劉明浩 杜奕奇 李兆申
miRNA與胰腺癌的早期診斷
劉明浩 杜奕奇 李兆申
20世紀60年代,隨著RNA的發(fā)現(xiàn),人們認為RNA在基因的表達調(diào)控過程中起著至關重要的作用。近些年,人們發(fā)現(xiàn)了一些長度在18~24個核苷酸的小分子RNA(miRNA和siRNA),通過對RNA轉(zhuǎn)錄后的調(diào)節(jié)參與許多生理過程的調(diào)控,如細胞生長和凋亡、血細胞分化、同源異形盒基因調(diào)節(jié)、神經(jīng)元的極性、胰島素分泌、大腦形態(tài)形成、心臟發(fā)生、胚胎發(fā)育和脂肪代謝等,且其在物種的進化中相當保守,因此miRNA的研究受到了人們的廣泛關注。
microRNA(簡稱miRNA)是1993年Lee[1]在線蟲發(fā)育的研究中首次發(fā)現(xiàn)的一類非編碼小分子RNA,長約18~24個核苷。miRNA只被內(nèi)源性的基因轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生Pri-RNA,然后被加工成熟。其過程包括:RNA轉(zhuǎn)錄酶Ⅱ(Pol Ⅱ)完成miRNA的轉(zhuǎn)錄[2],形成長鏈的RNA前體,然后被RNA聚合酶ⅢDrosha[3]和Pasha/DGCR8[4]加工成為大約70~100個核苷酸發(fā)夾結(jié)構的pre-miRNA。Pre-miRNA通過依賴RanGTP/Exportin 5轉(zhuǎn)運機制從細胞核轉(zhuǎn)運到細胞質(zhì)[5],被RNA聚合酶ⅢDICER加工后形成兩條RNA鏈,一條組裝到含有argonaute的沉默復合體內(nèi)(RISC),形成成熟miRNA,而另一條鏈降解[6]。
miRNA與靶RNA以堿基對相互作用的方式調(diào)節(jié)基因的轉(zhuǎn)錄后表達,其作用機制仍然有爭議,但是抑制翻譯和降解mRNA這兩種方式比較明確,其中對mRNA的降解與RNA干擾途徑比較相似。在動物體內(nèi),miRNA常以不完全配對的方式作用于靶mRNA,這些作用位點多位于3端的非翻譯區(qū)(3′-UTRs)。如果miRNA和靶mRNA3′-UTRs不完全互補配對,則通過翻譯抑制靶mRNA的表達,如線蟲中的let-7與靶mRNA3′-UTRs不完全配對結(jié)合后抑制基因的翻譯。當miRNA與靶基因完全互補結(jié)合時,直接降解mRNA,如果蠅和HeLa細胞中l(wèi)et-7直接介導RISC分裂切割靶mRNA[7]。最近研究提出,另外一種去腺苷酸化機制也參與了miRNA的基因調(diào)控,這種調(diào)控與3′腺苷酸尾的清除有關,且該過程不可逆轉(zhuǎn)[8]。已經(jīng)公布的miRNA數(shù)據(jù)庫記載了695種人類的miRNA[9],估計人體內(nèi)miRNA總數(shù)將會在1000到1萬種之間。一種miRNA可以調(diào)控幾種不同基因的表達,幾種miRNA可以聯(lián)合調(diào)控一種RNA的表達,這樣形成了一個龐大的網(wǎng)絡調(diào)節(jié)人體內(nèi)各種生理活動,因此對miRNA的研究具有重要的意義。
研究miRNA可以通過組織特異性克隆、生物學信息法和RT-PCR法;進行miRNA靶基因篩選的方法有miRU法、Microlnspector法及miRNA-miRNA復合物分析法。目前日益發(fā)展的微陣列技術在篩選miRNA基因方面顯示了極大的潛力。最近,Driskell等人[10]建立了表面增強拉曼光譜法(surface-enhanced Raman spectroscopy, SERS)用于miRNA檢測和分類。實時定量PCR是定量檢測循環(huán)miRNA最常用的有效方法。
1.miRNA作為抑癌基因:在正?;蛘{(diào)控過程中,如復制、轉(zhuǎn)錄、翻譯中任何一個步驟出現(xiàn)問題,都可能使正常細胞發(fā)生癌變。最早Calin等[11]證實了miRNA與腫瘤相關。miR-15a和miR-16-1在將近65%的慢性淋巴性白血病的病例中表達完全缺失。而miR-15a和miR-16-1的缺失可導致bcl-2的過表達,使受損細胞不能發(fā)生凋亡,進而導致腫瘤的形成。在肺癌、結(jié)腸癌等的研究中發(fā)現(xiàn),let-7負調(diào)控原癌基因Ras/let-60的表達[12-13],但不影響ras的RNA水平,說明let-7是通過抑制mRNA的翻譯發(fā)揮作用,但不影響其轉(zhuǎn)錄作用。最近研究發(fā)現(xiàn),let-7的另一靶癌基因——HMGA2。HMGA2作為一種原癌基因在良性和惡性間充質(zhì)腫瘤等多腫瘤的形成中發(fā)揮作用[14],而let-7可以負調(diào)控其表達。另有研究顯示,miR-21通過直接下調(diào)抑癌基因tropomyosin 1(TPM1)而發(fā)揮作用[15]。
2.miRNA作為癌基因:Burk等[16]發(fā)現(xiàn),與腫瘤惡性程度及轉(zhuǎn)移有關的ZEB1可以直接抑制miR-200家族成員miR-141和miR-200c的轉(zhuǎn)錄,這些miRNA又可以負調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)化生長因子β2和ZEB1。ZEB1與這些miRNA形成了一個負反饋環(huán)路來調(diào)節(jié)上皮細胞的分化和腫瘤細胞的侵襲。miR-17基因簇,包括miR17-5p、miR-17-3p、miR-18、miR-19a、miR-19b1、miR-20和miR-92,在淋巴瘤中表達上調(diào),說明其發(fā)揮癌基因的作用。Volinia等[17]用芯片分析了6種實體瘤(肺癌、乳腺癌、結(jié)腸癌、胃癌、前列腺癌、胰管癌)的miRNA表達譜,發(fā)現(xiàn)miR-21均顯著過表達,提示其在腫瘤形成過程中起廣泛的致癌作用。
3.miRNA與人類腫瘤:文獻報道的其他與癌癥相關的miRNA有l(wèi)et-7、miR-17-92簇、miR-196a與肺癌,miR-34a與前列腺癌,miR-18、miR-223、miR-224與肝細胞癌,miR-125b、miR-145、miR-21、miR-155與乳腺癌,miR-143、miR-145與結(jié)直腸癌等。
1.特異性胰腺癌miRNA:Roldo等[18]的研究結(jié)果顯示,miR-103與miR-107的表達聯(lián)合miR-155的表達缺失可以用來區(qū)分胰腺癌和正常組織;一組含有10個miRNAs亞型的組合可以用來區(qū)分胰腺內(nèi)分泌腫瘤和胰腺腺泡細胞腫瘤。Bloomston等[19]的研究發(fā)現(xiàn),miR-21、miR-221、miR-222、miR-181a、miR-181b、miR-181d、miR-155在腫瘤樣本中過表達,其中miR-221最為顯著。Szafranska等[20]研究發(fā)現(xiàn),miR-216和miR-217的表達聯(lián)合miR-133a的表達缺失可以用來鑒定胰腺組織。應用定量RT-PCR技術檢測,只有miR-217和miR-196a在正常胰腺、慢性胰腺炎和腫瘤組織間差別顯著。Lee等[21]采用實時PCR定量分析胰腺癌標本、胰腺良性腫瘤、慢性胰腺炎、正常胰腺組織和9種胰腺癌細胞株的200種前體miRNA表達和分布情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn)miRNA的表達譜有明顯的不同,其中包括miR-155、miR-21、miR-221、miR-222等;原位PCR進一步顯示前三位表達的miR-221、miR-376a、miR-301定位于腫瘤細胞,而不在基質(zhì)或正常腺管。Zhang等[22]研究了96種miRNA亞型在胰腺癌組織及細胞系中的表達,結(jié)果發(fā)現(xiàn)8種miRNAs(miR-196a、miR-190、miR-186、miR-221、miR-222、miR-200b、miR-15b、andmiR-95)有顯著地過表達。
2.非特異性胰腺癌miRNA:Dillhoff等[23]比較胰腺癌及癌旁組織、慢性胰腺炎、正常胰腺組織中miR-21的表達水平,證實miR-21在胰腺癌組織中的表達顯著上調(diào),癌旁組織沒有miR-21的過表達,但miR-21在肺癌、胃癌、乳腺癌、大腸癌、前列腺癌甚至胰腺的神經(jīng)內(nèi)分泌腫瘤都有過表達。miR-375在小鼠的胰島細胞中特異性地表達,其在腫瘤組織比正常組織表達水平稍高,但不能區(qū)分胰島素瘤和胰腺的非功能性腫瘤[18]。
3.其他與胰腺癌相關的miRNA:miR-21和miR-196a-2與胰腺癌的預后有關。如沒有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移,弱表達miR-21患者平均生存期與強表達miRNA患者平均生存期有差異(27.7個月對15.2個月,P=0.037)[23]。高表達miR-196a-2與低表達miR-196a-2患者的生存期也有顯著差異(平均生存期14.3個月、95%CI12.4~16.2對平均生存期26.5個月、95%CI23.4~29.6,P=0.009)[19]。
在胰腺癌基因方面,miR-155通過負調(diào)控TP53INP1而發(fā)揮癌基因的作用[24],p53基因可以抑制miR-221的表達。此外,某些miRNA與胰腺癌的功能及轉(zhuǎn)移有關,如miR-204的過表達與胰島素的分泌有關; miR-21的過表達與高ki67的增殖指數(shù)和出現(xiàn)肝轉(zhuǎn)移有關[18]。
至今研究證實的胰腺癌、胰腺良性腫瘤、慢性胰腺炎、正常胰腺組織間miRNA表達譜的差異只是具體的miRNA亞型不同,某種miRNA表達上調(diào)或下調(diào)也有些出入。這些結(jié)果說明了miRNA表達的改變與胰腺的內(nèi)分泌功能、胰腺腫瘤的發(fā)生及惡變有一定聯(lián)系,但如果想作為胰腺癌腫瘤標記物應用于臨床,還需要進行進一步研究。
血清miRNA具有良好的抗RNase降解能力,在煮沸、高或低pH值、長時間儲存、凍融循環(huán)等條件下保持穩(wěn)定,以完整的形式存在。因此,采用常規(guī)RNA提取方法就可以獲得滿足實驗要求的miRNA。應用半定量RT-PCR的方法可以在正常人的血清和血漿中檢測到let-7a、miR-192、miR-21、miR-25、miR-451和miR-221,并且男性和女性血清miRNA譜沒有差異,兩份無關的樣本的miRNA是接近的[25]。正常人血清和血細胞miRNA譜無差異,但肺癌患者的血清和血細胞miRNA譜有顯著差異(血清和血細胞中共存57種,73種只存在于血清中)[26]。提示可通過比較患者血清和血細胞miRNA的譜的差異來提高診斷腫瘤的特異性和敏感性。miRNA分子同已知的循環(huán)核酸(DNA和RNA)一樣,廣泛存在于正常人和不同患者的血清和血漿中,并且隨著生理狀況、疾病的種類和病程的不同,miRNA分子在血清中存在的種類和數(shù)量將發(fā)生變化。
以往研究證實,腫瘤會使血清中miRNA譜發(fā)生變化。最初Lawrie等[27]發(fā)現(xiàn),在彌漫性大B細胞淋巴瘤患者的血清中有較高水平的miR-21,且與腫瘤復發(fā)及患者生存期有關。miR-141做為前列腺癌的標志物有高度的敏感性和良好的特異性。Mitchell等[28]將人前列腺癌細胞株移植到小鼠制作出異種移植模型,小鼠血清中miR-141也顯著地過表達。Chen等[26]報道,肺癌、結(jié)直腸癌及糖尿病患者血清中均有特殊的miRNA表達譜。如在正常血清中檢測不到的63種miRNAs在肺癌患者血清中可以檢測到;在腫瘤形成中起重要作用的miR-25和miR-223在肺癌患者的血清中呈高表達;結(jié)直腸癌與肺癌患者血清中一些腫瘤相關miRNA譜是相同的,提示腫瘤患者血清中存在一些共同的腫瘤相關miRNA譜。腫瘤導致的血清miRNAs水平的變化,還不清楚是腫瘤細胞壞死或脫落進入周圍循環(huán)后釋放miRNAs,還是腫瘤細胞直接釋放miRNAs進入周圍循環(huán)。因此,還需更加努力深入地研究。
[1] Lee RC,Feinbaum RL,Ambros V.The C.elegans heterochronic gene lin-4 encodessmall RNAs with antisense complementarity to lin-14.Cell,1993,75:843-854.
[2] Lee Y,Kim M,Han J,et al.MicroRNA genes are transcribed by RNA polymerase Ⅱ.EMBO J,2004,23:4051-4060.
[3] Lee Y,Ahn C,Han J,et al.The nuclear RNase Ⅲ Drosha initiates microRNA processing.Nature,2003,425:415-419.
[4] Joshua-Tor L.The Argonautes.Cold Spring Harb Symp Quant Biol,2006,71:67-72.
[5] Lund E,Güttinger S,Calado A,et al.Nuclear export of microRNA precursors.Science,2004,303:95-98.
[6] Morita S,Horii T,Kimure M,et al.One Argonaute family member,Eif2c2 (Ago2),is essential for development and appears not to be involved in DNA methylation.Genomics,2007,89:687-696.
[7] Hutvágner G,Zamore PD.A microRNA in a multiple turnover RNAi enzyme complex.Science,2002,297:2056-2060.
[8] Wu L,Fan J,Belasco JG.MicroRNAs direct rapid deadenylation of mRNA.Proc Natl Acad Sci USA,2006,103:4034-4039.
[9] Griffiths-Jones S,Saini HK,van Dongen S,et al.miRBase:tools for microRNA genomics.Nucleic Acids Res,2008,36:D154-D158.
[10] Driskell JD,Seto AG,Jones LP,et al.Rapid microRNA(miRNA) detection and classification via surface-enhanced Raman spec-troscopy (SERS). Biosens Bioelectron,2008,24:923-928.
[11] Calin GA,Dumitru CD,Shimizu M,et al.Frequent deletions and down-regulation of micro-RNA genes miR15 and miR16 at 13q14 in chronic lymphocytic leukemia.Proc Natl Acad Sci USA,200 2,99:15524-15529.
[12] Johnson SM,Grosshans H.RAS is regulated by the let-7 microRNA family.Cell,2005,120:635-647.
[13] Akao Y,Nakagawa Y,Naoe T.Let-7 microRNA functions as a potential growth suppressor in human colon cancer cells.Biol Pharm Bull,2006,29:903-906.
[14] Sgarra R,Rustighi A,Tessari MA,et al.Nuclear phosphoproteins HMGA and their relationship with chromatin structure and cancer.FEBS Lett,2004,574:1-8.
[15] Zhu S,Wu H,Mo YY,et al.MicroRNA-21 targets the tumor suppressor gene tropomyosin 1 (TPM1).J Biof Chem,2007,282:14328-14336.
[16] Burk U,Schubert J,Wellner U,et al.A reciprocal repression between ZEB1 and membersof the miR-200 family promotes EMT and invasion in cancer cells.EMBO Rep,2008,9:582-589.
[17] Volinia S,Calin GA,Liu CG,et al.A microRNA expression signature of human solid tumors defines cancer gene targets.Proc Natl Acad Sci USA,2006,103:2257-2261.
[18] Roldo C,Missiaglia E,Hagan JP, et al. MicroRNA expression abnormalities in pancreatic endocrine and acinar tumors are associated with distinctive pathologic features and clinical behavior.J Clin Oncol,2006,24:4677-4684.
[19] Bloomston M,Frankel WL,Petrocca F,et al.MicroRNA expression patterns to differentiate pancreatic adenocarcinoma from normal pancreas and chronic pancreatitis.JAMA,2007,297:1901-1908.
[20] Szafranska AE,Davison TS,John J,et al,MicroRNA expression alterations are linked to tumorigenesis and non-neoplastic processes inpancreatic ductal adenocarcinoma.Oncogene,2007,26:4442-4452.
[21] Lee EJ,Gusev Y,Jiang J,et al.Expression profiling identifies microRNA signature in pancreatic cancer.Int J Cancer,2007,120:1046-1054.
[22] Zhang Y,Li M,Wang H,et al,Profiling of 95 microRNAs in pancreatic cancer cell lines and surgical specimens by real-time PCR analysis.World J Surg,2008,33:698-709.
[23] Dillhoff M,Liu J,Frankel W,et al.MicroRNA-21 is overexpressed in pancreatic cancer and a potential predictor of survival.J Gastrointest Surg,2008,12:2171-2176.
[24] Gironella M,Senu M,Xie MJ,et al.Tumor protein 53-induced nuclear protein 1 expression is repressed by miR-155, and its restoration inhibits pancreatic tumor development.Proc Natl Acad Sci USA,2007,104:16170-16175.
[25] Gilad S,Meiri E,Yogev Y,et al.Serum microRNAs are promising novel biomarkers.PLoS One,2008,3:e3148.
[26] Chen X,Ba Y,Ma L,et al.Characterization of microRNAs in serum:a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases.Cell Res,2008,18:997-1006.
[27] Lawrie CH,Gal S,Dunlop HM,et al.Detection of elevated levels of tumour associated microRNAs in serum of patients with diffuse large B-cell lymphoma.Br J Haematol,2008,141:672-675.
[28] Mitchell PS,Parkin RK,Kroh EM,et al.Circulating microRNAs as stable blood-based markers for cancer detection.Proc Natl Acad Sci USA,2008,105:10513-10518.
2009-05-26)
(本文編輯:呂芳萍)
10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2010.03.027
200433 上海,第二軍醫(yī)大學長海醫(yī)院消化內(nèi)科
劉明浩,Email:8684@163.com