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    抗上皮細胞生長抑制因子對膀胱癌細胞的增殖及c-Jun與HB-EGF蛋白表達的影響

    2010-05-25 01:43:30李澤良季德才張麗
    中國醫(yī)科大學學報 2010年9期
    關(guān)鍵詞:膀胱癌膀胱活性

    李澤良,季德才,張麗

    (1.中國醫(yī)科大學 附屬第一醫(yī)院泌尿外科,沈陽 110001;2.美國馬里蘭大學醫(yī)學院神經(jīng)科,美國馬里蘭州 巴爾地摩 21201)

    抗上皮細胞生長抑制因子(antiproliferative factor,APF)由Keay等[1]首先發(fā)現(xiàn)于間質(zhì)性膀胱炎(interstitial cystitis,IC)患者的尿液中,并偶然發(fā)現(xiàn)其具有抗膀胱腫瘤細胞生長的作用。目前,國內(nèi)尚無關(guān)于APF對膀胱移行細胞癌方面研究的報道。本研究通過四唑鹽比色法(MTT)、Western blot探討了不同濃度的有活性APF及無活性APF對人膀胱移行細胞癌細胞株T-24細胞生長增殖的影響及其機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    人膀胱移行細胞癌T-24細胞株購自武漢大學中國典型培養(yǎng)物保藏中心;有活性與無活性的APF購自Peptide公司;MTT購自Applygen Technologies公司;人肝素結(jié)合性表皮生長因子(recombinant human heparin binding EGF-like growth factor,HB-EGF)一抗購自Santa Cruz公司;兔抗人純化anti-c-Jun一抗購自Biolegend公司。

    1.2 方法

    1.2.1 細胞培養(yǎng)及分組:T-24細胞培養(yǎng)于RPMI 1640培養(yǎng)基中,置于37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng)至細胞對數(shù)生長期,隨機將細胞分為6組,并加入不同濃度 APF:有活性 APF 0,0.5,1.0 μg/ml組,無活性APF 0,0.5,1.0 μg/ml組。

    1.2.2 MTT檢測細胞增殖情況:將細胞懸液100μl(1×106個細胞)加入 96孔板中,37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng)至細胞對數(shù)生長期,含不同濃度APF的培養(yǎng)基200μl加入孔內(nèi),培養(yǎng)48 h,每孔加入20μl MTT溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h。酶聯(lián)免疫檢測儀檢測490 nm處各孔的吸光值。每組設(shè)4個復孔,重復3次。各組吸光值用x±s表示。

    1.2.3 Western-blot檢測c-Jun及HB-EGF蛋白的表達:向各組細胞中加入細胞裂解緩沖液,提取細胞全蛋白,測定蛋白濃度,取20μg蛋白行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳。電轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上。用含5%脫脂奶粉的PBS封閉1 h,一抗溶液(用0.1%BSA稀釋200~2 000倍)室溫下振蕩孵育2 h,加入辣根過氧化物酶標記的二抗溶液(用0.1%的BSA稀釋2 000倍),室溫下振蕩孵育1.5~2 h。堿性磷酸酶法顯色后,行透視掃描(Acer),采用灰度分析軟件(聯(lián)合生物公司,北京)分析灰度值。β-actin用作內(nèi)參照。實驗重復3次。

    1.3 統(tǒng)計學分析

    采用SPSS13.0統(tǒng)計軟件,計量資料以x±s表示,各組間比較采用t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    2 結(jié)果

    2.1 MTT結(jié)果(圖1)

    有活性 APF 0μg/ml組、0.5μg/ml組、1.0μg/ml組及無活性APF組吸光值分別為0.968±0.042、0.729±0.024、0.445±0.035、0.994±0.059,有活性 APF 0μg/ml組、0.5μg/ml組、1.0μg/ml組之間比較有統(tǒng)計學差異(P<0.05)。

    2.2 Western blot結(jié)果

    對Western blot結(jié)果進行半定量分析,結(jié)果顯示,有活性 APF 對 c-Jun(圖 2)和 HB-EGF(圖 3)蛋白的表達有抑制作用,并且隨濃度的增加該抑制作用增強,而無活性APF對兩者則無抑制作用。統(tǒng)計學分析結(jié)果顯示,不同濃度有活性APF組之間差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),無活性的APF各組與有活性APF 0μg/ml組之間無統(tǒng)計學差異(P>0.05)。

    3 討論

    抗上皮細胞生長抑制因子(APF)是一種由9個氨基酸與半乳糖相連的熱穩(wěn)定、小分子量多肽,主要存在于間質(zhì)性膀胱炎患者的尿液中,由病變的膀胱移行細胞產(chǎn)生和分泌,具有強烈的抗膀胱上皮細胞生長的作用[1~7]。

    另有研究發(fā)現(xiàn),APF還具有抗膀胱腫瘤細胞生長的作用,該作用可能與其抑制AP-1和HB-EGF的表達有關(guān)。AP-1是一種細胞活性因子,是由Jun-Jun,Jun-Fos,或Jun-Atf家族蛋白組成的同源或異源二聚體。AP-1屬于基本的亮氨酸拉鏈轉(zhuǎn)錄因子[8],通過在啟動子區(qū)與特異AP-1 DNA連接位點連接[9],調(diào)節(jié)靶基因的表達,從而影響細胞的增殖、分化、炎癥、宿主反應(yīng)及惡變。APF作用細胞后,其c-Jun的表達水平明顯下降,導致AP-1的整體水平下降,活性降低,影響抑癌基因p53及細胞周期調(diào)控基因p21WAF1/CIP1的表達,抑制細胞生長[10]。HB-EGF能夠通過自分泌調(diào)節(jié)人類膀胱上皮細胞生長,同時對于膀胱腫瘤也有較強的促增生作用。在人膀胱癌細胞中,HB-EGF通過結(jié)合表皮生長因子受體酪氨酸激酶而觸發(fā)不同的生物反應(yīng),從而激活ErK/MARK途徑[11],APF 則可以激活 p38/MAPK 途徑[13]。有關(guān)學者在對間質(zhì)性膀胱炎的病因研究中發(fā)現(xiàn),APF具有強烈的抑制HB-EGF功能及分泌的作用[1],它能夠抑制HB-EGF引起的ErK/MARK磷酸化的激活[12],從而影響膀胱腫瘤細胞的生長及增殖。

    本研究采用MTT方法檢測了不同濃度有活性APF及無活性APF對人膀胱癌T-24細胞生長及增殖的影響。結(jié)果顯示,有活性APF對膀胱腫瘤細胞的生長具有抑制作用,而無活性APF則對膀胱腫瘤細胞的生長無明顯抑制作用。Western blot結(jié)果顯示,加入無活性 APF 0 μg/ml、0.5 μg/ml、1.0 μg/ml細胞的c-Jun與HB-EGF的蛋白表達水平無顯著差別,而有活性APF 0.5μg/ml組、1.0μg/ml組的c-Jun、HB-EGF蛋白表達水平,與上述4組比較,有明顯的減低,且有活性APF 1.0μg/ml組比0.5μg/ml組的減低更顯著,說明c-Jun與HB-EGF兩者的蛋白表達隨加入有活性APF劑量的增加而減低。以上結(jié)果提示,加入的有活性APF抑制了人膀胱癌T-24細胞c-Jun與HB-EGF的蛋白表達與生長,而無活性的APF則無此作用。

    [1]Keay S,Zhang CO,Chai T,et al.Antiproliferative factor,heparinbinding epidermal growth factor-like growth factor,and epidermal growth factor in men with interstitial cystitis versus chronic pelvic pain syndrome[J].Urology,2004,63(1):22-26.

    [2]Keay S,Zhang CO,Shoenfelt JL,et al.Decreased in vitro proliferation of bladder epithelial cells from patients with interstitial cystitis[J].Urology,2003,61(6):1278-1284.

    [3]Zhang CO,Li ZL,Shoenfelt JL,et al.Comparison of APFactivity epithelial growth factor levels in urine from Chinese,African American and Caucasian American ICpatients[J].Urology,2003,61(5):897-901.

    [4]Bouchelouche K,Nordling J.Recent developments in the managementof interstitial cystitis[J].Curr Opin Urol,2003,13(4):309-313.

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    [7]Chai TC,Zhang CO,Shoenfelt JL,et al.Bladder stretch altersurinary hepatin-binding epidermal growth factor and antiproliferative factor in patients with interstitial cystitis[J].JUrol,2000,163(5):1440-1444.

    [8]Vesely PW,Staber PB,Hoefler G,et al.Translational regulation mechanismsof AP-1 proteins[J].Mutat Res,2009,682(1):7-12.

    [9]Kwon B,Goltz M,Houpt TA.Expression of AP-1 family transcription factors in the amygdala during conditioned taste aversion learning:rolefor Fra-2[J].Brain Res,2008,1207:128-141.

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    [11]Kim J,Adam RM,F(xiàn)reeman MR.Trafficking of nuclear heparinbindingepidermal growth factor-likegrowth factor intoan epidermal growth factor receptor-dependent autocrine loop in response to oxidativestress[J].Cancer Res,2005,65(2):8242-8249.

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