure to cathelicidin peptides. J Antimicrob Chemother, 2003, 51(4): 843?847.
[39] Xiao YJ, Cai YB, Bommineni YR, et al. Identification and functional characterization of three chicken cathelicidins with potent antimicrobial activity. J Biol Chem, 2006, 281(5): 2858?2867.
[40] Niu MF, Li X, Cao RB, et al. Secreted expression of the combinant antimicrobial peptide PL in Pichia pastoris and its antibacterial activity in vitro. Chin J Biotech, 2007, 23(3): 418?422.牛明福, 李翔, 曹瑞兵, 等. 復(fù)合抗菌肽PL在畢赤酵母中的分泌表達(dá)及其活性研究. 生物工程學(xué)報(bào), 2007, 23(3): 418?422.
[41] Wang W, Wang LJ. Current status of molecular design of cationic antimicrobial peptides. Sci Technol Food Ind, 2010, 31(1): 442?445, 448.王威, 王聯(lián)結(jié). 陽(yáng)離子抗菌肽分子設(shè)計(jì)的研究現(xiàn)狀. 食品工業(yè)科技, 2010, 31(1): 442?445, 448.
[42] Steinstraesser L, Tack BF, Waring AJ, et al. Activity of novispirin G10 against Pseudomonas aeruginosa in vitro and in infected burns. Antimicrob Agents Chemother, 2002, 46(6): 1837?1844.
[43] Taboureau O, Olsen OH, Nielsen JD, et al. Design of novispirin antimicrobial peptides by quantitative structureactivity relationship. Chem Biol Drug Des, 2006, 68(1): 48?57.
[44] Zelezetsky I, Tossi A. Alpha-helical antimicrobial peptides?using a sequence template to guide structure?activity relationship studies. Biochim Biophys Acta, 2006, 1758(9): 1436?1449.
[45] Huang YB, Huang JF, Chen YX. Alpha-helical cationic antimicrobial peptides: relationships of structure and function. Protein Cell, 2010, 1(2): 143?152.
[46] Dawson RM, Liu CQ. Properties and applications of antimicrobial peptides in biodefense against biological warfare threat agents. Crit Rev Microbiol, 2008, 34(2): 89?107.
[47] Boman HG. Antibacterial peptides: basic facts and emerging concepts. J Intern Med, 2003, 254(3): 197?215. [48] Tossi A, Sandri L, Giangaspero A. Amphipathic, a-helical antimicrobial peptides. Biopolymers, 2000, 55(1): 4?30.
[49] Morassutti C, De Amicis F, Bandiera A, et al. Expression of SMAP-29 cathelicidin-like peptide in bacterial cells by intein-mediated system. Protein Expr Purif, 2005, 39(2): 160?168.
[50] Han FL. Design, Synthesis and expression of SMAP-29 gene and assay the antibacterial activity of SMAP-29[D]. Hunan: Nanhua University, 2006.韓福郎. 抗菌肽 SMAP-29基因的設(shè)計(jì)、合成、表達(dá)純化及抗菌活性的檢測(cè)[D]. 湖南: 南華大學(xué), 2006.
[51] Ren YJ, Wang XH, Bo XW. The expression of sheep myeloid antibacterial peptides29 (SMAP-29) in Picha pastotis. J Shihezi Univ: Nat Sci, 2008, 26(6): 695?699.任耀軍, 王新華, 薄新文. 抗菌肽SMAP-29在畢赤酵母中的表達(dá). 石河子大學(xué)學(xué)報(bào): 自然科學(xué)版, 2008, 26(6): 695?699.
[52] Morassutti C, De Amicis F, Skerlavaj B, et al. Production of a recombinant antimicrobial peptide in transgenic plants using a modified VMA intein expression system. FEBS Lett, 2002, 519(1/3): 141?146.